实验动物的给药途径及取血方法

一、实验动物的用药途径及方法

动物给药的途径和方法可根据动物种类、实验目的和药物而定，常用的方法简介如下。

（一）经口给药

有口服与灌胃两种方法。口服法可将药物放入饲料或溶于饮水中，使动物自行摄取。为保证剂量准确，应使用灌胃法，适用于小白鼠、大白鼠及家兔等动物。

1. 小鼠、大鼠（或豚鼠）灌胃时将灌胃针安在注射器上，吸入药液。左手抓住鼠背部及颈部皮肤将动物固定，右手持注射器，将灌胃针插入动物口中，用灌胃针管压其上腭，使口腔和食道成一条直线，再沿咽后壁徐徐插入食管。针插入时应无阻力。若感到阻力或动物挣扎时，应拔出重插，以免损伤或穿破食管以及误入气管。

一般当灌胃针插入小鼠3～4cm，大鼠或豚鼠4～6cm后可将药物注入。常用的灌胃量小鼠为0.2～1ml，大鼠1～4ml，豚鼠为1～5ml。

2. 猴、狗、猫、兔 灌胃时，先将动物固定，用特制的扩口器放入动物口中，并用绳将它固定于嘴部。将带有弹性的橡皮导管（如导尿管），经扩口器上的小圆孔插入，沿咽后壁而进入食管。此时应检查导管是否插入食管，可将导管外口置于一盛水的烧杯中，如不发生气泡，即认为此导管是在食管中，即可将药液灌入。灌胃完毕后，先拔出导尿管，再取下张口器。

各种动物一次灌胃能耐受的最大容积根据体重大小而不同：小鼠为0.5～1.0ml，大鼠为3～7ml，豚鼠为4～6ml，家兔为80～150ml，狗为200～500ml。

（二）注射给药

1. 皮下注射　皮下注射给药是将药液推入皮下结缔组织，经毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环的过程。注射时，常规消毒注射部位皮肤，用左手拇指和食指提起皮肤，注射针头取一钝角角度刺入皮下，将针头轻轻向左右摆动，易摆动则表示已刺入皮下，再轻轻抽吸，如无回血，可缓慢地将药物注入皮下。

拔针时左手拇、食指捏住进针部位片刻，以防止药物外漏。皮下注射部位一般大白鼠在侧下腹部；豚鼠在后大腿内侧或小腹部；兔在背部或耳根部注射；狗、猫多在大腿外侧；蛙可在脊背部淋巴腔注射。

2. 皮内注射　是将药液注入皮肤的表皮与真皮之间。此法可用于观察皮肤血管的通透性变化或皮内反应，多用于接种、过敏实验等。操作时须将注射的局部脱去被毛，常规消毒后，用左手拇指和食指按住皮肤并使之绷紧，在两指之间，用注射器连4号小针头，紧贴皮肤表层刺入皮内，然后再向上挑起并再稍刺入，即可注射药液，皮肤表面此时可见一白色小皮丘。

3. 肌肉注射　一般多选用臀部或股部肌肉发达、无大血管通过的部位，注射时将针头迅速刺入肌肉，回抽无回血，即可进行注射。给大白鼠、小白鼠等小动物作肌肉注射时，用左手抓住鼠两耳和头部皮肤，右手取连有5号针头的注射器，将针头刺入大腿外侧肌肉，将药液注入。

4. 腹腔注射　常用于大鼠或小鼠给药。用左手捕捉固定动物，使腹部向上，鼠头略低于尾部，右手将注射针头自下腹部靠近腹白线的两侧刺入皮下，使针头向前推0.5～ 1.0cm，再以45°角穿过腹肌，缓缓注入药液。为避免伤及内脏，可使动物处于头低位，使内脏移向上腹。若实验动物为家兔，进针部位为下腹部的腹白线离开1cm处。

5. 静脉注射

（1）狗：狗静脉注射多选用前肢内侧头静脉或后肢小隐静脉，注射前应先剪去注射部位的被毛，用胶带扎紧静脉近心端，使血管充盈，针尖自远心端刺入血管，有回血后，固定针头，徐徐注入药液。

（2）家兔：一般选用外侧耳缘静脉。注射前应先拔去注射部位的被毛，用手指轻弹或轻揉兔耳，左手食指与中指夹住静脉的近心端，阻止静脉回流，使静脉充盈，用拇指和无名指固定耳缘静脉远心端，右手持针尽量从远端刺入，回抽有回血后用左手拇指固定针头，放开食指和中指，将药液注入。

（3）小鼠和大鼠：一般采用尾静脉注射，鼠尾静脉有3根，两侧及背侧各一根，左右两侧尾静脉较易固定，应优先选择。注射前先将动物固定在鼠筒或玻璃罩内，使鼠尾露出，在45℃～50℃热水中浸泡，或用酒精擦拭，使血管扩张。

用拇指和食指捏住尾根部，再以无名指和小指夹住尾端部，用中指从下托起尾巴固定，右手持注射器连4号细针头，从尾下1/4处进针，如针确已在静脉内，则注药无阻，否则局部发白隆起，应拔出针头再移向前方静脉部位重新穿刺。

（4）蛙类：将蛙脑脊髓破坏后仰卧位固定于蛙板上，沿腹中线稍左剪开腹肌翻转，可见腹静脉紧贴腹壁肌肉下行，将针刺入即可。

6. 淋巴囊注射　蛙类皮下有数个淋巴囊，是蛙的给药常用途径，注射时应从口腔底部刺入肌层，再进入胸皮下淋巴囊注药，抽针后药液才不易流出。

此外，根据实验内容的不同还可采取呼吸道给药、皮肤给药、脊髓腔内给药、小脑延髓池给药、直肠内给药、关节腔内给药。

二、实验动物的取血方法

（一）大鼠、小鼠

1. 尾部取血　可采用针刺尾静脉和剪尾尖两种方法。

（1）针刺尾静脉：先固定动物，用酒精棉球消毒尾部，然后对准尾尖部向上数厘米处的静脉用注射针刺入后立即拔出。采血后用局部压迫、烧烙等方法进行止血。

（2）剪尾尖：将动物固定或麻醉后，露出鼠尾，将尾巴置于45℃～50℃热水中浸泡数分钟，使血管扩张。擦干鼠尾后，将尾尖剪去1～2mm（小鼠）或5mm（大鼠）。从尾根部向尾尖部按摩，血即从断端流出。

2. 眼部取血　可采用眼球后静脉丛取血法。用7号针头连接1ml的注射器或10ml长玻璃管（一端烧制拉成直径1～1.5mm的毛细管）。取血时左手抓住鼠两耳之间的皮肤使头固定，轻轻压迫颈部两侧，阻碍头部静脉回流，使眼球充分外突，球后静脉丛充血。

右手持注射器或玻管，将其插入内眦部，向眼底方向旋转插入。插入深度：小鼠为2～3mm，大鼠为4～5mm。因血压关系，血液自行流入管内，拔出针头或玻管，放松左手。为防止穿刺孔出血，可用纱布压迫眼球，达到止血目的。数分钟后可在同一穿刺孔重复取血。小鼠一次可采得血0.2ml，大鼠0.5ml。

3. 大血管取血　可采用颈动（静）脉、股动（静）脉、腹主动脉等方法取血。在这些部位取血均须麻醉后固定动物，然后作动（静）脉分离手术，使其充分暴露，用注射器沿大血管平行方向刺入，抽取所需血量。或直接用剪刀剪断大血管吸取，但切断动脉时，要防止血液喷溅。

4. 心脏取血　先将动物仰卧固定，左手食指在左侧第3～4肋间触到心尖搏动最强处，右手用连有针头的注射器在此穿刺。由于心脏跳动血液进入注射器。小鼠约0.5～0.6ml，大鼠约0.8～1.2ml。

5. 断头取血　这需要二人配合操作，采血者用左手将大（小）鼠的头颈部握紧，右手抓住躯干和后肢，将颈部暴露。助手用剪刀将鼠颈剪断（用力要大），采血者应迅速将大（小）鼠倒置，让血滴入容器。此方法用于实验结束后血液采集量大时。

（二）豚鼠

1. 耳缘剪口采血　将耳消毒后，用锐器割破耳缘，在切口边缘涂抹20%枸橼酸钠溶液，阻止血凝，则血可自切口自动流出，进入盛器。操作时，使耳充血效果较好。此法能采血0.5ml左右。

2. 心脏采血　取血前应探明心脏搏动最强部位，通常在胸骨左缘的正中，选心跳最明显的部位作穿刺。针头宜稍细长些，以免发生手术后穿刺孔出血。因豚鼠身体较小，一般可不必将动物固定在解剖台上，而可由助手握住前后肢进行采血。成年豚鼠采血应不超过10ml为宜。

3. 股动脉采血　将动物仰位固定在手术台上，减去腹股沟区的毛，麻醉后局部用碘酒消毒。切开长约2～3cm的皮肤，使股动脉暴露及分离，然后用镊子提起股动脉，远端结扎，近端用止血钳夹住，在动脉中央剪一小孔，用无菌玻璃小导管或聚乙烯、聚四氟乙烯管插入，放开止血钳，血液既由导管流出。一次可采血10～20ml。

4. 背中足静脉取血　固定动物，将其右或左后关节伸直，将动物脚背面用酒精消毒，找出背中足静脉后，一手拉住豚鼠的趾端，一手用注射器刺入静脉。拔针后立即出血，呈半球状隆起。采取后应压迫止血。

（三）家兔

1. 耳部取血　可采用耳缘静脉或耳中央动脉取血。首先拔去血管表面皮肤的毛，轻揉兔耳或用酒精涂抹皮肤使血管扩张。用注射器可从耳中央动脉抽取数毫升血。也可用针头刺破耳缘静脉末梢取血。

2. 大血管取血　可采用颈静脉、股静脉和后肢小隐静脉取血。

（1）颈静脉和股静脉取血：首先麻醉做血管分离术。然后用注射器沿血管方向刺入抽取血液。

（2）后肢小隐静脉取血：首先使动物仰卧然后固定，在小腿上端扎橡皮管，小腿外侧皮下可见充盈的静脉，经皮穿刺可以取血。

3. 心脏取血　在第三肋间胸骨左缘3mm心脏搏动最强处，将针头垂直刺入心脏，血即进入注射器。一次可取血20～25ml。

（四）狗和猫

1. 耳缘静脉取血　采血量较少时可用此法。用针头刺破静脉采血或直接用空针抽取。

2. 前、后肢静脉取血　前肢选用内侧皮下头静脉，位于前肢前部，在下1/3处向内侧走行；后肢选用外侧的隐静脉，位于跗关节外侧，距跗关节上方5～10cm处的皮下，由前斜向后上方走行。采血时，先将狗固定，用止血带扎住穿刺部位的上方，使静脉充盈。操作者手持注射器采血。

3. 颈静脉取血　此方法可取较多的血。先将狗麻醉固定，固定时将颈部尽量后仰，助手用手压住颈静脉入胸部的皮肤，使静脉怒张。操作者用左手绷紧进针部位的皮肤，右手拿注射器沿血管向心端刺入。采血后应注意止血。

还可从狗的心脏或股动、静脉采血。但技术要求较高，不容易成功，除非有特殊要求，否则可选用以上三种方法。

猫的取血方法与狗基本相似，可采用前肢皮下头静脉、后肢股静脉、耳缘静脉取血。采血量较大时，可从颈静脉抽取。