原理
正常情况下，大肠艾希氏菌不致病，而且还能合成维生素B和K，生产大肠菌素，对机体有利。但当机体抵抗力下降或大肠艾希氏菌侵入肠外组织或器官时，可作为条件性致病菌而引起肠道外感染。有些血清型可引起肠道感染，已知的引起致病性大肠艾希氏菌有四类，即产肠毒素大肠艾希氏菌、出血性大肠艾希氏菌、肠道侵袭性大肠艾希氏菌和肠道致病性大肠艾希氏菌，后者主要引起新生儿的腹泻。带菌的牛和猪是传播本菌引起食物中毒的重要原因，人的带菌亦可污染食品，引起中毒。
材料与仪器
大肠艾希氏菌标准菌株 食品检样 白鼠 大肠艾希氏菌诊断血清 产肠毒素大肠艾希氏菌诊断血清 产肠毒素大肠艾希氏菌LT和ST酶标诊断试剂盒 抗LT抗毒素
多粘菌素B纸片 硫椰汞溶液 伊文思蓝溶液 革兰氏染色液 肉汤 麦康凯琼脂 伊红美蓝琼脂 三糖铁琼脂 克氏双糖铁琼脂 糖发形管 赖氨酸脱羧酶试验培养基 尿素琼脂 氰化钾培养基 蛋白陈水 靛基质试剂 半固体琼脂 Honda氏产毒肉汤 E1ek氏培养基 氧化酶试剂
天平 均质器 乳钵 温箱 水浴 显微镜 离心机 酶标仪 细菌浓度比浊管 广口瓶 三角烧瓶 平皿 试管 吸管 橡胶乳头 载玻片 酒精灯 金属匙 玻璃棒 镍铬丝 接种棒 试管架 试管篓 冰箱 注射器 刀子 剪子 镊子 硝酸纤维素滤膜
步骤
一、增菌
样品采集后应尽快检验。以无菌操作称取检样25 g，加在225 mL营养肉汤中，以均质器打碎1 min或用乳钵加灭菌砂磨碎。取出适量，接种乳糖胆盐培养基，以测定大肠菌群MPN，其余的移入500 mL广口瓶内，于36土1 ℃培养6 h。挑取1环，接种于1管30 mL肠道菌增菌肉场内，于42 ℃培养18 h。
二、分离
将乳糖发酵阳性的乳糖胆盐发酵管和增菌液分别划线接种麦康凯或伊红美蓝琼脂平板；污染严重的检样，可将检样匀液直接划线接种麦康凯或伊红美蓝平板，于36土1 ℃培养18 h一 24 h，观察菌落。不但要注意乳糖发酵的菌落，同时也要注意乳糖不发酵和迟缓发酵的菌落。
三、生化试验
1. 自鉴别平板上直接挑取数个菌落分别接种三糖铁(TSl)或克氏双糖铁琼脂(KI)。同时将这些培养物分别接种蛋白胨水、半固体、pH 7.2尿素、琼脂、KCN肉汤和赖氨酸脱羧酶试验培养基。以上培养物均在36 ℃培养过夜。
2. TSI斜面产酸或不产酸，底层产酸，H2S阴性，KCN阴性和尿素阴性的培养物为大肠艾希氏菌。TSI底层不产酸，或H2S、KCN、尿素有任一项为阳性的培养物，均非大肠艾希氏菌。必要时做氧化酶试验或革兰氏染色镜检。
四、血清学试验
1. 假定试验
挑取经生化试验证实为大肠艾希氏菌的琼脂培养物，用致病性大肠艾希氏菌、侵袭性大肠艾希氏苗、产肠毒素大肠艾希氏菌多价O血清和出血性大肠艾希氏苗O157，血清做玻片凝集试验。当与某一种多价O血清凝集时，再与该多价血清所包含的单价O血清做试验。如与某一个单价O血清呈现强凝集反应，即为假定试验阳性。
2. 证实实验
制备O抗原悬液，稀释至与MacFarland?3号比浊管相当的浓度。原效价为1:160—1:320的O血清，用0.％盐水稀释至1:40。稀释血清与抗原悬液在10 mm×75 mm试管内等量混合，做试管凝集试验。混匀后放于50 ℃水浴箱内，经16 h后观察结果。如出现凝集，可证实为该O抗原。
五、肠毒素试验
1. 酶联免疫吸附试验检测LT和ST
（1）产毒培养
将试验菌株和阳性及阴性对照菌株分别接种于0.6 mLCAYE培养基内，37 ℃振荡培养过夜。加入20000 IU／ml的多粘菌素B0.05 mL，于37 ℃培养1h，4000 r／min离心15 min，分离上清液，加入0.1％硫柳汞0.05 ml，于4 ℃保存待用。
（2）LT检测方法(双抗体夹心法)
包被：先在产肠毒素大肠艾希氏菌CT和ST酶标诊断试剂盒中取出包被用LT抗体管，加入包被液0.5 ml，混匀后全部吸出于3.6ml包被液中混匀，以每孔100 μl量加入到40孔聚苯乙烯硬反应板中，第一孔留空作对照，于4 ℃冰箱湿盒中过夜。
洗板：将板中溶液甩去，用洗涤液I洗3次，甩尽液体，翻转反应板，在吸水纸上拍打，去尽孔中残留液体。
封闭：每孔加100 μL封闭液，于37 ℃水浴中l h。
洗板：用洗涤液II洗3次，操作同上。
加样本：每孔分别加多种试验菌株产毒培养液100 μl，37 ℃水浴中l h。
洗板：用洗涤液II洗3次，操作同上。
加酶标抗体：先在酶标LT抗体管中加0.5 ml稀释液，混匀后全部吸出于3.6 ml稀释液中混匀，每孔加100 μl，37 ℃水浴中1 h。
洗板：用洗涤液II洗3次，操作同上。
酶底物反应：每孔(包括第一孔)各加基质液100 μl，室温下避光作用5 min~10 min，加入终液50 μl。
结果判定：以酶标仪在波长492 nm下测定吸光度0D值，待测标本OD值大于阴性对照3倍以上为阳性，目测颜色为桶黄色或明显高于阴性对照为阳性。
（3）ST检测方法(抗原竞争法)
包被：先在包被用ST抗原管中加0.5 ml包被液，混匀后全部吸出于1.6 ml包被液中混匀，以每孔50 μl加入于40孔聚苯乙烯软反应板中。加液后轻轻敲板，使液体布满孔底。第一孔留空作对照，置4 ℃冰箱湿盒中过夜。
洗板：用洗涤液I洗3次，操作同上。
封闭：每孔加100 μl封闭液，37 ℃水浴比。
洗板：用洗涤液II洗3次，操作同上。
加样本及ST单克隆抗体：每孔分别加各试验菌株产毒培养液50μl、稀释的ST单克隆抗体50 μl(先在ST单克隆抗体管中加0.5 mL稀释液，混匀后全部吸出于1.6 ml稀释液中，混合)，37 ℃水浴1 h。
洗板：用洗涤液II洗3次，操作同上。
加酶标记兔抗鼠1 g复合物：先在酶标记免抗鼠1 g复合物管中加0.5 mL稀释液，混匀后全部吸出于3.6 mL稀释液中混匀，每孔加100 μl，37 ℃水浴1 h。
洗板：用洗涤液II洗3次，操作同上。
酶底板反应：每孔(包括第一孔)各加基质液100 μl，室温下避光5 min~10 min，再加入终止液50 μl。
结果判定：以酶标仪在波长492 nm下测定吸光度OD值；目测无色或明显淡于阴性对照为阳性。
2. 双向琼脂扩散试验检测LT
将被检菌株按五点环形接种于E1ek氏培养基上。以同样操作，共做两份，于36 ℃培养48 h。在每株菌苔上放多粘菌素B纸片，于36 ℃经5 h～6 h，使肠毒素渗入琼脂中，在距五点环形菌苔各5 mm处的中央，挖一个直径4 mm的圆孔，并用一滴琼脂垫底。在平板的中央孔内滴加LT抗毒素30 μl，用已知产LT和不产毒菌作对照，经15 h～20 h观察结果。在菌斑和抗毒素孔之间出现白色沉淀带者为阳性，无沉淀带者为阴性。
3. 乳鼠灌胃试验检测ST
将被检菌株接种于Honda氏产毒肉汤内，于36 ℃培养24 h，以3000 r／min离心30 min，取上清液经薄膜滤器过滤，加热60 ℃30 min，每mL滤液内加入2％伊文思蓝溶液0.02 mL。将此滤液用塑料小管注入1日龄一4日龄的乳鼠胃内0.1 mL，同时接种3只～4只，禁食3h～4 h后用三氯甲烷麻醉，取出全部肠管，称量肠管(包括积液)重量及剩余体重。肠管重量与剩余体重之比大于0.09为阳性，0.07—0.09为可疑。
来源：丁香实验
