细胞生物基本方法:常用转化细胞
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几种常用转化细胞和转化技术
1 )致癌化学物转化细胞:转化叙利亚地鼠胚胎细胞实验
1. 取材:妊娠后第 13 天取材,取数个同窝胚胎,去头和内脏,在无菌条件下剪碎至米粒大小,再用 0.25 %胰蛋白酶(含 0.01 % EDTA ) 37 ℃消化 30 分钟,滤过、低速离心、吸除消化液、加入营养液、制备成细胞悬液、接种入 75cm/ 培养瓶中,接种密度 10 ~ 20 × 106 /75cm , 37 ℃培养 2 ~ 3 天,在顺利情况下能迅速长满瓶面。
2. 贮存:选大批生长状态良好的细胞冻存,储以备用。
3. 致癌物处理:取冻存细胞,解冻,接种于 25ml 培养瓶中,每瓶含细胞 10 万~ 30 万。待细胞生长进入指数增生期时,向培养瓶中加入致癌剂 MNNG 。致癌剂量 1 ~ 3 微克 / 毫升营养液。在 37 ℃温箱中培养 12 ~ 48 小时。
4. 低血清培养:弃掉 MNNG 作用液,用温 PBS 洗 1 ~ 3 次,加入含 20 %小牛血清,继续置温箱中培养 2 ~ 3 周,然后改用含 5 %血清培养液培养。低血清培养液不利于正常细胞生长,但已转化的细胞仍能增殖和形成转化灶。
5. 转化灶形成和分离:在成功情况下,用致癌物处理过的细胞于 10 天后在正常细胞之间,可产生数量不等的转化灶。
2 )病毒转化细胞
1. 血液制备:柠檬酸( Citric Acide )或肝素抗凝取血 1 ~ 2ml ,分装入管中,每管 0.5ml 全血,置于 4 ℃冰箱中 30 分钟。
2. EBV 病毒转化:从液氮中取出冻存的 0.5ml 全血,在 37 ℃水中迅速解冻。
3. 将解冻细胞与 10ml 不含血清的 RPMI 1640 混合, 2500 rpm 离心 2 分钟,弃上清,用含 20 %的胎牛血清、青、链霉素和庆大霉素的 RPMI 1640 生长培养基重悬细胞。
4. 加入 0.3 ~ 0.5ml 的 EBV 病毒液, 37 ℃水浴 30 分钟~ 2 小时,并不时摇动,以免出现凝块。
5. 分装入 50ml 的培养瓶中,同时补加适量培养液,置入含 5 % CO2 温箱中, 100 %温度下培养。
6. 一周后加补入 2ml 培养基。
7. 经常镜检培养物,每 3 ~ 4 天加液或换液,随细胞数量增多,可分装入大瓶中培养。
3) 癌基因转化细胞:基因组 DNA 转染法
1. 提取基因 DNA (含癌基因)。
2. DNA 准备:取供体 DNA50 ~ 100 微克,加 3M NaCl 或醋酸钠使最终浓度至 0.3M 混匀。
3. 再加 2 倍体积无水乙醇, 3000 转 / 分离心 10 分钟,去上清。
4. 加入转染缓冲液,待 DNA 充分融解后,再加入 2.5M CaCl2 ,令最终浓度为 125mM ,用吸管轻轻吹打三次。置室温下 10 ~ 30 分钟,待液体透明度降低,出现微浊蓝色时,即可用于转染受体细胞。
5. 细胞:取生长状态良好、处于半汇合阶段的指数增生期细胞,在转染前 24 小时,更换培养液 1 次。
6. 转染:向每瓶中加 DNA -磷酸钙沉淀物 0.5 ~ 1ml/ 瓶,置 37 ℃作用 4 ~ 6 小时。
7. 培养:弃去培养液,用 15 %甘油处理 3 分钟,无血清培养漂洗 1 次,加入新培养液, 37 ℃温箱培养 24 小时。
8. 传代:按 1 : 5 或 1 : 10 分瓶传代,每 2 ~ 3 天换液 1 次,接近汇合时血清用量降至 5 %,培养 2 ~ 3 周。
9. 检测:逐日观察,待出现转化灶后,分离入另瓶中培养。