请教C2C12细胞转染问题

分化前转染成功率高一些，脂质体成功率高可以参考。

C2C12细胞正确转染

常规转染技术分为稳定转染（转染）和瞬时转染两类。稳定转染是指外源DNA 既可以整合到宿主染色体中，也可能作为一种游离体存在。瞬时转染则指外源DNA/RNA 不整合到宿主染色体中，一个宿主细胞中可存在多个拷贝数，产生高水平的表达，但通常只持续几天，多用于启动子和其它调控元件的分析。

转染方法不同，对转染结果影响很大。常见的转染方法有：

1. 磷酸钙法：该方法利用磷酸钙DNA 复合物吸附细胞膜被细胞内吞原理得到瞬时或稳定转染结果，操作简便但重复性差，不可用于原代细胞的转染。

2. DEAE-右旋糖苷法：带正电的DEAE-右旋糖苷与核酸带负电的磷酸骨架相互作用形成的复合物被细胞内吞，可用于瞬时转染，方法相对简便、结果可重复但对细胞有一定的毒副作用。

3. 电穿孔法：利用高脉冲电压破坏细胞膜电位，DNA通过膜上形成的小孔导入。稳定转染，瞬时转染均适用。适用性广但细胞致死率高，DNA 和细胞用量大， 需根据不同细胞类型优化电穿孔实验条件。

4. 病毒介导法：通过侵染宿主细胞将外源基因整合到染色体中。适用于稳定转染，可用于难转染的细胞、原代细胞，体内细胞等。

5. 阳离子脂质体法：带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物被细胞内吞从而形成稳定转染或瞬时性转。该方法适用性广，转染效率高，重复性好，但转染时需除血清。转染效果随细胞类型变化大。

6. 显微注射法：用显微操作将DNA 直接注入靶细胞核，适用于稳定转染和瞬时转染，转染细胞数有限，多用于工程改造或转基因动物的胚胎细胞。

C2C12细胞是一种骨骼肌前体细胞，因此转染的时机取决于实验目的。一般来说，如果您想研究某种基因或蛋白质对C2C12细胞分化的影响，您可以在细胞分化前转染，以便在细胞分化期间观察其影响。

至于转染方法，脂质体和病毒转染都可以使用。脂质体转染适用于短期表达和实验，而病毒转染则适用于长期表达和稳定转染。选择哪种方法取决于您的实验需求和条件。

需要注意的是，在进行转染前，建议您对转染试剂和条件进行优化和筛选，以确保获得最佳的转染效率和细胞存活率。

C2C12常见的转染方法有：

1. 磷酸钙法：该方法利用磷酸钙DNA 复合物吸附细胞膜被细胞内吞原理得到瞬时或稳定转染结果，操作简便但重复性差，不可用于原代细胞的转染。

2. DEAE-右旋糖苷法：带正电的DEAE-右旋糖苷与核酸带负电的磷酸骨架相互作用形成的复合物被细胞内吞，可用于瞬时转染，方法相对简便、结果可重复但对细胞有一定的毒副作用。

3. 电穿孔法：利用高脉冲电压破坏细胞膜电位，DNA通过膜上形成的小孔导入。稳定转染，瞬时转染均适用。适用性广但细胞致死率高，DNA 和细胞用量大， 需根据不同细胞类型优化电穿孔实验条件。

4. 病毒介导法：通过侵染宿主细胞将外源基因整合到染色体中。适用于稳定转染，可用于难转染的细胞、原代细胞，体内细胞等。

5. 阳离子脂质体法：带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物被细胞内吞从而形成稳定转染或瞬时性转。该方法适用性广，转染效率高，重复性好，但转染时需除血清。转染效果随细胞类型变化大。

6. 显微注射法：用显微操作将DNA 直接注入靶细胞核，适用于稳定转染和瞬时转染，转染细胞数有限，多用于工程改造或转基因动物的胚胎细胞。

脂质体能转进去，实在难以转进去的话可以考虑慢病毒