材料与仪器
【材料】样品,
【试剂,试剂盒】冷甲醇、丙酮,冷 PBS,Hoechst 或 DAPI(DNA 染色剂), BSA ,Triton X-100
步骤
1. 固定
1) 冷甲醇、丙酮固定样品 1-10 分钟,或含 3-4% 多聚甲醛 pH 7.4 的 PBS 室温固定 15 分钟。
2) 冷 PBS 冲洗样品 2 次。
2. 通透
1) 将样品在含 0.25% Triton X-100 (或 100 μM 洋地黄皂苷或 0.5% 皂角苷)的 PBS 中孵育 10 分钟。Triton X-100 是最常用的去污剂,能增强抗体的穿透力。因为它对细胞膜有损坏作用,因此不适用于与细胞膜结合的抗原。
2) PBS 冲洗细胞 3 X 5 分钟。
3. 封闭及孵育
1) 细胞在含 1% BSA 的 PBST 中孵育 30 分钟,以阻断抗体的非特异性结合(封闭液也可以选择含 1% 明胶或 10% 与二抗同种动物来源的血清)。
2) 细胞与抗体(含 1% BSA 的 PBST 稀释)在湿盒中共同孵育,室温 1 小时,或 4 °C 过夜。
3) 弃去液体,PBS 冲洗细胞 3 X 5 分钟。
4) 细胞与二抗在 1% BSA 中孵育,室温 1 小时,避光。
5) 弃去二抗溶液,PBS 冲洗细胞 3 X 5 分钟,避光。
4. 复染
1) 0.1-1 μg/ml Hoechst 或 DAPI(DNA 染色剂)孵育细胞 1 分钟。
2) PBS 冲洗。
5. 封固
1) 向盖玻片上滴加一滴封固液封固。
2) 用指甲油密封盖玻片防止变干并移至显微镜下观察。
3) -20 °C 或 4 °C 避光保存。
来源:丁香实验