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3D培养的细胞球用4%PFA固定后梯度转移到MeOH中,在-20°C保存了一段时间后取出,首先在dent's bleach中孵育2h, 用MeOH洗了三遍,再放在-80和室温间切换四次进行穿膜。梯度转移回PBS后在驴血清和0.1%Triton-PBS中4度封闭一夜,第二天在封闭溶液中加抗体继续4°孵育了三天,可是拿出来的时候看不到细胞球,显微镜下可以看到细胞散了在孔的底部,这是什么原因导致的,哪一步出问题了了呢?
loveliufudan
下面是一些可能的原因:
固定过程中使用的PFA浓度或固定时间过长可能会导致细胞球破裂。你使用了4%的PFA,这个浓度对于不同的细胞类型可能有不同的影响,过浓的PFA浓度或固定时间过长可能会破坏细胞膜,导致细胞球破裂。建议使用更低浓度的PFA,比如1% PFA,在更短时间内固定细胞。
梯度转移过程中可能会出现问题。转移到MeOH中的过程可能会导致细胞球破裂。此外,转移到PBS的过程中,可能出现过度搅拌或过度震动的情况,也可能导致细胞球破裂。建议梯度转移时注意轻轻操作,避免搅拌过度。
孔板处理过程中的穿膜过程可能会破坏细胞球。在处理过程中,细胞球可能会碰到孔板壁或者穿膜过程中的剪切力,导致细胞球破裂。建议在穿膜的过程中注意轻轻操作。
封闭和抗体处理过程中可能会导致细胞球破裂。在封闭和抗体处理过程中,细胞球可能会受到温度、剪切力、抗体等多种因素的影响,导致细胞球破裂。建议在处理过程中注意细胞球的状态,减少对其的干扰。
毛利小五郎的徒弟
考虑是在pbs中封闭的时间过长,或者浓度过大,可以减少封闭时间
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