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乳动物分裂中期染色体姐妹染色单体耳换的分析

相关实验:姐妹染色单体互换(SCE) 分析

最新修订时间:

材料与仪器

无菌肝素抗凝血
BrdU 秋水仙胺 低渗液 固定液 Hoechst33258 原液 吉姆萨染液 Gurr 缓冲液
含促细胞分裂剂的培养基 组织培养瓶 锥底玻璃或聚丙烯塑料离心管 标准台式离心机 聚丙烯塑料吸管 清洁的显微镜玻片 黑色塑料镜片盒 盖玻片 染缸 白炽灯 水浴箱 乳胶黏合剂 解剖刀片 封固剂

步骤

1. 将 0. 3m l 无菌肝素抗凝全血加入含有i〇 m l含促细胞分裂剂培养基的25cm2 组织培养 瓶中。培养24h。 2. 于培养瓶中加入50jul新鲜解冻无菌2mmol/L 的 Br d U 溶液使其终浓度为10jumol/L (3pg/ml)。继续培养 48h。 细胞必须在含B r d U 的培养基中完成2 轮 D A N 复制以获得预期的染色图,所以 通过观察研究对不同类型细胞的细胞周期做出大致的估算是必要的。大部分哺 乳 动 物细胞在培养过程中细胞周期为24h ; 采用这个时间一般是可以获得成功的。 3 . 于 培 养 瓶 中 加 入 150jl J 10jng/ml的 秋 水 仙 胺 (终 浓 度 0. 15jitg/ml), 孵 育 30min。 4. 将培养产物转入15m l 维底塑料离心管,室温下180g 离 心 lOmin。移去上清,留约 0.2ml,轻轻敲击离心管使细胞沉淀重悬。 贴壁培养的细胞须用胰酶消化下来后才能从培养瓶中转出。 5. 缓慢加入6m l 37° C 低渗液,同时轻轻振动离心管。 37°C 水浴箱中水浴l2min。 6. 于细胞悬液中加人4 滴新鲜配制的固定液,同时轻轻敲击离心管。倒转离心管一次 使其完全混勻。室温下180g•离心l. Omin。 7. 移去上清,留约0.2ml,轻轻敲击离心管使细胞沉淀重悬。加入5m 〖固定剂,开始 一滴一滴地加入,然后快速加入,振动离心管使细胞一直保持悬浮状态。 4。 〇下放 置 20mino 8.室温下180g 离心lOmin。移去上清,再加人5m l 固定剂,轻轻混匀,室温下 离心lOmin。重复该步骤2 或 3 次,直到细胞沉淀变为无色。 9. 移去上清,余少量固定液重悬细胞,使细胞成为稍混浊的细胞悬液。 10. 甩去显微镜玻片上多余水分。用塑料移液吸管吸取少许细胞悬液。吸管吸头应保持 在玻片上方2. 5c m 的高度,每张玻片上滴3 滴细胞悬液,每一滴都应滴在玻片表面 的不同部位以使每滴细胞悬液都可以在玻片上充分展开。稍微倾斜玻片使其干燥。 11. 相差显微镜下观察,评价分裂相的质量和数量( 如放大16倍观察) 。室温下闭光放 置玻片2〜3d 使玻片老化( 如放入黑色塑料镜片盒中) 。 降低存放玻片的水温可减少染色体的过度分散。为得到分散良好的分裂相,如 有必要可调聲固定液的体积。过浓的细胞悬液使细胞丛集于玻片上,会干扰不同的 染色。玻片准备的更多细节详见单元4.1
制 备 4 张 玻 片 以 备 不 同 的 染 色 条 件 。剩余 的 细 胞 悬 液 可 于 5〜 I O m l 固 定 液 中 一 20°C保 存 。今 后 如 再 需 制 备 涂 片 ,则 将 细 胞 悬 液 取 出 置 于 室 温 , 离 心 后 更 换 新 的 固 定 液 。 12. 在 9ml水中加入Iml 250^g/m l的 Hoechst33258原 液 (4°C保 存 1 〇〜12d)。在染缸 中加入49ml水 和 Iml稀 释 后 的Hoechst33258溶液,染料终浓度为〇. 5^g/ml。 13. 将几张老化玻片放人含有Hoechst33258稀释液的染缸中,室 温 下 放 置 I2min。清 水反复冲洗玻 片 。 14. 在每张湿的玻片上放置一张2 4 m m X 5 0 m m 盖玻片,用乳胶黏合剂密封盖玻片边缘。 玻片置于6 0 W 白识灯下方38cm (15in)处过夜。 15. 揭去乳胶黏合剂,用解剖刀片掀起盖玻片( 而不是玻片)的一角将其翻转。将玻片 交错置于已60°C预 热 2 h 的盛有水的染缸中,玻片间应留有空隙,放置10〜12min。 16•在一染缸中加人49ml Gurr缓冲液、 p H 6.8 和 Iml吉姆萨染液,放置于室温下。另 外两个染缸中加入水用以洗脱,亦放置于室温下。 17. 从热水中取出一张玻片,在空气中晃动使其冷却并干燥,将其置于吉姆萨染液缓冲 液 中 3. 5min。 依次将玻片移入另外两个盛水的染缸中,晃动玻片洗去残留的染液 (当染缸中的水变得有颜色时需换水), 在空气中晃动玻片使其干燥。 18. 高倍非油镜下观察细胞染色质量( 如 63X 或 80X )。明确判定至少在一些分裂相中 姐妹染色单体是否可通过着色深浅不同加以区分。 条 件 可 以 根 据 试 剂 的 变 化 以 及 为 了 改 进 结 果 而 微 调 ( 例 如 溶 液 的 保 存 时 间 或 试 剂 的 批 号 ,见 表 8.4. 1) 19. 用适当的封固剂将制备最佳的染色体封固于盖玻片下。 20. 低 倍 镜 工 ( 如 16X ) 推片寻找分散良好且完整的分裂相,当找到一个好的分裂相时 转 换 至 尚 倍 镜 ( 如 100X 或油镜)。鉴别姐妹染色单体着色是否不同,着色深浅的对 比度是否能达到识别SC E的标准。扫视分裂相中每条染色体看其姐妹染色单体是 否着色不同,以确定所有的染色单体片段均着色不同( 即细胞在含B r d u 培养基中 复制没有超过2 轮 ;见 图 8. 4.1)。 21.记录有意义染色的第二次分裂的细胞位于玻片上的位置( 即记录显微镜载片台上的 坐标)。计数并记录染色体及SCE的总数。继续找出15个有意义的细胞并记录。判 定 -个 分 裂 相 巾 S C E 醜 酬 職 。选 域 2 个 最 佳 纟 _ 擺 以 紐 —步分析,采 用如柯达T MaxlOO 专业胶卷那样高质量细颗粒胶卷。 对 于 S C E 发 生 率 较 高 的 分 裂 相 ,摄 片 ( 如 打 印 ) 有 助 • 确 评 分 。在 对 分 裂 相 进 行 拍 照 时 ,应 在 显 微 镜 下 对 该 翻 再 次 审 校 ,对 比 和 确 = 换 的 位 点 , S C E 应 赠 笔 在 照 片 巾 标 出 。 直 接 轉 复 制 和 摄 片 相 结 合 有 助 于 确 于 着 丝 粒 和 端 減 其 附 近 的 減 SCE,且 有 助 于 _发 现 靠 在 —起的互换,如 Bloom综 合 征 ( BS) 的特征。

来源:丁香实验

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