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免疫荧光和细胞分离

相关实验:免疫荧光和细胞分离

最新修订时间:

材料与仪器

步骤

基 本 方 案 1 单细胞表面抗原的免疫荧光标记

材 料

样品:淋 巴 组 织 (单 元 2 . 1 ) 或者人外周血单细胞悬液(单 元 8.1) V 荧光标记用的缓冲液, 4°C 荧光偶联和未偶联的抗体(见辅助方案1 和 2),已经通过滴定稀释到合适的浓度 v^ Og/m l 碘 化 丙 啶 (可选用) V 固 定 液 (可选用,使用前配制) 12m m X 15m m 圆底试管或9 6 孔圆底培养板 IOOjum尼龙网 带 有 H -1000B 的 SorvallTR-6000B 离 心 机 (或者同等可替代的离心机) 1 . 用眼科剪将淋巴组织的样品剪成小块,置小培养皿,预先加入5m l 4°C 的缓冲液,研 磨至碎。 2 . 将组织悬液移至试管,静 置 2〜3min,使粗组织块沉淀,然后将上清移至新的试管, 或经过尼龙网过滤细胞悬液至试管。 3. 4°C , 300g 离 心 8min,弃上清。重悬细胞沉淀于IOm l 的 4°C 缓冲液中。台盼蓝拒染 法 确 定 活 细 胞 数 (附 录 3 0 。 4. 4°C , 300g 离 心 8min,弃上清。重悬细胞于缓冲液,调整细胞终浓度至2 X 107个细 胞/ml。取 出 50M1的 细 胞 (1X 106) ,置 于 12m m X 75m m 的圆底试管,或 者 9 6 孔圆 底培养板。 5 . 在上述细胞中加入IOiUl合适浓度的荧光偶联抗体,混匀。冰 浴 20min (低亲和力抗 体需要延长时间或者提高孵育温度)。 6a. 使用试管进行标记:用 2m l 缓冲液洗绦2 次 ,每 次 4°C , 300g 离 心 6min,弃上清。 6b. 使用培养板标记:每 次 用 IOOiUl缓冲液洗涤,共 3〜5 次 。每 次 4°C , 500g 离 心 , 弃上清。 对 于 间 接 标 记 ,需 要 进 行 荧 光 标 记 的 二 抗 、 生 物 素 / 链 亲 和 素 或 者 是 多 色 标 记 的 抗 体 。 每 标 记 一 种 抗 体 都 需 要 按 照 上 述 程 序 进 行 孵 育 、 清 洗 。 在 多 色 分 析 时 , 如 果 确 认 抗 体 之 间 没 有 相 互 作 用 , 可 以 同 时 进 行 孵 育 、 洗 涤 。 7 . 重悬细胞于400M1、 4°C 的荧光标记用的缓冲液。上机前一直放置于4°C 。 8 . 可选使用:加 入 10M1 的 50Mg/m l 的碘化丙啶,用于上机时排除死细胞。 9 . 可选使用:细胞在分析前可进行固定。但固定后的细胞,尽量保持在4°C ,时间不超 过 1 周 。

基 本 方 案 2 固定和渗透单细胞的细胞内抗原的免疫荧光标记

材 料

细胞样品:来源于人和鼠的外周血单个核细胞、骨髓细胞、胸腺和脾脏细胞;悬浮 生长的细胞或者分散的组织细胞 V 不含 Ca2+ 和 Mg2+ 的 PBS, 4°C V 固定液, 4eC V 渗透液 V 荧光标记用缓冲液 已经用标记缓冲液稀释到合适浓度的荧光标记的或生物素标记的,或未标记的抗体 (见辅助方案1 和 2 或使用商品化产品) 洗 涤 缓 冲 液 (简称洗液): P B S 含 0 . 1 % T w e e n 20 (V /V ) (在棕色瓶中储存时间为 1 个月) 间接标记的荧光二抗或者生物素/链亲和素 PBS (附录1 ) 含 有 lmg/ml P I和 7-氨基放线菌素D (7-A A D 可选用,见 P I和 7- A A D 的配方) 1 % 的 多 聚 甲 醛 (m A O 12m m X 15m m 圆底试管 带 有 H -1000B 的 SorvallTR-6000B (或者同等可替代的离心机) 62p m 尼 龙 网 (可选用) 1 . 取 约 IO6个 细 胞 置 于 12m m X 15m m 圆底试管,加 入 无 Ca2+ 和 M g 2+ 的 P B S , 4°C , 300g•离心 5min0 如 果 有 相 当 数 量 的 死 细 胞 存 在 , 应 该 在 固 定 和 渗 透 前 通 过 Ficoll-Hypaqiie分离 去 除 ; 或 者 应 用 荧 光 染 料 标 记 死 细 胞 ,在 流 式 细 胞 仪 分 析 时 排 除 这 部 分 细 胞 。 2 . 吸弃或者快速倾倒上清。加 入 875M1冷 : P B S ,混匀。加 入 125^1的冷固定液,混合。 4°C 孵 育 lh。 3 . 为了保证最佳的标记效率,根据所要标记的抗原适当调整固定液的浓度和孵育时间。 4°C , 300g 离 心 5min。弃 上 清 。加 入 I m l 渗 透 液 。混 匀 , 37°C 赙 育 15min。加入 I m l P B S 0 4°C , 300g 离心 5min。弃上清。 4 . 对于未标记的、荧光标记的或者生物素标记的抗体:加 入 100/xl工作浓度的抗体。 混 勻 。 4°C 孵 育 30min。 加 入 I m l的洗液, 4°C , 300g 离 心 5min。 弃上清。再如此洗 涤一遍。如果是釆用直接标记法标记细胞,直接进行步骤5a 和步骤5b 。 对于采用间 接标记法,用未标记的抗体或者生物素标记的抗体孵育后,再通过荧光标记的二抗细胞样品:来源于人和鼠的外周血单个核细胞、骨髓细胞、胸腺和脾脏细胞;悬浮 生长的细胞或者分散的组织细胞 V 不含 Ca2+ 和 Mg2+ 的 PBS, 4°C V 固定液, 4eC V 渗透液 V 荧光标记用缓冲液 已经用标记缓冲液稀释到合适浓度的荧光标记的或生物素标记的,或未标记的抗体 (见辅助方案1 和 2 或使用商品化产品) 洗 涤 缓 冲 液 (简称洗液): P B S 含 0 . 1 % T w e e n 20 (V /V ) (在棕色瓶中储存时间为 1 个月) 间接标记的荧光二抗或者生物素/链亲和素 PBS (附录1 ) 含 有 lmg/ml P I和 7-氨基放线菌素D (7-A A D 可选用,见 P I和 7- A A D 的配方) 1 % 的 多 聚 甲 醛 (m A O 12m m X 15m m 圆底试管 带 有 H -1000B 的 SorvallTR-6000B (或者同等可替代的离心机) 62p m 尼 龙 网 (可选用) 1 . 取 约 IO6个 细 胞 置 于 12m m X 15m m 圆底试管,加 入 无 Ca2+ 和 M g 2+ 的 P B S , 4°C , 300g•离心 5min0 如 果 有 相 当 数 量 的 死 细 胞 存 在 , 应 该 在 固 定 和 渗 透 前 通 过 Ficoll-Hypaqiie分离 去 除 ; 或 者 应 用 荧 光 染 料 标 记 死 细 胞 ,在 流 式 细 胞 仪 分 析 时 排 除 这 部 分 细 胞 。 2 . 吸弃或者快速倾倒上清。加 入 875M1冷 : P B S ,混匀。加 入 125^1的冷固定液,混合。 4°C 孵 育 lh。 3 . 为了保证最佳的标记效率,根据所要标记的抗原适当调整固定液的浓度和孵育时间。 4°C , 300g 离 心 5min。弃 上 清 。加 入 I m l 渗 透 液 。混 匀 , 37°C 赙 育 15min。加入 I m l P B S 0 4°C , 300g 离心 5min。弃上清。 4 . 对于未标记的、荧光标记的或者生物素标记的抗体:加 入 100/xl工作浓度的抗体。 混 勻 。 4°C 孵 育 30min。 加 入 I m l的洗液, 4°C , 300g 离 心 5min。 弃上清。再如此洗 涤一遍。如果是釆用直接标记法标记细胞,直接进行步骤5a 和步骤5b 。 对于采用间 接标记法,用未标记的抗体或者生物素标记的抗体孵育后,再通过荧光标记的二抗
或者生物素/链亲和素重复进行以上的步骤。 在 标 记 一 抗 前 l m i n , 可 以 加 入 50jul的 人 A B 血 清 或 者 正 常 小 鼠 血 清 进 行 封 闭 , 以 减 少 非 特 异 性 结 合 。 如 果 分 析 细 胞 表 面 的 免 疫 球 蛋 白 , 人 A B 血 清 不 能 用 于 封 闭 。 对 于 某 些 抗 体 , 需 要 提 高 孵 育 温 度 和 延 长 孵 育 时 间 , 如 Ig M 类 抗 体 , 穿 过 细 胞 膜 的 效 率 低 , 比 Ig G 抗 体 进 入 到 细 胞 内 慢 。 5 a . 如果不进行D N A 含量测定:重悬细胞于缓冲液,浓 度 为 I X l O 6〜2 X 1 0 6个细胞/ ml。有必要的话,用 62Mm 尼龙网过滤样品去除团块。在 上 机 前 于 4°C 避光保存。 要获得最佳的结果,最 好 立 即 上 机 (2h 内)。如果要以后分析,重 悬 细 胞 于 1 % 的 多聚甲醛中。 5b. 如果同时进行胞内抗原的标记和D N A 含量测定,重 悬 I X l O 6〜2 X 106个细胞/ m l 于 含有20哗/11117-八仙,或者10哗/1111?1的?6 3 中 。 4°(:孵育3〇 111111。有必要的话,用 62Mm 尼龙网过滤样品去除团块。在 上 机 前 于 4°C 避光保存。 2h 内上机。: PI可以和 F I T C 同时使用; 7-A A D 可以和F I T C 标记的抗体和P E 标记的抗体同时使用

辅 助 方 案 1 用 异 硫 氰 酸 荧 光 黄(FITC) 偶联抗体

材 料

1 〜 2m g / m l 的纯化单克隆抗体(单 元 1. 3) V F I T C 标记缓冲液, 4°C V 透析液, 4°C 5mg/ml F I T C 溶解于无水D M S O , 使用前配制 Sephadex G -25 (Pharmacia Biotech P D - 1 0 ; 可选用) 1 . 用 500ml F I T C 标记缓冲液在4°C 透析纯化的单抗,共 2d 。期间更换2 或 3 次缓冲液 (通常情况下, 5m l 的 1〜2m g /m l 的抗体可以用500m l 缓冲液)。在 A 28。处检测吸光 度 ,确 定 抗 体 浓 度 (= A 28。X 0.74 X 稀释倍数)。 2 . 每毫克抗体加入2 0 M 1 的 5m g /m l F I T C 。 室温孵育 2h 。 3 . 用透析液透析去除未结合的F I T C ,共 2d。期间更换2 或 3 次缓冲液。或 者 过 Sephadex G -25 去除。 4 . 用透析液稀释FITC-I g G 复合物,使 A 28()< 2 . 0 。在 A 28。和 A 492处检测吸光度,计算 蛋白质浓度。 蛋白质(m g /ml)= A 28。—(t 9:X〇 .35) I.4 是 F I T C 偶联抗体摩尔系数的倒数。 5 . 计算蛋白质的摩尔数: 蛋 白 质 (― F I T C (mol) A 492 0. 69X 10' I.5X I O 5= m o l • wt • Ig 0. 69X 105= m o l • wt • FITC

6 . 计算荧光素/蛋 白 质 比(F/P ):
F/P = F I T C 摩尔数/蛋白质摩尔数; F/P = 5 : 1〜6 : 1 最适于流式细胞仪使用。

辅 助 方 案 2 长臂生物素偶联抗体

遵 循 F I T C 偶 联 方 法(见辅助方案 1),替换以下试剂和步骤见特别说明。
附 加 材 料(其 他 材 料 见 辅 助 方 案 1 , 带 V 项 目 见 附 录 1)

V 琥珀酰亚胺乙酯标记缓冲液
10m g /m l 长 臂 生 物 素(long-armed Biotin, Z y m e d 公司)溶 于 D M S O ,临用前配制
1 . 用 与 F I T C 偶联相同的方法透析 1〜2m g /m l 的纯化抗体。在透析时,用琥珀酰亚胺
乙 酯 标 记 缓 冲 液 代 替 F I T C 标 记 缓 冲 液 。在 A 28。处 检 测 吸 光 度 ,确 定抗体浓度
( = A 280 X 0.74 X 稀释倍数)。
2 . 每毫克抗体加入 IOm I 的 lOmg/m l 用 无 水 D M S O 配制的长臂生物素。室 温 孵 育 lh。
用 与 F I T C 相同的方法去除未结合的生物素(见辅助方案 1)。

备 选 方 案 1 未固定细胞胞内抗原的免疫荧光检测

附 加 材 料

含 有 0 . 3 % 和 0. 1 % (m /V ) 的 Saponin-P B S : 在棕色瓶中储存, 4°C 0 含有〇• 3 % 的 Saponin 和 lOjug/ml PI 或 20Mg/ml 的 7- A A D 的 PBS (推荐使用):临 用前加入P I 或 7-A A D 储存液至合适浓度;避光保存。 1 . 将 约 2 乂 1 0 6个细胞置于12111111\15111111试管,补 充 1〜 21111?83。 4°〇, 300呈离心 5min。弃上清,再 用 l〜2m l P B S 洗一遍。 4°C , 300g 离 心 5mirl。弃上清,轻弹试 管底使细胞沉淀分散开。 如 果 有 相 当 数 量 的 死 细 胞 存 在 , 在 渗 透 前 应 该 用 Ficoll-Hypaque分 离 去 除 死 细 胞 , 或 者 用 焚 光 染 料 标 记 死 细 胞 ,在 流 式 分 析 时 排 除 这 部 分 细 胞 。 2 . 用 0 . 3 % 的 Saponin-P B S 稀释荧光标记的抗体置合适的工作浓度。取 IOOm I 加入到细 胞中。振荡混匀。 4°C 孵 育 30min (孵育条件根据抗体特点可以适当改变)。 3•加入2m l P B S , 4°C , 300g 离 心 5m i n 。 弃 上 清 ,细 胞 沉 淀 再 用 含 有 0 . 1 % SaponinP B S 洗一遍。 4°C , 300g 离 心 5m i n , 弃上清。如果细胞采用荧光标记的一抗直接标 记 ,根据需要直接进行步骤5a 或 5b 。 4 . 如果采用的是间接标记,在 步 骤 2 和 3 标记一抗或者生物素偶联的一抗后,需要对 荧光素标记的二抗或者荧光素标记的亲和素再进行二次标记,标记程序如步骤2 和 3 , 只是将标记的抗体换成荧光素标记的二抗或荧光素标记的亲和素。 5a. 如果不同时进行D N A 含量分析:重 悬 细 胞 于 P B S ,浓 度 控 制 在 I X l O 6〜2 X 106个 细胞Anl (不要使用0 . 3 % Sap〇nin-P B S ) ; 有必要的话,用尼龙网过滤细胞去除细胞 团块。样品保存在4°C ,避光条件,直到上机。 5b. 如 果 同 时 进 行 D N A 含 量 分 析 ,重 悬 细 胞 于 0 . 3 % 的 Saponin和 IOfXgAnl F [或
20网 /1111的 7-八 八 〇 的 ? 8 8 , 浓 度 控 制 在 1 父 106 〜 2 \ 1 0 6 个 细 胞 /1111, 4 < > (:孵 育 lOmin。样品保存在4°C ,避光条件,直到上机。有必要的话,用尼龙网过滤细胞去 除细胞团块

备选方案 2 用 7-氨基放线菌素 D (7-A A D ) 标记死细胞

附 加 材 料

20网 /1111的 7-八 八 〇 的 ? 8 8 , 浓 度 控 制 在 1 父 106 〜 2 \ 1 0 6 个 细 胞 /1111, 4 < > (:孵 育 lOmin。样品保存在4°C ,避光条件,直到上机。有必要的话,用尼龙网过滤细胞去 除细胞团块

来源:丁香实验

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