原理
T淋巴细胞来源于骨髓的多能干细胞（胚胎期则来源于卵黄囊和肝）。在人体胚胎期和初生期，骨髓中的一部分多能干细胞或前T细胞迁移到胸腺内，在胸腺激素的诱导下分化成熟，成为具有免疫活性的T细胞。
材料与仪器
MNC 抗原
RPMI 1640培养液
24孔培养板 37℃恒温箱 96孔培养板
RPMI 1640培养液
24孔培养板 37℃恒温箱 96孔培养板
步骤
一、材料和试剂
1. 抗原致敏供者的单个核细胞(MNC)和经过3 300 rad照射的自身MNC
2. 抗原
3. 含10%人AB型血清的完全RPMI 1640培养液
4. 细胞分离及T细胞培养增殖所需的其他试剂和器材
二、操作步骤
1. 抗原刺激：于24孔培养板加入单个核细胞5×106 /2 ml/孔和最适浓度的抗原，置37℃，5% CO2 温箱培养7 d。
2. 间歇循环刺激：
（1）重悬经过抗原刺激的细胞，并经密度梯度离心，收集界面层细胞，用无血清的RPMI-1640洗二次；
（2）调整细胞浓度至1×106 /ml，加入24孔培养板孔中，同时各孔加入经过照射的自身MNC 4×106 ，以未照射的自身细胞作为饲养细胞和抗原提呈细胞，培养7d；
（3）同步骤（1）收集和洗涤细胞；
（4）调整细胞浓度至1×106 /ml，与2～3×106 新鲜照射的自身MNC及抗原共同培养7d；
（5）重复步骤（2）～（4）共3个循环；
（6）收集细胞，通过增殖试验测定抗原的特异性。
3. T细胞克隆：间歇循环刺激培养的细胞经有限稀释，于96孔板依次加入不同浓度的细胞悬液，同时克隆板孔中加入104 经过照射的自身MNC、IL-2 30 U和适当浓度的抗原，同上述条件培养7～10 d，显微镜下观察细胞生长情况。将生长良好的抗原特异性细胞转至24孔板孔中，加入自身饲养细胞和抗原，继续培养7 d，传代并经间歇刺激培养。
注意事项
1. 上述方法制备的T细胞克隆未区分出CD4+和CD8+T细胞，二者均可能被克隆。
2. 在有限稀释之前，IL-2的量不宜过高，否则可能发生T细胞非特异性增殖。
来源：丁香实验
