材料与仪器
抗体,血清;
RPMI 1640,DPBS,洗涤液,固定液;
玻璃管,塑料管,离心机,显微镜;
步骤
1. 制备活性高的细胞悬液(培养细胞系、外周血单个核细胞、胸腺细胞、脾细胞等均可用于本法);
2. 用 10 % FCS RPMI 1640 调整细胞浓度为 5×106~1×107 /ml;
3. 取 40 μl 细胞悬液加入预先有特异性 McAb(5~50 μl)的小玻璃管或塑料离心管,再加 50 μl 1:20(用 DPBS 稀释)灭活正常兔血清,4 ℃ 30 min;
4. 用洗涤液洗涤 2 次,每次加洗涤液 2 ml 左右,1000 rpm × 5 min;
5. 弃上清,加入 50 μl 工作浓度的羊抗鼠(或兔抗鼠)荧光标记物,充分振摇,4 ℃ 30 min;
6. 用洗涤液洗涤 2 次,每次加液 2 ml 左右,1000 rpm × 5 min;
7. 加适量固定液(如为 FCM 制备标本,一般加入 1 ml 固定液,如制片后在荧光显微镜下观察,视细胞浓度加入 100~500 μl 固定液);
8. FCM 检测或制片后荧光显微镜下观察(标本在试管中可保存 5~7 天);
注意事项
1. 整个操作在 4 ℃下进行,洗涤液中加有比常规防腐剂量高 10 倍的 NaN3,上述实验条件是防止一抗结合细胞膜抗原后发生交联、脱落。
2. 洗涤要充分,以避免游离抗体封闭二抗与细胞膜上一抗相结合,出现假阴性。
3. 加适量正常兔血清可封闭某些细胞表面免疫球蛋白 Fc 受体,降低和防止非特异性染色。
4. 细胞活性要好,否则易发生非特异性荧光染色。
常见问题
1. DPBS (×10, 贮存液)
NaCl 80 g,KCl 2 g,蒸馏水加至 1000 ml,Na2HPO4 11.5 g,临用时用蒸馏水 1:10 稀释,KH2PO4 2 g
2. 洗涤液
DPBS 900 ml,FCS 50 ml(终浓度 5%),4% NaN3 50 ml(终浓度 0.2%)
3. 固定液
DPBS 1000 ml,葡萄糖 20 g(终浓度 2%),甲醛 10 ml,NaN3 0.2 g (终浓度 0.02%)
来源:丁香实验