zj佐罗
是蛋白没有分开?蛋白没有分开,可以考虑延长电泳时间,或是使用更大的胶,或是做浓度梯度的胶
还是蛋白拖带?蛋白拖带,考虑先纯化蛋白,用高浓度胶进行电泳,电泳槽在电泳过程中放在冰水,保持低温,转膜过程也放在冰水中进行,防止降解。希望对你有帮助。
daisy569
减少样本的上样量,也许条带不会那么宽了
Eason老歌迷
大概可能有三个原因。
1.电泳缓冲液用的次数过多,一般来说电泳缓冲液用过两次以后电泳的效果就会变差。2.电泳的浓缩胶和分离胶缓冲液的PH没有调好或浓度没有调好。浓缩胶和分离胶胶浓度的变化和PH的变化让电泳样品压缩在一起。一般情况下浓缩胶缓冲液(Tris—HCl,pH6.8)、分离胶缓冲液(Tri s—HCl, pH8.8)。3.提取的粗蛋白样品里面有杂质,细胞里面除了含有蛋白质还有核酸、多糖、纤维素等大分子,这些大分子浓度较高时会使样品黏连,造成条带跑的不够整齐。
如果你是从胞浆里提取的粗蛋白,怀疑可能是核酸或多糖过多造成的样品黏连,建议12000转离心3min,去除底部杂质,取上清液跑电泳试试。
bamboopiggy
宽没事啊,只要趋势对就好,或者你别用10孔胶,用15孔胶。
天一湖医者
蛋白量太大,一抗浓度和时间太长。
解决办法:根据情况调整蛋白量,同时一抗浓度和时间也可以缩短。
府宅
弥散的太宽,也可能是胶没有完全凝固,建议配胶时注意Tris-HCL的PH值,对蛋白条带的影响很大。APS要保证新鲜没有过期,一般在-20℃储存,在4℃条件下保存不超过一周,APS过期会导致蛋白胶不能完全凝,就导致指示剂和目的条带弥散
dxy_gwrp7ndq
WB实验要根据目的条带的大小选择合适浓度的胶,胶的浓度越低,指示剂和蛋白就能跑的越分散,看起来就相对宽一点。
未来9
可能是加样量过多,弥散至孔周围了,减少上样量或者使用5X上样缓冲液。
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