小慧科研研究
实验目的:探索确定生工合成的地高辛探针的最佳使用浓度;
实验操作:将探针稀释不同浓度点在尼龙膜上,80℃固定2小时,然后进行抗DIG-AP抗体抗体(用dd H2O做抗体稀释)孵育(这里省略了洗涤和封闭环节,因为没有做杂交和没有非特异性位点),然后在AP缓冲液(Tris-HCL、Nacl)中平衡2min,加CDP-Star发光底物;
实验结果:用化学发光成像仪成像只有背景,无斑点信号
问题:1.请问我这种探针浓度的测试方法是否正确?
2.背景强而无斑点信号的主要原因是什么?
balalaLy
你要探索最佳的使用浓度也得按照完整的protocol来,杂交和封闭都是必要步骤,不能省略。
土井挞克树
背景强考虑是非特异性结合的部分太多,建议更换特异度高的抗体。没有斑点可能是样本降解了,建议重新上样
loveliufudan
对于您的第一个问题,探索生工合成的地高辛探针的最佳使用浓度,您所进行的实验方法是正确的。通常情况下,为了确定最佳的探针使用浓度,需要尝试不同的探针浓度,以找到适合您的样品的最佳浓度。
对于您的第二个问题,背景强而无斑点信号的主要原因可能有以下几个方面:
1.探针杂交条件:如果温度、时间和混合液的组成不合适,则可能导致背景信号增加,但斑点信号不增加。
2.抗体抗体条件:如果抗体抗体浓度、孵育时间或孵育温度不适当,则可能会导致背景信号增加,但斑点信号不增加。
3.缓冲液组成:缓冲液中的组分可能导致背景信号增加。您可以尝试调整缓冲液的pH值、NaCl浓度等参数。
4.底物问题:底物的稳定性和浓度可能对实验结果产生影响。您可以尝试使用不同浓度的底物或不同的发光底物。
sswei
主要原因:抗体浓度较高,应选择最适宜的抗体稀释度,优化稀释条件;抗体储存时间较长或储存条件不佳导致抗体失活:宜选择新的抗体。孵育中洗膜不充分:适当增加洗膜时间和次数;确保在充分震荡的条件下孵育膜,并且抗体充分覆盖膜表面。Western转膜液、封闭液等不新鲜或被污染,宜现配现用。
Dr_劉医生
探针方法没有问题,一般建议在0.5-1ng/μl的浓度下进行Southern blotting检测。如果背景强而无斑点信号,可能是由于以下原因:1)DNA的质量不好;2)探针的质量不好;3)探针的浓度过高或过低;4)探针的长度过长或过短;5)探针的序列与目标DNA不匹配。
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