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SDS-蛋白酶K-苯酚抽提组织细胞DNA

相关实验:DNA 提取检测

最新修订时间:

简介

SDS-蛋白酶K-苯酚抽提法提取DNA的一般过程是将分散好的组织细胞在含SDS(十二烷基硫酸钠和蛋白酶K的溶液中消化分解蛋白质,再用酚和氯仿/异戊醇抽提分离蛋白质,得到的DNA溶液经乙醇沉淀使DNA从溶液中析出。

原理

SDS-蛋白酶K-苯酚抽提法的实验原理是在SDS和EDTA溶液中,蛋白酶K消化细胞蛋白质,由SDS破坏核膜而使DNA释放入水溶液。

其中EDTA鳌合Ca2、Mg2等金属离子,抑制DNA酶对DNA的降解作用,SDS还可破坏细胞膜上的脂肪和蛋白,并与蛋白质结合成为复合物使蛋白质变性而沉淀下来。

酚-氯仿-异戊醇可使蛋白进一步沉淀,使DNA纯化。大分子DNA在乙醇中会析出絮状物,以无菌玻璃棒或塑料棒搅拌缠绕将DNA挑出、在70% 乙醇中漂洗脱盐,真空干燥后溶解在TE中。

此分法制备的DNA大小一般为40~150 kb。如制备更大的基因组DNA,则需用完整细胞基因组DNA的低熔点胶包块法,可得1000 kb左右的基因组DNA。

材料与仪器

步骤

SDS-蛋白酶K-苯酚抽提法提取组织细胞DNA的基本过程可分为如下几步:

(1)取新鲜或冷冻组织,迅速剪切、称量约100 mg于匀浆器中,加入2 ml预冷的PBS缓冲液进行匀浆。

(2)离心(2000 g x 5 min),弃上清液。

(3)加入DNA消化缓冲液500 μl,再加入20 mg/ml的蛋白酶K5 μl,翻转混匀(动作轻),55 ℃ 水浴1 h。

(4)加入等体积酚-氯仿-异戊醇,慢慢旋转混匀,倾使两相接触面积增大。

(5)4 ℃离心(10000 g x 10 min)。

(6)小心吸取上层含DNA的水相至新管,加入1/10体积的3 mol/L乙酸钠,小心充分混匀,再加2.5倍体积的预冷无水乙醇,混匀,-20 ℃ 放置30 min以上。

(7)4 ℃离心(12000 g x 15 min),弃上清液,预冷的75% 乙醇约1 ml洗涤沉淀。

(8)4 ℃离心(12000 g x 5 min),弃上清液,室温干燥约10 min(不必完全干燥,否则难溶)。

(9)加适量(约40 μl)TE缓冲液溶解。-20 ℃ 保存。

注意事项

(1)生物样品要防止污染,以免混入其他来源的DNA。

(2)本法的成功与否,关键步骤是蛋白酶K消化要好,55 ℃ 孵育时要不时轻轻振摇,否则蛋白质不易去除,且DNA得率低。

(3)整个实验过程中动作要轻,防止猛烈振动使DNA断裂。

来源:丁香实验

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