小鼠解剖取材

1） 将小鼠麻醉后仰卧保定，胸前釆血部位用医用酒精棉球消毒。2） 由胸前正中线锁骨水平处进针，之后使注射器与胸部表面呈 30°〜40°，经胸大肌向颈静脉方向刺入。轻拉注射器针芯使之呈负压，待血液流入注射器内小心抽引注射器。3） 抽血完毕后用干棉球按压止血。

1、小鼠麻醉后将其仰卧固定在手术台上，剪去胸前区毛发，用医用 75% 酒精棉球将胸前区消毒。2、左手轻轻压住小鼠腹部，右手持 1 ml 注射器，针尖斜面朝上，从剑突与左肋弓的交界处刺入，与腹部约呈 20°，一直向上插入，整根针头几乎全部进入体内后，稍抽针芯，给予一点负压，观察有无血液流入注射器，如果没有则保持负压稍稍向后退针，此时可见血液流入注射器。3、见血后保持注射器位置不动，向后缓缓抽针芯，保

1）操作人员用一只手的手掌经背部捉住小鼠，同时用拇指和食指捏住小鼠头颈部皮肤，利用对颈部所加的压力使眼眶静脉丛充血；另一只手持特制的毛细玻璃管，从鼻侧眼角处向眼后方刺入眼眶静脉丛。2）血液自然流出，滴入事先准备好的收集管内，在得到实验所需血量后，除去加于颈部的压力，拔出毛细玻璃管，采血完毕用灭菌纱布或干棉球压迫止血。

1、小鼠麻醉后，等到其身体变软，将其仰卧固定在手术台上，用医用 75% 酒精棉球对腹部消毒。2、在耻骨联合处用镊子夹起肌膜和腹膜，用剪刀从耻骨联合至胸骨剑突沿腹正中线剪开肌膜和腹膜，将腹肌翻向左右两侧，将肠道推至一侧，暴露中间的血管（粉红色为动脉，暗红色为静脉）。3、用镊子轻轻扒开血管周围脂肪，用干棉球轻轻把覆盖在血管旁的多余脂肪擦干净，直到看到比较清晰的血管。4、右手持注射器，针尖斜面朝下，入针

1）由助手保定鼠，或将其放入固定器内。2）操作人员一只手抓住鼠尾，使左侧或右侧静脉向上，用镶子夹住医用酒精棉球擦拭消毒鼠尾至血管扩张,用灭菌纱布或干棉球擦干酒精。3）用刀片或剪刀切断尾尖处静脉，轻轻自尾根部挤向尾尖部。4）将流出的血液滴入事先准备好的收集管内或试纸上,釆血完毕后用灭菌纱布或干棉球压迫止血。

1、活着抽取腹水1）选择腹部膨大明显的动物。2）将小鼠仰卧保定、麻醉，下腹部局部皮肤用剪刀剪去毛发，腹部进针部位用医用 75% 酒精棉球消毒。3）左手用无菌止血钳小心提起腹部皮肤，穿刺部位为腹股沟与腹中线之间。右手用注射器针头轻轻垂直刺入腹腔。4）针头有落空感，证明已顺利进入腹腔，腹水多时可因腹压高而自动流出。如腹水太少，可轻轻转动针头回抽，有腹水流出则立即固定好针头及注射器位置继续抽吸。4）采取

1） 将小鼠仰卧保定，胸前进针部位用镶子夹住医用酒精棉球消毒。2） 由肋间刺入注射器，穿刺肋间肌时有一定阻力，当阻力消失、针有落空感时，表示已刺入胸腔，即可抽取胸水。3） 穿刺时应尽量避免损伤肋间血管和神经。操作中严防空气进入胸腔，始终保持胸腔负压。穿刺应用手控制针头的深度，以防穿刺过深刺伤肺脏。

1、脱颈椎处死小鼠，医用 75% 酒精消毒后，小鼠仰面固定于手术台上。2、手术剪刀和镊子剪开小鼠髋关节的皮肤，分离双下肢，去除肌肉，剥离出股骨，将股骨两端剪断，剪去两端软骨，露出红色的骨髓腔。3、用 5 ml 注射器吸取少量生理盐水，然后换装 1 ml 注射器的针头。注射器针头稍插入骨髓腔内，骨髓腔另一端连接 15 ml 离心管，缓慢推动注射器，冲洗出股骨中骨髓液，细胞后续可离心收集，或将骨髓液细

一、麻醉药剂准备常用的麻醉药剂包括注射麻醉药(三溟乙醇、水合氯醛等)和吸入麻醉药(异氟烷、七氟烷等)。气体麻醉方式效果要优于腹腔注射麻醉。当釆集时间较长时应该使用呼吸麻醉方式。二、小动物气体麻醉实验小动物置于麻醉盒中，调整麻醉机医用氧气流速为 IL/min ,异氟烷气体浓度为 1%〜2% ,诱导小动物至深度麻醉状态。三、小动物摆位将小动物置于传动系统传至扫描位置。为防止因各种原因抽搐导致动物移动而

一、检查设备仪器主要包括小动物超声系统、麻醉机等，检查仪器设备，必须使其处于正常运转状态，以保证实验顺利进行。二、动物麻醉光学成像可选用注射麻醉药剂和气体麻醉，注射可用三漠乙醇、戊巴比妥钠进行腹腔注射。气体麻醉可釆用异氟烷吸入性麻醉药剂，麻醉诱导和复苏均较快。大小鼠一般使用浓度为 2% 的异氟烷与氧气混合使用。三、注射底物如果进行生物发光成像，需在麻醉后注射荧光素底物。动物腹腔注射荧光素，最佳开始

一、小动物麻醉麻醉采用异氟烷吸入麻醉剂，大小鼠一般使用浓度为 2% 的异氟烷与氧气混合使用，30s 就可进入麻醉状态，可根据呼吸或心率调节麻醉药剂的浓度。在保证实验小动物安全的情况下，尽量使小动物进入深度麻醉，小鼠的心率应控制在 300〜400 次/min,呼吸平稳。二、实验小动物脱毛脱毛：选择脱毛效果较好的人用脱毛药剂即可，用棉棒蘸取适量脱毛药剂均匀涂布在脱毛部位，需完全覆盖脱毛部位，且浸润至表

一、设备检查仪器主要包括小动物核磁共振成像(magneticresonanceimaging,MRI)系统、相应 MRI 采集线圈、生理监护系统、呼吸麻醉机等，检查仪器设备，必须使其处于正常运转状态，以保证实验顺利进行。二、小动物气体麻醉麻醉采用异氟烷吸入性麻醉药剂，大小鼠一般使用 2% 的异氟烷与氧气混合使用，30s 就可进入麻醉状态，可根据呼吸或心率调节麻醉剂浓度。在保证实验小动物安全的情况

一、 麻醉剂准备常用的麻醉药剂包括注射麻醉药（三漠乙醇）和呼吸麻醉药（异氟烷、七氟烷等），PET 扫描前根据情况合理选择麻醉药剂的种类和剂量，以保证扫描顺利进行。气体麻醉方式效果要优于腹腔注射麻醉。当釆集时间较长时，应该使用呼吸麻醉方式。二、小动物气体麻醉实验小动物置于麻醉盒中，釆用通入异氟烷方式麻醉动物，大、小鼠一般采用 2% 异氟烷与氧气混合使用，30s 即可进入麻醉状态，可根据呼吸和心率调节

1）将小鼠放在操作台或饲养盒盖上。2）操作人员一只手抓住鼠尾根部，另一只手的拇指和食指迅速用力往下按住其头部。3）两手同时用力使之颈椎脱臼，造成脊髓与延髓断离，小鼠立即死亡。4）检査小鼠呼吸、心跳是否停止，确认动物死亡。

1）往小鼠腹腔或静脉注射适量的全身麻醉药剂（戊巴比妥钠或三漠乙醇）。2）待小鼠进入麻醉状态后，用手术刀或剪刀切断其颈动脉或股动脉。3）检査呼吸、心跳是否停止,确认动物死亡。

1） 将动物放入动物 CO₂ 多功能麻醉机内。2） 选择“小白鼠安乐死程序”“大白鼠安乐死程序”或“用户自定义程序”，打开 CO₂ 钢瓶阀门。3）待机器停止后，关闭 CO₂ 钢瓶阀门。4）检查动物呼吸、心跳是否停止，确认动物死亡。

1）使用小鼠吸入麻醉机，使动物吸入过量麻醉剂，一般选择异氟烷。2）检查小鼠呼吸、心跳是否停止，确认死亡。

1、小鼠麻醉后，待其身体变软，仰面固定于手术台上，75% 酒精消毒表面皮肤。2、沿正中线剪开皮肤，露出腹膜。如果解剖的前一步为腹主动脉采血，则从剑突位置剪至下颌，然后向左右两侧剥离皮肤。3、观察有无水肿、出血等。4、观察皮下有无肿瘤，浅表淋巴结有无肿大。如实验要求对浅表淋巴结进行取材，则将其取下后放入事先标记好的包埋盒内再固定。

1、小鼠麻醉后，待其变软，固定于手术台上，75% 酒精消毒表面皮肤。2、观察腹膜、腹腔内脏器位置、膈肌及有无腹水。3、肝、胆囊观察首先检查肝脏大小、被膜的性状、边缘的厚薄、肝脏硬度和色泽等。然后剪断肝镰状韧带，用镊子小心取出肝，观察各叶横膈及侧面，称重后切开数个切面，观察切面的出血量、色泽、有无脓肿或坏死等变化。同时观察包膜、有无膨隆等。剪开胆囊观察黏膜和胆汁色泽、浑浊程度等。4、脾观察剪开胃、肾

1） 用组织镶提起剑突，沿左右两侧肋软骨结合处向上剪断至胸锁关节，观察胸膜、胸腺、肺及胸水，如有异常内容物要观察量、色等性状。取胸骨横切，观察骨髓颜色并取出。2） 剥离胸腺并取出。3） 观察心包色泽、光滑度及心包积水量、色、性状。4） 在气管分支部位上方切断气管，观察肺门淋巴结。取出胸主动脉、食管、肺及心脏，分别分离胸主动脉和食管。切断心脏顶端动静脉起始部，将心脏和肺分离。5）剪断颈部胸骨舌骨肌及