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细胞培养技术( 食管癌细胞系中干细胞样SP细胞的分离鉴定实验)

相关实验:食管癌细胞系中干细胞样SP细胞的分离鉴定实验

最新修订时间:

材料与仪器

人食管癌细胞系
胰酶 RNA酶 碘化丙啶 四甲基偶氮唑盐 小牛血清 DMEM DMSO K2HPO4 Na2HPO4 NaCI
无菌分选管 400目细胞筛 水浴锅 离心机 酶标仪 电泳仪 显微镜 PCR仪

步骤

一、材料准备

1. 青霉素储存液

(1)将青霉素小瓶中的80万单位的干粉充分溶解于8 ml去离子水中。

(2)分装为1 ml/管,-20℃保存。

2. 链霉素储存液

(1)将键霉素小瓶中的1 mg干粉充分溶解于10 ml去离子水中。

(2)分装为1 ml/管,-20℃保存。

3. RPMI 1640培养基

(1)在大三角瓶中装入800 ml 去离子水。

(2)加入1袋RPMI1640干粉制荆,于搅拌器上混匀。

(3)加入2.0 g Na2HCO3,1 ml 10万unit/ml 的青霉素储存液。

(4)1 ml 充分溶解后,调节pH值至7.4,去离子水定容为1000 ml。

(5)无菌条件下0.22 um 孔径滤膜过滤后分装置于4℃保存。

4. UltraMEM培养液

(1)500 ml UltraMEM中加入无菌的10 ng/ml bFGF、10 ng/ml EGF、50U/ml青霉素和50 ug/ml 链霉素,4℃保存。

(2)由于完全无血清状态不利于细胞生长,我们在该培养液中加入5%的FBS,维持FBS呈较低水平。

5. 1×PBS (pH 7.4)

(1)在800 ml去离子水中溶解1.15g Na2HPO4、0.2 g K2HPO4、8.0 g NaCl和0.2 g KCl。

(2)用1 M HC1调pH值至7.4,加水定容为1000 ml。

6. EGF:用1 ml 无菌水溶解安培内的100 ug EGF,分成10管,取1管稀释100倍分装成小份作为工作液,其余9管作为贮藏液,均置于-20℃保存。

7. bFGF

(1)用1 ml Tris缓冲液充分溶解安培内的10 ug bFGF

(2)分装成10管,每管以PBS稀释10倍后分装成小份作为工作液,置于-20℃保存。

8. 0.25%胰酶

(1)称取胰酶0.25 g,以1x PBS 100 ml溶解。

(2)无菌条件下0.22 um 孔径滤膜过滤后置于4℃保存。

9. 5 mg/ml 四甲基偶氮唑盐(MTT)

(1)0.5 g MTT粉剂加入100 ml PBS浴液中充分溶解。

(2)无菌条件下0.22um孔径滤膜过滤后分装置于-20℃保存。

10. 细胞冻存液:DMSO:FBS=1:9,-20℃保存。

11. Hoechst 33342

(1)将10 mg Hoechst 33342粉剂以无菌水1ml 溶解作为贮存液。

(2)取出10 ul稀释到40 ul作为工作液,二者均避光,-20℃保存。

12. 碘化丙啶(PI)

(1)将25 mg PI粉剂以1×PBS缓冲液250 ml 避光搅拌至充分溶解。

(2)得到终浓度为l00 ug/ml 的贮存液,过滤分装后置于4℃避光保存。

13. 10 mg/ml RNA酶

(1)将胰RNA酶溶解于溶剂中[10 mM Tris-HCl(pH 7.5),15 mM NaCl],浓度为10 mg/ml。

(2)置于100℃15 min,缓慢冷却至室温后分装为200 ul/支,保存于-20℃。

14. Verapamil配制

(1)用DMSO配浓度为50 mg/ml 的原液。

(2)从文献得知应用液的浓度是100 umol/ml。

(3)所以将原液稀释50倍后就可以得到浓度为100 umol/ml应用浓度。

(4)实验中按照每ml细胞悬液中加入10 uL 的原液即可达到阻断离予通道所需的浓度。

二、实验步骤

1. 流式细胞仪分选方法:

(1) 0.25%胰蛋白酶消化处于对数生长期的鼻咽癌细胞,1200 rpm/min,离心5 min,弃上清后加入5 ml PBS重悬细胞,离心洗涤两次。

(2)以冰预冷的含2% FBS RPMI 1640完全培养液重悬细胞,调整浓度为1×106个/ml,于37℃培养箱中孵育10分钟。

(3)加入浓度为7.5 ug/ul 的荧光染料Hoechst 33342至终浓度5 ug/ml,避光,于37℃培养箱中孵育90分钟,间断混匀以免细胞沉底。

(4)低温离心,4℃,1200 rpm/min,5 min,弃上清。

(5)2 ml PBS重悬,1200 rpm/min,5 min。

(6)用2~4 ml RPMI1640培养液重悬细胞,以400目高压灭菌后的细胞筛过筛细胞,除去粘连细胞团。

(7)于上流式细胞仪前5分钟加入浓度为50 ug/ml 的PI达到终浓度为1~2 ug/ml,避光标记细胞。

(8)上机分析或分选。

2. 结晶紫染色步骤:

(1)用PBS清洗每孔两次,去除培养液中的蛋白成份。

(2)每孔加入1.5 ml 100%乙醇,室温固定15分钟。

(3)PBS清洗两次,每孔加入1 ml 4%的结晶紫染料.室温作用15分钟。

(4)流水缓慢洗去多余染料,于吸水纸上控干水分,计数细胞数大于50个的克隆数量并计算CFE。

3. 多向分化以及自我更新能力研究:

(1)分选后SP和NSP细胞分别接种于培养瓶中。

(2)培养2周,达到再次分析的细胞数目后收集细胞做Hoechst 33342染色,分析SP细胞比例高低。’

4. 细胞总RNA提取:

(1)采用Trizol Reagent提取细胞RNA。取生长状态良好的SP和NSP细胞,弃去培养液,0.25%的胰酶消化细胞,用无菌PBS洗2次,加入1 ml Trizol,带细胞裂解后移入EP管,室温静置5 min。

(2)加入0.3 ml 氯仿,颠倒混匀EP管15 sec,室温静置3 min,4℃12 000 g离心10 min,缓慢吸取上清于另一EP管中。

(3)加入0.75 ml异丙醇,混匀,室温静置10 min,4℃12 000 g离心10 min,弃上清。

(4)加入75%乙醇(用DEPC处理过的去离子水来配制),混合,4℃,7 500 g 离心5 min,弃上清。

(5)室温干燥,加入20 ul 经DEPC处理去离子水,55℃~60℃水浴10 min 助融,以1:25稀释后检测260:280比值以及RNA浓度,分装,-80℃冰箱保存备用。

5. 小鼠体内成瘤试验

(1)先用未分选的EC-9706细胞做预实验来确定接种细胞数目,选取地数量分别为1×106,1×105和1×104,四周后观察肿瘤形成情况。

(2)将当天上午分选所得到的SP和NSP细胞准确圮数后重悬于RPMI-1640培养液中,分6组接种细胞,接种体积为100 ul。
(3)于4℃保存在动物房中分别注射于NOD/SCID小鼠腋下,每个剂量3只小鼠,SP和NSP细胞共24只小鼠。

(4)饲养4~9周,每周观察两次肿瘤生长情况。

(5)处死前用游标卡尺测量肿瘤大小,采取断颈法处死小鼠,拍照取出瘤组织。

(6)剪取部分用10%福尔马林浸泡固定,切片进行HE染色确定病理类型。

6. Western Blot分析目的蛋白:

(1)细胞总蛋白的提取

①准备冰盒,以下操作尽量在冰上完成。

②用冰预冷的PBS洗去细胞培养皿中残余的培养液。

③加入1 ml PBS,用细胞刮将细胞刮下,收集于EP管中,1500 rpm/min,离心5 min 或者1800 rpm/min,离心3 min。

④缓慢吸去上清液,于下层细胞沉淀中加入1 ml 细胞裂解液将细胞裂解,混匀后于冰上放置至少45 min,然后于低温超速离心机上4℃,12000 m/min,离心5 min。

⑤吸取上清,分装并检测蛋白浓度。

(2)标准曲线的绘制以及样品蛋白的浓度测定

①BSA蛋白标准品的稀释:将浓度为2000 ug/ml 的原液逐步稀释得到浓度分别为1500 ug/m,1000 ug/m,750 ug/m,500 ug/m,250 ug/m,125 ug/m和25 ug/ml的标准品梯度。
②配制工作液:按照使用说明将A液50体积与B液1体积混合。

③取5 ul 标准品或样品,加100 ul 的工作液,室温混匀30秒。

④37℃孵育30 min 后降至室温,于570 nm 波长下测OD值,绘制标准曲线并根据稀释倍数计算蛋白样品的浓度。
7. 免疫荧光法分析细胞蛋白分子表达:

(1)小心将处理好的盖玻片用镊子夹住放入六孔板板中,将分选收到的SP和NSP细胞分别滴加到片子上,利用表面张力将液滴控制在片子范围内,静置20~30 min,待细胞贴壁后轻轻补加培养液(注意不要使片子浮起),放入培养箱中培养过夜。

(2)次日,弃去孔中培养液,PBS洗3次,加入10%甲醛,4℃固定30 min。

(3)PBS洗3次去除多聚甲醛,每孔加入1 ml 5%牛血清白蛋白室温孵育2 h 封闭,阻断非特异性IgG结合。

(4)PBS洗2次,加入适量CD44和CK18一抗,放置于摇床上4℃过夜。

(5)用PBS-T(含有0.02%Tween 20的PBS)洗涤3次,加入荧光二抗适量,放入暗盒中,置于摇床上室温结合2小时。

(6)PBS-T洗涤3次,用含有0.5 mg/ml DAPI 的封片液将盖玻片固定于载玻片上,放入暗盒中避光保存。

(7)于Olympus正置荧光显微镜下观察细胞荧光强度,记录拍照。

来源:丁香实验

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