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液相法筛选cDNA表达文库中RNA结合蛋白实验

相关实验:液相法筛选 cDNA 表达文库中 RNA 结合蛋白实验

最新修订时间:

原理

将 cDNA 文库表达的蛋白固定于硝酸纤维素膜或尼龙膜上,然后用标记的 RNA 对其进行筛选的方法是筛选 RNA 结合蛋白研究中最常用的技术。

材料与仪器

TY
储存液 溶菌酶干粉 细菌裂解缓冲液 甘油水溶液

步骤

一、材料与设备

1. 2X TY:16 g 蛋白胨,10 g 酵母提取物,5 g NaCl,水定容至 1 L,高压灭菌。

2. 储存液:1 mol/L IPTG;1 mol/L DTT;100 mmol/L PMSF( 用无水异丙醇配制);均分装后 -20℃ 保存。

3. 溶菌酶干粉,-20℃ 保存。

4. 细菌裂解缓冲液:150 mmol/L NaCl,50 mmol/L Tris-HCl(pH 8.0),1 mmol/L EDTA,1% NP-40(或 Igepal-630),4℃ 保存。用前取 10 ml 置于冰浴,加 10 μl 1 mol/L DTT、100 μl 100 mmol/L PMSF 和约 20 mg 溶菌酶。

5. 40% 甘油水溶液,高压灭菌后 4℃ 保存。

二、操作方法

1. 将质粒 cDNA 表达文库转化到大肠杆菌,在含抗生素的培养液中 37℃ 振摇培养直至 OD600 达 0.5~1.0,4℃ 保存培养产物。临用前取出一部分逐级稀释后涂板,计克隆数并计算文库滴度。

2. 在培养管内加 2 ml 含抗生素的 2X TY,每管接种 250 个细菌克隆,37℃ 振摇培养直至 OD600 达 0.5。

3. 10 mmol/L IFTG 诱导表达 lacZ 融合蛋白,37℃ 振摇培养 3 h 或过夜。

4. 将培养物标号,取 1.5 ml 14000 g 室温离心 1 min 收集,其余 0.5 ml 于 4°C 保存。

5. 将离心获取的细菌置于冰上,用细菌裂解缓冲液重悬,冰浴 30 min。

6. 14000 g,4℃ 离心 15 min。同时取干净离心管置于冰浴,标好号后各加 20 μl 40% 甘油;将离心后的样品管同样置于冰浴,从中取 20 μl 上清加入含甘油的干净的离心管内,吹打混匀,即获得含有 cDNA 文库蛋白的细菌提取物。

7. 将细菌提取物立即用干冰/乙醇或液氮速冻,-70°C 保存。(用时冰浴化开,再保存时同样先用干冰/乙醇或液氮速冻再置于 -70℃。)

8. 用结合位点探针对提取物进行检测(gel-shift 或 UV 交联法)。如果收集的提取物中有 RNA 结合活性,再用阴性对照探针和所研究的 RNA 探针共同检测此 RNA 结合活性的特异性。

9. 对于提取物中具有 RNA 结合活性的样品,根据标号找到对应的、保存于的其余 0.5 ml 细菌培养产物,计数样品滴度;接种 40 个培养管,每管 25 个细菌克隆,37℃ 振摇培养直至 OD600 达 0.5。

10. 重复步骤 (3)~(9)。一旦某一管中的细菌蛋白提取物被证明具有 RNA 结合活性,就将对应标号细菌培养样品涂板以获取单一克隆,再接种 20 个培养管,每管 5 个克隆细菌;重复步骤 (3)~(9);最后一轮筛选,接种 20 个培养管,每管仅含 1 个克隆。

来源:丁香实验

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