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免 疫 球 蛋 白 M(IgM)和 免 疫 球 蛋 白 D(IgD) 的纯化实验

最新修订时间:

材料与仪器

步骤

备 选 方 案 1 硫 酸 铵 沉 淀 法 纯 化 IgM

此法适用于多数 IgM 抗体,尤其是一些在水中不能形成沉淀的 IgM 抗体。
附 加 材 料(其 他 材 料 见 基 本 方 案 1 )

饱和硫酸铵(SAS)

硫酸铵结晶(CAS)

硼酸缓冲液,可选
玻 璃 棉 ( Polyscience) Ia•适用于腹水:为了清除腹水中的脂类物质,将足够玻璃棉置于漏斗中盖住漏斗口, 倒人腹水,再用PBS冲洗玻璃棉,并戴好手套轻轻挤压玻璃棉,收集全部滤出液, 将滤出液于4°C或室温,20 OOOg离 心 30min, 轻轻倒出上清,弃去沉淀。边搅拌边 缓慢在上清中加入SAS至终浓度4 5% (V/V) , 在 4°C静 置 1〜2h 或过夜,使所有 蛋白质沉淀。 Ib. 适用于MAb上清:将 MAb上清于4°C或室温,20 OOOg离 心 30min,轻轻倒出上 清液,在上清液中加人下列量的CAS: CAS (g) = (0.45 倍上清液体积)X76/100 2•将沉淀于4°C或室温,20 OOOg离 心 lh。保留上清,测其活性。用最少量PBS或硼酸 缓 冲 液 ( 10〜20ml) 溶解沉淀并转至透析袋中,用> 2 0 倍体积的PBS或硼酸缓冲液 于 4°C透析24〜48h, 在透析过程中更换透析缓冲液4〜6 次,透析完成后,将溶液 浓缩至< 5 ml (CPI附录3H)。 3 . 用 SE层析柱纯化IgM后分析保存( 见基本方案1,步骤3〜5

备 选 方 案 2 甘 露 聚 糖 结 合 蛋 白 亲 和 纯 化 IgM
甘露聚糖结合蛋白( MBP) 可亲和纯化人和小鼠IgM,此法也适用于其他物种的 纯化。 加 材 料 ( 其 他 材 料 见 基 本 方 案 1 ,带V 项 目 见 附 录 1) EDTA lmol/L NaOH 腹水或单克隆抗体( MAb上清)( 单 元 1.4) 超连接固定的甘露聚糖结合蛋白( MBP; Pierce) 结合缓冲液:〇• lmol/L NaOH/O .5mol/L NaCl, PH8. 3 分别于4°C和室温保存 I.Omol/L碘化钾 PBS L 5cmXIOcm层析柱或50ml离心管 MSE Mistral 3OOOi冷冻离心机( 或类似设备,仅供批量纯化使用) ,4°C或室温 在腹水或MAb上清中加入EDTA至终浓度10mmol/L, 用 NaOH调 pH至 8. 0。 IgM 层析纯化 将超连接固定的MBP溶于结合缓冲液中,填 入 1.5cmXl〇Cm层析柱,在 4°C下用 20ml结合缓冲液洗柱。注意:要在低温情况下结合IgM。在 4°C下将腹水或MAb 上清上样并保留15min。柱子的结合力约为lmg IgM/ml固定的MBP。 在 4°C下用结合缓冲液洗柱,将结合有IgM 的层析柱移至室温并在室温下放置lh» 让柱子自然流出缓冲液,收集流出液,每组分收集lml,收集20〜5 0 组分。将室温 的结合缓冲液不断从层析柱顶部加人,防止层析柱流干。监测A28。值 ( 表 1.5. 1), 用 SDS-PAGE鉴 定 组 分 ( 单 元 12.3)。
5a. 用一个柱体积的l .Omol/L 捵化钾洗脱残留在层析柱上的IgM , 并与先前收集的组 分合并,用 ELISA检测抗体活性( 单 元 1.1)。 IgM 批量纯化 2b. 将 5〜IOml超连接固定的MBP倒 人 50ml离心管中,加人结合缓冲液至4〇 ml, 4T; , 1200g 离 心 IOmin, 留下约2ml上清,其余弃之。在 MBP中加入腹水上清或 M A b 上清,混匀,于 4°C下静 置15m in, 在低温条件下结合IgM, MBP的结合力 约为Img IgM/ml固定的MBP。 3b.4°C下用结合缓冲液洗IgM-MBP混合液,4°C ,1200g 离 心 I0min,倒掉上清,使基 质中留有最少体积的结合缓冲液,在室温下静置约lh。 4b. 1200g■离心IOmin, 收集上清,在 沉 淀 中 加 入 1 倍 柱 体 积 的 i.0m〇] y L 碘化钾, 1200g 离 心 lO m in,收集上清,将二次上清合并。 MBP可以反复使用1 0 次。循环使用前必须去除破化钾,然后用结 合 缓 冲 液 重 新平衡。 6•将上清用P B S 透 析 ( C P I 附 录 3H ),以 1〜20mg/m l溶 于 P B S 中,保 存 于 4。(:或 —70

备 选 方 案 3 IgM 纯化试剂盒
可从Pierce或 Pharm acia购买商品化试剂盒并按生产商指导使用。 AbZorb试剂盒 (Pierce) 包含足够的吸收剂和缓冲液,可纯化小鼠血清或腹水来源的]_ 〇mgigM。 E-ZSEP试 剂 盒 ( Pharmacia)'可纯化澄清腹水、生物反应器培养上清、组织培养上清或血 清中IgM。这些试剂盒的使用请按照说明书进行。

本 方 案 2 凝 集 素 亲 和 层 析 法 纯 化 小 鼠 IgD
小鼠血清中的Ig D 浓度非常低(< ljug/m l),因此,通常从浆细胞瘤和杂交瘤中获 取毫克数量级的 IgD 。来源于 GW//o n ia «'»jW fci/oZia-l (GS-I , 以前称为 的 a-吡喃乳糖结合凝集素与小鼠Ig D 特异、可逆结合,其他型小鼠Ig 不能与此凝集素结合。 丄 材 料 ( 带V 项 目 见 附 录 1) 荷载产生IgD的小鼠浆细胞瘤( 如 TEPC-1017)、分 泌 IgD 的 杂 交 瘤 ( 如 B18_s) 或 含 M A b的培养上清 P B S -C A :含 lm m ol/L C aC l2 & P B S , pH7. O ( 冷藏 ) 脱 脂 ( D elipidating)试 剂 ( B eckm an)或见单兀 1. 5 G S-I凝 集 素 交 联 琼 脂 糖 凝 胶 ( E-Y labs) PBS-C A -G A L :含 0. lm o l/L 1>半乳糖的 PBS-C A , PH7. 6 (脅藏) ■\/PBS, pH7. 3,冷藏 Sorvall离心机, SS-34型 转 子 ( 或类似转子) , 4°C 1〜50m l层析柱

1.从含浆细胞瘤或杂交瘤的小鼠中收集IgD腹 水 ( 单 元 L 4 中基本方案2 ,步 骤 1〜 9)。尽量使用新鲜收集的腹水,不能冻融。对 于 MAb培养上清,4。0 ,20 OOOg离心 30min, 弃去细胞沉淀,保留上清。 2 . 在腹水中加入9 倍体积的预冷PBS-CA缓冲液,4X; ,20 OOOg 离 心 30min,收集上 清并按使用说明加人脱脂试剂或使用单元1.5方 案 ( 见基本方案丨,步 骤 la), 收集 水相。对 于 MAb培养上清,用 PBS-CA缓冲液按1:1〇稀释。 3•在4°C冷室里,准备1〜5ml GS-I凝集素交联琼脂糖凝胶层析柱(C P I 附 录 31) , 并 分别用10个柱体积的下述预冷缓冲液按顺序洗柱: PBS-CA、 PBS-CA-GAL、 PBS-CA。 4 . 将腹水或MAb上清上柱,流速为< lml/min [约 0.5ml/ (min . cm— 2)], 以后步骤 中都用此流速。 凭经验确定样品和层析柱的最佳结合比例,先试用2 : 1 的比例。在预试验中可 以用ELISA法测定流出液( 单元1.1),以确定层析柱的结合力是否已达到饱和。 5•用预冷的PBS-CA缓冲液洗柱,监测流穿组分和接下来的洗出液的A28。值,直到 A2 m回到基线,若 A2 m不能快速回到基线,则表明层析柱有可能超载。 6 . 用预冷的I3BS-CA-GAL缓冲液洗脱IgD,确定洗脱体积,监测洗脱物质的吸收值, 直到A28。回到基线。通常,需 要 2〜5 倍柱体积的PBS-CA-GAL洗脱液。 7. 洗脱下的样品于4°C对 IL 预冷的PBS (pH7 . 3 ) 进 行 透 析 ( CPI附 录 3H),期间更 换透析液3 次。 8 . 测 值 ,确定IgD浓度。用 10%SDS还原聚丙烯酰胺凝胶电泳判断IgD纯 度 ( 单 元 12. 3),用 PBS配成浓度为^ lmg/rnl的 IgD于一70X:保 存 ( 不要冻融) 。 9•用1 倍柱体积的预冷PBS-CA-GAL缓冲液洗柱,接着用1 0 倍柱体积的PBS-CA缓 冲液洗柱以再生柱子。用 含 0.02% NaN3 WPBS-CA缓冲液保存柱子,4。(:下可保存 1 年 ( 超过这个时间柱子的结合力减弱5 0 % 左右) 。再次使用前请按步骤3 重新平衡 柱子。
 

来源:丁香实验

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