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动脉血压的直接测定及影响因素

互联网2013-11-13

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实验原理

在正常生理情况下，心血管活动受神经、体液和自身机制的调节。

　　
心脏受交感神经和副交感神经的支配。心交感神经兴奋时，使心率加快、心肌收缩力加强，心内兴奋传导加快，心输出量增加、动脉血压升高。心迷走神经兴奋时，使心率减慢、心房肌收缩力减弱、房室传导减慢，从而使心输出量减少、动脉血压下降。在神经调节中以颈动脉窦-主动脉弓的减压反射尤为重要，当动脉血压升高时,压力感受器发放冲动增加,通过中枢反射性引起心率减慢、心肌收缩力减弱、心输出量下降、血管舒张和外周阻力降低，使血压降低。反之，当动脉压下降时，压力感受器发放冲动减少，神经调节过程又使血压回升。支配血管的交感缩血管神经兴奋时，使血管收缩、外周阻力增加、动脉血压升高。

　　
家兔的压力感受器的传入神经在颈部从迷走神经分出,自成一支，称为减压神经，其传入冲动随血压变化而变化。

　　
心血管活动还受肾上腺素和去甲肾上腺素等体液因素的调节。它们对心血管的作用既有共性，又有特殊性。关键取决于心、血管壁上哪一种受体占优势。肾上腺素对α与β受体均有激活作用，去甲肾上腺素主要激活α受体而对β受体作用很小，因而使外周阻力增加，动脉血压升高，但对心脏的作用要比肾上腺素弱。

实验试剂

生理盐水，肝素（500 U•ml-1），1: 10000肾上腺素。

实验设备

计算机生物信号采集处理系统，兔手术台，手术器械一套，动脉夹，动脉套管、血压换能器，保护电极，棉线，纱布，棉球、注射器。

实验材料

实验步骤

1.实验准备：

（1）麻醉和固定：

麻醉家兔，当动物四肢松软，呼吸变深变慢，角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。将麻醉的家兔仰卧位固定于兔手术台上。

（2）分离颈部神经、血管

颈部剪毛，沿颈部正中线切开皮肤5～7 cm，用止血钳钝性分离皮下组织及浅层肌肉，暴露和分离气管；分离左、右两侧颈总动脉（左颈总动脉尽量分离长些，以做动脉插管用）；分离右侧的迷走神经、交感神经和减压神经。在分离的颈总动脉及神经下方各穿一的线备用。并在减压神经下放一钩状记录电极，实验过程中将电极悬空（但不要拉得过紧）。

（3）插动脉插管：

在左侧颈总动脉插入动脉插管。

2．连接实验装置：

　
（1）计算机生物信号采集处理系统将动脉插管通过三通与血压换能器连接，血压换能器与计算机生物信号采集处理系统的压力通道连接；刺激电极与系统的刺激输出连接。启动计算机生物信号采集处理分析系统，按系统程序提示进行血压信号定标，调整放大增益。

（1）记录正常情况下减压神经放电波形和动脉血压波形，观察二者变化关系，同时辨认血压波的一级波和二级波，三级波：一级波（心搏波），由心室舒缩活动所引起的血压波动，心缩时上升，心舒时下降，其频率与心率一致。二级波（呼吸波），由呼吸运动所引起的血压波动，吸气时血压先下降，继而上升，呼气时血压先上升，继而下降，其频率与呼吸频率一致。三级波，不常出现，可能由心血管中枢的紧张性活动的周期变化所致。

（2）夹闭颈总动脉

用动脉夹夹闭右侧颈总动脉10～15 s，观察血压与减压神经放电的变化。

（3）牵拉颈总动脉

手持左侧颈总动脉上的远心端结扎线，向心脏方快速牵拉3 s观察血压与减压神经放电的变化。　　

（4）静脉注射肾上腺素

待血压基本稳定后，由耳缘静脉注入1:10000去甲肾上腺素0.2～0.3 ml，观测血压与减压神经放电的变化。

（5）刺激迷走神经外周端

待血压基本稳定后，结扎并剪断右侧迷走神经，电刺激迷走神经外周端，观察血压和心率的变化。待血压变化明显时停止刺激。

（6）抬高动物后肢

观察血压的变化。

注意事项

（1）本实验麻醉应适量，麻醉药注射速度要慢，同时注意呼吸变化，以免过量引起动物死亡。如果实验时间过长，动物苏醒挣扎，可适量补充麻醉药物。

（2）每观察一个项目，必须待血压和心率恢复正常后，才能进行下一个项目。

（3）每次静脉注射完药物后应立即推注0.5 ml生理盐水，以防止药液残留在针头内及局部静脉中而影响下一种药物的效应

（4）实验中注射药物较多，要注意保护耳缘静脉。

（5）实验结束后，必须结扎颈总动脉近心端后再拔除动脉插管。

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