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囊胚来源ES细胞系的分离和培养

相关实验:囊胚来源ES细胞系的分离和培养

最新修订时间:

简介

小鼠胚胎干细胞(ES细胞)不仅可以作为研究哺乳动物发育调控机制的模型,同时也可以作为基因研究的载体。

材料与仪器

器材:


①超净工作台、水浴箱、培养瓶、离心机、
②血细胞计数板、
③CO2培养箱、
④倒置相差显微镜(Leica,IMIRB)、体视显微镜(NikonSMZ800)
⑤尖镊子、尖剪刀、离心管、移液管、吸管、培养皿、
⑥4孔板、24孔板、V型底96孔板
⑦过滤器

试剂:


①材料:孕鼠
②70% 乙醇
③DMEM
④Fetal bovine serum
⑤Knockout serum(Gibco,10828-028);
⑥Nonessential amino-acid solution(Invitrogen,11140-050);
⑦Trypsin,0.25% (1x)with EDTA 4Na,liquid(Invitrogen,25200-072)
⑧Gelatin(Sigma,C1890-100G);
⑨DMSO(Sigma,D2650)、2-Mercaptoethanol(Sigma,M7522)、1-Glutamine,nonanimal source
(Sigma,G8540)
⑩PBS、HEPES,>99.5%、Mitomycin-c(Sigma,M0503)

步骤

ES细胞系的分离和培养的基本过程可分为如下几步:


1.配制试剂


(1)MEF培养液:450 ml DMEM+50 ml FBS+5 ml 100xpenicillin and streptomycin,4 ℃保存,3~4周有效。


(2)建系培养液:400 ml DMEM/F12+100 ml KOSR+5 ml 200 mmol/L(100x)glutamine+5-ml(100x) b-mercaptoethanol+50 μl LIF,过滤除菌,4 ℃保存,3~4周有效。


(3)胚胎干细胞培养液:knockout DMEM+20% Knockout SR+penicillin(100 U/ml)/streptomycin(100 μg/ml)+2 mmol/L L-glutamine+1xminimal essential medium nonessential amino acids+100 μmol/L β-mercaptoethanol(100x浓 储液,10 ml PBS中加入7μl β-mercaptoethanol)+1000 U/ml recombinant mouse leukemia inhibitory factor。


(4)细胞冷冻液:50 ml FBS(50%)+40 ml DMEM(40%)+10 ml DMSO(10%)。需当天新鲜配制。


2.饲养层的准备


(1)原代细胞的培养:


①脱臼法处死E13.5孕鼠,用70% 乙醇消毒其腹部表面,于腹中线位置横向撕开皮肤,向两侧翻开,显露腹壁。


②用无菌剪刀沿腹中线纵行剖开显露腹腔脏器,将子宫从母体中取出,置于盛有10 ml DPBS的10 cm培养皿上,放回超净台并反复洗涤3~4次,移入新的DPBS。


③在新的DPBS中将剪开子宫撕破胎膜取出胎鼠,再用PBS洗涤2次。


④去除胎儿头部、内脏、四肢,并用眼科剪将胎鼠躯干剪成1 mm3以下的碎块,加入2 ml 0.05% trypsin-EDTA并收集到15 ml离心管中,在37 ℃孵育20分钟,同时轻微地摇晃促使细胞消化;⑤加入5 ml的DMEM+10% FBS终止消化。


⑥收集消化液,1200 r/min离心5分钟,弃上清,并用新鲜预热的DMEM+10% FBS重悬细胞。


⑦细胞悬液以2x10铺板于100 mm培养皿中,加入10 ml新鲜DMEM+10% FBS培养基,继续培养夜。


⑧第2天早晨换液,弃去未贴壁的细胞,继续培养。


⑨当原代细胞汇合成片,占培养皿80%~90%时进行传代培养。


(2)小鼠成纤维细胞传代培养:


①当成纤维细胞生长至80%~90%汇合后,弃去培养基,加入DPBS冲洗一遍,弃掉。


②加入0.05% trypsin-EDTA,放入培养箱中约3分钟,消化细胞。


③待细胞间隙加大,胞体趋于变圆时加入DMEM+10% FBS培养基中止消化,反复吹打成单细胞悬液,1200 r/min离心5分钟。


④弃上清,加入少许培养基重悬沉淀,按1:3比例重新接种于新的培养皿中。


(3)饲养层细胞的制作:


①用P1或P2代的小鼠成纤维细胞制作饲养层,P3~P5代的细胞活力明显降低,不能够支持ES建系的过程,故不利于做饲养层。


②将生长至90%~95%汇合的小鼠成纤维细胞培养液弃去,加入含有10 μg/ml mitomycin C(终浓度10 μg/ml,no.107409;Roche,Basel,Switzerland)的DMEM+10% FBS培养基,以阻止其有丝分裂。


③mitomycinC处理2.5小时后,弃去含有mitomycin C的培养液,用DPBS洗两次,加入0.05% trypsin-EDTA,放入培养箱中消化约3分钟。


④待细胞消化至胞体趋于变圆时,加入DMEM+10% FBS培养基中止消化,反复吹打成单细胞悬液,1200 r/min离心5分钟。


⑤弃上清,加入少许培养基重悬沉淀,冻存或铺于以1x10密度接种于gelatin包被的35 mm培养皿中备用。


注意:*mitomycin C见光容易降解,存放于暗处。Mitomycin C为剧毒物质,使用时请做好防护。


(4)培养板的包被:


①制作gelatin溶液:称取适量gelatin(no.G1890,Sigma)溶于Milli-Q水中制备成0.1% gelatin溶液,高温高压灭菌,室温储存备用。


②将需要包被的培养皿用适量gelatin溶液铺至皿底完全覆盖,放入37 ℃培养箱中1小时。


③使用前将皿中剩余的gelatin弃掉,放在超净台中风干至少30分钟。


④用细胞培养基或PBS清洗一遍后再用。


3.胚胎干细胞建系


(1)饲养层的准备及囊胚接种前准备:


①在接种囊胚的前一天,按照上述方法准备饲养层,一般在12孔板或4孔板中接种。


②在接种前的1~3小时,更换饲养层的培养液为胚胎干细胞培养液。


(2)囊胚的获取及接种:E3.5的妊娠小鼠用于胚胎干细胞建系囊胚的获得。


①脱臼法处死E3.5孕鼠,用70% 乙醇消毒其腹部表面,于腹中线位置横向撕开皮肤,向两侧翻开,显露腹壁。


②用无菌剪刀沿腹中线纵行剖开显露腹腔脏器,将子宫从母体中取出,立即放入盛有Knockout DMEM(no.10829-18,Gibco)+1μlHEPES(15630,Gibeo)(HEPES/DMEM)的35 mmI皿L中,将多余的脂肪剔除。


③将剔除脂肪的子宫放入35 mm皿中,加入2 ml预热的HEPES/DMEM,用带有已去尖的0.6 mm针头的装有HEPES/DMEM的2 ml注射器冲子宫。


④在体视显微镜下观察并收集囊胚。


⑤用玻璃吸管将囊胚移入已经更换了胚胎干细胞培养液的饲养层上,放回培养箱,静止等待6天后观察。


4.胚胎干细胞系传代培养及冻存


(1)第一次传代培养:


①提前一天根据需要传代的克隆数在24孔板中准备适量的饲养层细胞。


②传代前2小时,将饲养层的培养液换成ES培养液。


③根据克隆数在96孔板中加入25 μl的0.25% trypsin,待用。


④弃去需要传代的细胞的培养液,用DPBS洗一遍,再向皿中加入2 ml PBS。


⑤用10 μl移液器从培养皿中挑取ES样克隆,放入有0.25% trypsin的96孔板中。


⑥37 ℃培养箱中消化5分钟后,加入200 μl的ES培养液终止消化。


⑦反复吹吸使之消化成单个细胞,并移入铺有饲养层的24孔板中,加入1 mlES培养液。请确保每个24孔板的孔中只有一个克隆。


(3)常规传代培养:


①提前一天根据需要传代的细胞量在培养皿/板中准备适量的饲养层细胞。


②传代前2小时,将饲养层的培养液换成ES培养液。


③需要传代或冻存的ES用PBS冲洗两次。


④加入 trypsin37 ℃消化3~5分钟,直至细胞卷起。


⑤加入ES培养液反复吹吸至成为单个细胞。


⑥1200 r/min离心5分钟,去上清,用ES培养液悬浮。


⑦将悬浮好的细胞悬液加入准备好的饲养层之上,置于5% 的CO2培养箱中37 ℃培养。


⑧通常以1:2或1:3比例传代,传代后每天换一次新鲜的培养液。通常ES细胞3~5天传代一次。


(4)ES冻存:


①需要冻存的ES用PBS冲洗两次。


②加入trypsin,37 ℃消化3~5分钟,直至细胞卷起,


③加入ES培养液反复吹吸至成为单个细胞。


④1200 r/min离心5分钟,去上清,用细胞冻存液悬浮,装入冻存管。


⑤将冻存管放入冻存盒中置于-80 ℃冰箱,使其以-1 ℃/min的速度缓慢降温。


⑥细胞可于-80 ℃冰箱内暂存,或放入液氮罐中长期保存。


(5)ES复苏:


①将需要复苏的细胞从液氮罐中迅速放入37 ℃水浴锅中摇晃,直至冰晶消失一半。


②向冻存管内缓慢加入0.5 ml MEF培养液,并将细胞悬液加入含有5 ml MEF培养液的15 ml离心管中。


③1200 r/min离心5分钟,弃上清。


④加入适量ES培养液,接种于准备好的feeder之上。

来源:丁香实验

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