实验方法|动植物组织如何提取 mRNA?
丁香实验
一、材料
水稻叶片或小鼠肝组织。
二、设备
研钵,冷冻台式高速离心机,低温冰箱,冷冻真空干燥器,紫外检测仪,电泳仪,电泳槽。
三、试剂
1. 无 RNA 酶灭菌水:用将高温烘烤的玻璃瓶(180℃ 2小时)装蒸馏水,然后加入 0.01% 的DEPC(体积/体积),处理过夜后高压灭菌。
2. 75% 乙醇:用 DEPC 处理水配制 75% 乙醇,(用高温灭菌器皿配制),然后装入高温烘烤的玻璃瓶中,存放于低温冰箱。
3. 1× 层析柱加样缓冲液;20 mmol/L Tris-HCl(pH7.6),0.5 mol/L NaCl,1 mmol/L EDTA(pH8.0),0.1% SDS。
4. 洗脱缓冲液:10 mmol/L Tris-HCl(pH7.6),1 mmol/L EDTA(pH8.0),0.05% SDS。
四、操作步骤
(一)动植物总RNA提取- Trizol法
Trizol 法适用于人类、动物、植物、微生物的组织或培养细菌,样品量从几十毫克至几克。用Trizol 法提取的总 RNA 绝无蛋白和 DNA 污染。RNA 可直接用于 Northern 斑点分析,斑点杂交, Poly(A)+ 分离,体外翻译,RNase 封阻分析和分子克隆。
1. 将组织在液 N 中磨成粉末后,再以 50-100 mg 组织加入 1 ml Trizol 液研磨,注意样品总体积不能超过所用 Trizol 体积的 10%。
2. 研磨液室温放置 5 分钟,然后以每 1 mlTrizol 液加入 0.2 ml 的比例加入氯仿,盖紧离心管,用手剧烈摇荡离心管 15 秒。
3. 取上层水相于一新的离心管,按每 mlTrizol 液加 0.5 ml 异丙醇的比例加入异丙醇,室温放置 10分钟,12000 g离心 10 分钟。
4. 弃去上清液,按每 ml Trizol 液加入至少 1 ml的比例加入 75% 乙醇,涡旋混匀,4 ℃ 下7500 g离心 5 分钟。
5. 小心弃去上清液,然后室温或真空干燥 5-10 分钟,注意不要干燥过分,否则会降低 RNA 的溶解度。然后将 RNA 溶于水中,必要时可 55 ℃-60 ℃ 水溶 10 分钟。RNA 可进行 mRNA 分离,或贮存于 70% 乙醇并保存于 -70 ℃。
[注意]
1. 整个操作要带口罩及一次性手套,并尽可能在低温下操作。
2. 加氯仿前的匀浆液可在 -70 ℃ 保存一个月以上,RNA 沉淀在 70% 乙醇中可在 4 ℃ 保存一周,-20 ℃ 保存一年。
(二)mRNA 提取
由于 mRNA 末端含有多 poly(A)+,当总 RNA 流径 oligo(dT) 纤维素时,在高盐缓冲液作用下,mRNA 被特异的吸附在 oligo(dT) 纤维素柱上,在低盐浓度或蒸馏水中,mRNA 可被洗下,经过两次 oligo(dT) 纤维素柱,可得到较纯的 mRNA。
1. 用 0.1 mol/L NaOH 悬浮 0.5-1.0 g oligo(dT)纤维素。
2. 将悬浮液装入灭菌的一次性层析柱中或装入填有经 DEPC 处理并经高压灭菌的玻璃棉的巴斯德吸管中,柱床体积为 0.5-1.0 ml,用 3 倍柱床体积的灭菌水冲洗柱床。
3. 用 1x 柱层析加样缓冲液冲洗柱床,直到流出液的 pH 值小于 8.0。
4. 将(一)中提取的 RNA 液于 65 ℃ 温育 5 分钟后迅速冷却至室温,加入等体积 2x 柱层析缓冲液,上样,立即用灭菌试管收集洗出液,当所有 RNA 溶液进入柱床后,加入 1 倍柱床体积的 1x 层析柱加样溶液。
5. 测定每一管的 OD260,当洗出液中 OD 为 0 时,加入 2-3 倍柱床体积的灭菌洗脱缓冲液,以 1/3 至 1/2 柱床体积分管收集洗脱液。
6. 测定 OD260,合并含有 RNA 的洗脱组分。
7. 加入 1/10 体积的 3 M NaAc(pH5.2), 2.5 倍体积的冰冷乙醇, 混匀, -20 ℃ 30 分钟。
8. 4 ℃ 下 12000 g 离心 15 分钟,小心弃去上清液,用 70% 乙醇洗涤沉淀,4 ℃ 下 12000 g离心 5 分钟。
9. 小心弃去上清液,沉淀空气干燥 10 分钟,或真空干燥 10 分钟。
10. 用少量水溶解RNA液,即可用于 cDNA 合成(或保存在 70% 乙醇中并贮存于 -70 ℃)。
[注意]
1. mRNA 在 70% 乙醇中 -70 ℃可保存一年以上。
2. oligo(dT) 纤维素柱用后可用 0.3 mol/l NaOH 洗净,然后用层析柱加样缓冲液平衡,并加入0.02% 叠氮钠(NaN3) 冰箱保存,重复使用。每次用前需用 NaOH 水层析柱加样缓冲液依次淋洗柱床。