实验动物的取血方法
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（一）大鼠、小鼠
1. 尾部取血 可采用针刺尾静脉和剪尾尖两种方法。
（1）针刺尾静脉：先固定动物，用酒精棉球消毒尾部，然后对准尾尖部向上数厘米处的静脉用注射针刺入后立即拔出。采血后用局部压迫、烧烙等方法进行止血。
（2）剪尾尖：将动物固定或麻醉后，露出鼠尾，将尾巴置于45℃～50℃热水中浸泡数分钟，使血管扩张。擦干鼠尾后，将尾尖剪去1～2mm（小鼠）或5mm（大鼠）。从尾根部向尾尖部按摩，血即从断端流出。
2. 眼部取血 可采用眼球后静脉丛取血法。用7号针头连接1ml的注射器或10ml长玻璃管（一端烧制拉成直径1～1.5mm的毛细管）。取血时左手抓住鼠两耳之间的皮肤使头固定，轻轻压迫颈部两侧，阻碍头部静脉回流，使眼球充分外突，球后静脉丛充血。右手持注射器或玻管，将其插入内眦部，向眼底方向旋转插入。插入深度：小鼠为2～3mm，大鼠为4～5mm。因血压关系，血液自行流入管内，拔出针头或玻管，放松左手。为防止穿刺孔出血，可用纱布压迫眼球，达到止血目的。数分钟后可在同一穿刺孔重复取血。小鼠一次可采得血0.2ml，大鼠0.5ml（图9-22）。
3. 大血管取血 可采用颈动（静）脉、股动（静）脉、腹主动脉等方法取血。在这些部位取血均须麻醉后固定动物，然后作动（静）脉分离手术，使其充分暴露，用注射器沿大血管平行方向刺入，抽取所需血量。或直接用剪刀剪断大血管吸取，但切断动脉时，要防止血液喷溅。
4. 心脏取血 先将动物仰卧固定，左手食指在左侧第3～4肋间触到心尖搏动最强处，右手用连有针头的注射器在此穿刺。由于心脏跳动血液进入注射器。小鼠约0.5～0.6ml，大鼠约0.8～1.2ml。
5. 断头取血 这需要二人配合操作，采血者用左手将大（小）鼠的头颈部握紧，右手抓住躯干和后肢，将颈部暴露。助手用剪刀将鼠颈剪断（用力要大），采血者应迅速将大（小）鼠倒置，让血滴入容器。此方法用于实验结束后血液采集量大时。
（二）豚鼠
1. 耳缘剪口采血 将耳消毒后，用锐器割破耳缘，在切口边缘涂抹20%枸橼酸钠溶液，阻止血凝，则血可自切口自动流出，进入盛器。操作时，使耳充血效果较好。此法能采血0.5ml左右。
2. 心脏采血 取血前应探明心脏搏动最强部位，通常在胸骨左缘的正中，选心跳最明显的部位作穿刺。针头宜稍细长些，以免发生手术后穿刺孔出血。因豚鼠身体较小，一般可不必将动物固定在解剖台上，而可由助手握住前后肢进行采血。成年豚鼠采血应不超过10ml为宜。
3. 股动脉采血 将动物仰位固定在手术台上，减去腹股沟区的毛，麻醉后局部用碘酒消毒。切开长约2～3cm的皮肤，使股动脉暴露及分离，然后用镊子提起股动脉，远端结扎，近端用止血钳夹住，在动脉中央剪一小孔，用无菌玻璃小导管或聚乙烯、聚四氟乙烯管插入，放开止血钳，血液既由导管流出。一次可采血10～20ml。
4. 背中足静脉取血 固定动物，将其右或左后关节伸直，将动物脚背面用酒精消毒，找出背中足静脉后，一手拉住豚鼠的趾端，一手用注射器刺入静脉。拔针后立即出血，呈半球状隆起。采取后应压迫止血。
（三）家兔
1. 耳部取血 可采用耳缘静脉或耳中央动脉取血。首先拔去血管表面皮肤的毛，轻揉兔耳或用酒精涂抹皮肤使血管扩张。用注射器可从耳中央动脉抽取数毫升血。也可用针头刺破耳缘静脉末梢取血。
2. 大血管取血 可采用颈静脉、股静脉和后肢小隐静脉取血。
（1）颈静脉和股静脉取血：首先麻醉做血管分离术。然后用注射器沿血管方向刺入抽取血液。
（2）后肢小隐静脉取血：首先使动物仰卧然后固定，在小腿上端扎橡皮管，小腿外侧皮下可见充盈的静脉，经皮穿刺可以取血。
3. 心脏取血 在第三肋间胸骨左缘3mm心脏搏动最强处，将针头垂直刺入心脏，血即进入注射器。一次可取血20～25ml。
（四）狗和猫
1. 耳缘静脉取血 采血量较少时可用此法。用针头刺破静脉采血或直接用空针抽取。
2. 前、后肢静脉取血 前肢选用内侧皮下头静脉，位于前肢前部，在下1/3处向内侧走行；后肢选用外侧的隐静脉，位于跗关节外侧，距跗关节上方5～10cm处的皮下，由前斜向后上方走行。采血时，先将狗固定，用止血带扎住穿刺部位的上方，使静脉充盈。操作者手持注射器采血。
3. 颈静脉取血 此方法可取较多的血。先将狗麻醉固定，固定时将颈部尽量后仰，助手用手压住颈静脉入胸部的皮肤，使静脉怒张。操作者用左手绷紧进针部位的皮肤，右手拿注射器沿血管向心端刺入。采血后应注意止血。
还可从狗的心脏或股动、静脉采血。但技术要求较高，不容易成功，除非有特殊要求，否则可选用以上三种方法。
猫的取血方法与狗基本相似，可采用前肢皮下头静脉、后肢股静脉、耳缘静脉取血。采血量较大时，可从颈静脉抽取。
1. 尾部取血 可采用针刺尾静脉和剪尾尖两种方法。
（1）针刺尾静脉：先固定动物，用酒精棉球消毒尾部，然后对准尾尖部向上数厘米处的静脉用注射针刺入后立即拔出。采血后用局部压迫、烧烙等方法进行止血。
（2）剪尾尖：将动物固定或麻醉后，露出鼠尾，将尾巴置于45℃～50℃热水中浸泡数分钟，使血管扩张。擦干鼠尾后，将尾尖剪去1～2mm（小鼠）或5mm（大鼠）。从尾根部向尾尖部按摩，血即从断端流出。
2. 眼部取血 可采用眼球后静脉丛取血法。用7号针头连接1ml的注射器或10ml长玻璃管（一端烧制拉成直径1～1.5mm的毛细管）。取血时左手抓住鼠两耳之间的皮肤使头固定，轻轻压迫颈部两侧，阻碍头部静脉回流，使眼球充分外突，球后静脉丛充血。右手持注射器或玻管，将其插入内眦部，向眼底方向旋转插入。插入深度：小鼠为2～3mm，大鼠为4～5mm。因血压关系，血液自行流入管内，拔出针头或玻管，放松左手。为防止穿刺孔出血，可用纱布压迫眼球，达到止血目的。数分钟后可在同一穿刺孔重复取血。小鼠一次可采得血0.2ml，大鼠0.5ml（图9-22）。
3. 大血管取血 可采用颈动（静）脉、股动（静）脉、腹主动脉等方法取血。在这些部位取血均须麻醉后固定动物，然后作动（静）脉分离手术，使其充分暴露，用注射器沿大血管平行方向刺入，抽取所需血量。或直接用剪刀剪断大血管吸取，但切断动脉时，要防止血液喷溅。
4. 心脏取血 先将动物仰卧固定，左手食指在左侧第3～4肋间触到心尖搏动最强处，右手用连有针头的注射器在此穿刺。由于心脏跳动血液进入注射器。小鼠约0.5～0.6ml，大鼠约0.8～1.2ml。
5. 断头取血 这需要二人配合操作，采血者用左手将大（小）鼠的头颈部握紧，右手抓住躯干和后肢，将颈部暴露。助手用剪刀将鼠颈剪断（用力要大），采血者应迅速将大（小）鼠倒置，让血滴入容器。此方法用于实验结束后血液采集量大时。
（二）豚鼠
1. 耳缘剪口采血 将耳消毒后，用锐器割破耳缘，在切口边缘涂抹20%枸橼酸钠溶液，阻止血凝，则血可自切口自动流出，进入盛器。操作时，使耳充血效果较好。此法能采血0.5ml左右。
2. 心脏采血 取血前应探明心脏搏动最强部位，通常在胸骨左缘的正中，选心跳最明显的部位作穿刺。针头宜稍细长些，以免发生手术后穿刺孔出血。因豚鼠身体较小，一般可不必将动物固定在解剖台上，而可由助手握住前后肢进行采血。成年豚鼠采血应不超过10ml为宜。
3. 股动脉采血 将动物仰位固定在手术台上，减去腹股沟区的毛，麻醉后局部用碘酒消毒。切开长约2～3cm的皮肤，使股动脉暴露及分离，然后用镊子提起股动脉，远端结扎，近端用止血钳夹住，在动脉中央剪一小孔，用无菌玻璃小导管或聚乙烯、聚四氟乙烯管插入，放开止血钳，血液既由导管流出。一次可采血10～20ml。
4. 背中足静脉取血 固定动物，将其右或左后关节伸直，将动物脚背面用酒精消毒，找出背中足静脉后，一手拉住豚鼠的趾端，一手用注射器刺入静脉。拔针后立即出血，呈半球状隆起。采取后应压迫止血。
（三）家兔
1. 耳部取血 可采用耳缘静脉或耳中央动脉取血。首先拔去血管表面皮肤的毛，轻揉兔耳或用酒精涂抹皮肤使血管扩张。用注射器可从耳中央动脉抽取数毫升血。也可用针头刺破耳缘静脉末梢取血。
2. 大血管取血 可采用颈静脉、股静脉和后肢小隐静脉取血。
（1）颈静脉和股静脉取血：首先麻醉做血管分离术。然后用注射器沿血管方向刺入抽取血液。
（2）后肢小隐静脉取血：首先使动物仰卧然后固定，在小腿上端扎橡皮管，小腿外侧皮下可见充盈的静脉，经皮穿刺可以取血。
3. 心脏取血 在第三肋间胸骨左缘3mm心脏搏动最强处，将针头垂直刺入心脏，血即进入注射器。一次可取血20～25ml。
（四）狗和猫
1. 耳缘静脉取血 采血量较少时可用此法。用针头刺破静脉采血或直接用空针抽取。
2. 前、后肢静脉取血 前肢选用内侧皮下头静脉，位于前肢前部，在下1/3处向内侧走行；后肢选用外侧的隐静脉，位于跗关节外侧，距跗关节上方5～10cm处的皮下，由前斜向后上方走行。采血时，先将狗固定，用止血带扎住穿刺部位的上方，使静脉充盈。操作者手持注射器采血。
3. 颈静脉取血 此方法可取较多的血。先将狗麻醉固定，固定时将颈部尽量后仰，助手用手压住颈静脉入胸部的皮肤，使静脉怒张。操作者用左手绷紧进针部位的皮肤，右手拿注射器沿血管向心端刺入。采血后应注意止血。
还可从狗的心脏或股动、静脉采血。但技术要求较高，不容易成功，除非有特殊要求，否则可选用以上三种方法。
猫的取血方法与狗基本相似，可采用前肢皮下头静脉、后肢股静脉、耳缘静脉取血。采血量较大时，可从颈静脉抽取。
