原理
用放射性核素标记靶细胞,当靶细胞受到破坏时,放射性核素被释放出来,通过测定释放或残留在未被破坏细胞内的放射性核素放射活性,即可计算和推测杀伤细胞的细胞毒活性。常用的放射性核素有51Cr、3H-Dr、125I-UdR等。本实验采用51Cr释放法检测人NK细胞活性。
材料与仪器
靶细胞
SDS 生理盐水 台盼蓝染色液 铬酸钠
细胞培养板 离心管 平皿
SDS 生理盐水 台盼蓝染色液 铬酸钠
细胞培养板 离心管 平皿
步骤
一、材料准备
1. 靶细胞制备
(1)取传代培养24~48小时对数生长期的K562,用RPMI-1640培养液洗涤2次,用10%FCS-RPMI-1640培养液调细胞浓度4×106/ml。
(2)0.5 ml K562细胞悬液加3.7~7.4MBq(100~200uCi)51Cr,5%CO2,37度孵育90分钟,每个15分钟振摇一次。
(3)RPMI-1640培养液洗涤3次,洗去未标记的游离51Cr。
(4)10%FCS-RPMI-1640培养液调细胞浓度1×105/ml,同时检测细胞的51Cr标记率,一般要求标记率>0.1 cpm/cell。
(5)如暂时不用,可放置4度保存12小时。
1. 靶细胞制备
(1)取传代培养24~48小时对数生长期的K562,用RPMI-1640培养液洗涤2次,用10%FCS-RPMI-1640培养液调细胞浓度4×106/ml。
(2)0.5 ml K562细胞悬液加3.7~7.4MBq(100~200uCi)51Cr,5%CO2,37度孵育90分钟,每个15分钟振摇一次。
(3)RPMI-1640培养液洗涤3次,洗去未标记的游离51Cr。
(4)10%FCS-RPMI-1640培养液调细胞浓度1×105/ml,同时检测细胞的51Cr标记率,一般要求标记率>0.1 cpm/cell。
(5)如暂时不用,可放置4度保存12小时。
2. 效应细胞制备:淋巴细胞分层液分离人PBMC,10%FCS-RPMI-1640培养液调细胞浓度1×107/ml
二、操作步骤
1. 加样:取上述效应细胞和靶细胞各0.1 ml(E:T=100:1)加入96孔培养板内,3复孔。同时设自然释放对照孔(0.1 ml 靶细胞+0.1 ml 10%FCS-RPMI-1640培养液)和最大释放孔(0.1ml靶细胞+0.1 ml 2%SDS)。37度,5%CO2孵育4小时。
2. 测定:1000 r/min 离心培养板5分钟,用微量移液器吸出各孔上清0.1 ml,加于计数管内,用γ计数仪测定放射活性cpm值。
3. 计算:根据下式计算51Cr自然释放率和NK细胞毒活性
(1)51Cr自然释放率(%)=(自然释放孔cpm值)/(最大释放孔cpm值)×100%
(2)NK细胞毒活性(%)=(试验孔cpm值-自然释放对照孔cpm值)/(最大释放对照孔cpm值-自然释放对照孔cpm值)×100%
注意事项
1. 靶细胞的质量非常重要,用台盼蓝拒染色法检测K562靶细胞的存活率应>95%。标记后的自然释放率应<15%。
2. 效靶细胞比率一般选择50~100:1,其自然杀伤率不再呈对数增加,标本用量过大。
3. 由于放射性核素具有毒性,标记的靶细胞不宜放置过久,与效应细胞作用时间也不宜过长,因随时间的延长死细胞增多,自然释放率也随之增高。
来源:丁香实验