【共享】免疫共沉淀原理和实验步骤:试剂准备
丁香园论坛
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免疫共沉淀原理及实验方法
免疫共沉淀
一 原理:
IP 是利用抗原蛋白质和抗体的特异性结合以及细菌蛋白质的「prorein A" 特异性地结合到免疫球蛋白的 FC 片段的现象活用开发出来的方法。目前多用精制的 prorein A 预先结合固化在 argarose 的 beads 上,使之与含有抗原的溶液及抗体反应后,beads 上的 prorein A 就能吸附抗原达到精制的目的。
实验最需要注意点就是抗体的性质。抗体不同和抗原结合能力也不同,免染能结合未必能用在 IP 反应。建议仔细检查抗体的说明书。特别是多抗的特异性是问题。
其 次,要注意溶解抗原的缓冲液的性质。多数的抗原是细胞构成的蛋白,特别是骨架蛋白,缓冲液必须要使其溶解。为此,必须使用含有强界面活性剂的缓冲液,尽管 它有可能影响一部分抗原抗体的结合。另一面,如用弱界面活性剂溶解细胞,就不能充分溶解细胞蛋白。即便溶解也产生与其它的蛋白结合的结果,抗原决定族被封 闭,影响与抗体的结合,即使 IP 成功,也是很多蛋白与抗体共沉的悲惨结果。
再次,为防止蛋白的分解,修饰,溶解抗原的缓冲液必须加蛋白每抑制剂,低温下进行实验。
每次实验之前,首先考虑抗体/缓冲液的比例。抗体过少就不能检出抗原,过多则就不能沉降在 beads 上,残存在上清。缓冲剂太少则不能溶解抗原,过多则抗原被稀释。欲速则不达,确定好比例很必要。(待续)
二 准备:
器械
#微量高速冷冻离心机
#移液枪
#旋转盘
#电泳设备
#vortex 震荡器
#液氮及组织粉碎器
#eppentube
试剂
#细胞或组织
#蛋白定量 kit
#SDS 电泳试剂
#抗体 (单抗时选择 protein G, 二抗选择抗鼠 Ig 兔血清)
#PBS
#NaN3
#proteinA sapharose
试剂配制
抗原蛋白溶解缓冲液
1.RIPA 缓冲液 (最终浓度)
1MTris-HCL(PH7.4) 5 ml (10 mM)
5MNacl 15 ml (150 mM)
0.5M EDTA(PH7.4) 5 ml (5 mM)
20%TritonX-100 25 ml (1%)
10% DOC 50 ml (1%)
10%SDS 5 ml ( o.1%)
TLCK 18.5 mg (0.1 mM)
TPCK 35 mg (0.2 mM)
DDW 395 ml
toal 500 ml
另外,使用之前加 1 mMPMSF(PMSF 溶在酒精,浓度 100 mM,-20 度遮光保存。注意不易溶于水)
2.NP40 lysis 缓冲液
1MTris-HCL(PH7.4) 5 ml (10 mM)
5MNacl 15 ml (150 mM)
0.5M EDTA(PH7.4) 5 ml (5 mM)
20%NP40 25 ml (1%)
TLCK 18.5 mg (0.1 mM)
TPCK 35 mg (0.2 mM)
DDW 450 ml
toal 500 ml
使用前加 1 mM 的 PMSF
注意点:
~undefinedTris 缓冲剂 PH 随温度变化,高浓度盐酸滴定时发热,冷却后 PH 增高。
~undefined反复使用 PMSF 要注意保管方法。
~undefined1 和 2 的缓冲剂的区别在于界面活性剂。TritonX-100,NP40 是非离子界面活性剂,作用温和,,DOC<SDS 是离子性的强活性剂。注意忘 记加 TritonX-100,只加 DOC,SDS,可能使抗体完全失去活性。1 的蛋白变性效果强,可能损害抗原/抗体结合,2 的作用温和,却可能造成抗原 溶解不全。
~undefined两方都有 EDTA,对抗原而言,二价离子 Mg,Ca 等是必要的。根据自己需要调节。EDTA 用 NaOH 滴定。
Protocol
1 调制 protein A sapharose
protein A sapharose 5 ml 溶于 20 ml 含 0.02%NaN3 的 PBS
离心 2000 转 2 分,去上清,在沉淀加 0.02%NaN3 的 PBS,离心后去上清,重复 2 次,最后沉淀加 20 ml 含 0.02%NaN3 的 PBS,冷藏保存
用单抗做一抗时,把 protein A sapharose 先用抗鼠 Ig 兔血清处理 (每 50ulprotein A sapharose 用 1-5ul 血清)。旋转 1-2 h, 混匀后,再离心 1-2s
去上清后,加 PBS,vortex 混合,离心去上清,重复二次
加含 0.02%NaN3 的 PBS 到原来体积,冷存。避免长期保存。
2.抗原的检出
以下操作全在冰面或 4 度进行
去除细胞培养液,用冷 PBS 洗一次。加 RIPA,溶解后,转移到 eppentube 中用 vortex 混匀。RIPA 的量:6 cm 的培养皿加 1 ml(蛋白质的量为 500 mg/ml), 组织块用液氮粉碎,在缓冲剂中捣匀,蛋白定量。
30m,15000rpm 离心,上清转移到新 tube 。不用移液枪,直接从 tube 倒进另一个 tube
往上清加抗体,1 ml 加 2-5ul 抗体,冷室内旋转混匀 1 h
加 protein A sapharose50ul,再混匀 1 h
5000rpm 离心 1s, 使 sapharose 沉淀,去上清。往 sapharose 加 RIPA,vortex 混匀,离心,去上清。重复 4 次洗净。
加电泳用 sample 缓冲液 40ul,2m 煮沸,泳动后,固定/干燥胶,现像。
3. 注意点
A:不熟练使用移液枪,会混入沉淀的不溶性蛋白,使实验失败。对无论怎么也除不去的混入蛋白,只使用上清的上半部,或用超速离心机。
B:对电泳的非特异条带,最后可依次用含 300 mM,1omMNaCl 的 RIPA 洗净各一次。(完)
免疫共沉淀
一 原理:
IP 是利用抗原蛋白质和抗体的特异性结合以及细菌蛋白质的「prorein A" 特异性地结合到免疫球蛋白的 FC 片段的现象活用开发出来的方法。目前多用精制的 prorein A 预先结合固化在 argarose 的 beads 上,使之与含有抗原的溶液及抗体反应后,beads 上的 prorein A 就能吸附抗原达到精制的目的。
实验最需要注意点就是抗体的性质。抗体不同和抗原结合能力也不同,免染能结合未必能用在 IP 反应。建议仔细检查抗体的说明书。特别是多抗的特异性是问题。
其 次,要注意溶解抗原的缓冲液的性质。多数的抗原是细胞构成的蛋白,特别是骨架蛋白,缓冲液必须要使其溶解。为此,必须使用含有强界面活性剂的缓冲液,尽管 它有可能影响一部分抗原抗体的结合。另一面,如用弱界面活性剂溶解细胞,就不能充分溶解细胞蛋白。即便溶解也产生与其它的蛋白结合的结果,抗原决定族被封 闭,影响与抗体的结合,即使 IP 成功,也是很多蛋白与抗体共沉的悲惨结果。
再次,为防止蛋白的分解,修饰,溶解抗原的缓冲液必须加蛋白每抑制剂,低温下进行实验。
每次实验之前,首先考虑抗体/缓冲液的比例。抗体过少就不能检出抗原,过多则就不能沉降在 beads 上,残存在上清。缓冲剂太少则不能溶解抗原,过多则抗原被稀释。欲速则不达,确定好比例很必要。(待续)
二 准备:
器械
#微量高速冷冻离心机
#移液枪
#旋转盘
#电泳设备
#vortex 震荡器
#液氮及组织粉碎器
#eppentube
试剂
#细胞或组织
#蛋白定量 kit
#SDS 电泳试剂
#抗体 (单抗时选择 protein G, 二抗选择抗鼠 Ig 兔血清)
#PBS
#NaN3
#proteinA sapharose
试剂配制
抗原蛋白溶解缓冲液
1.RIPA 缓冲液 (最终浓度)
1MTris-HCL(PH7.4) 5 ml (10 mM)
5MNacl 15 ml (150 mM)
0.5M EDTA(PH7.4) 5 ml (5 mM)
20%TritonX-100 25 ml (1%)
10% DOC 50 ml (1%)
10%SDS 5 ml ( o.1%)
TLCK 18.5 mg (0.1 mM)
TPCK 35 mg (0.2 mM)
DDW 395 ml
toal 500 ml
另外,使用之前加 1 mMPMSF(PMSF 溶在酒精,浓度 100 mM,-20 度遮光保存。注意不易溶于水)
2.NP40 lysis 缓冲液
1MTris-HCL(PH7.4) 5 ml (10 mM)
5MNacl 15 ml (150 mM)
0.5M EDTA(PH7.4) 5 ml (5 mM)
20%NP40 25 ml (1%)
TLCK 18.5 mg (0.1 mM)
TPCK 35 mg (0.2 mM)
DDW 450 ml
toal 500 ml
使用前加 1 mM 的 PMSF
注意点:
~undefinedTris 缓冲剂 PH 随温度变化,高浓度盐酸滴定时发热,冷却后 PH 增高。
~undefined反复使用 PMSF 要注意保管方法。
~undefined1 和 2 的缓冲剂的区别在于界面活性剂。TritonX-100,NP40 是非离子界面活性剂,作用温和,,DOC<SDS 是离子性的强活性剂。注意忘 记加 TritonX-100,只加 DOC,SDS,可能使抗体完全失去活性。1 的蛋白变性效果强,可能损害抗原/抗体结合,2 的作用温和,却可能造成抗原 溶解不全。
~undefined两方都有 EDTA,对抗原而言,二价离子 Mg,Ca 等是必要的。根据自己需要调节。EDTA 用 NaOH 滴定。
Protocol
1 调制 protein A sapharose
protein A sapharose 5 ml 溶于 20 ml 含 0.02%NaN3 的 PBS
离心 2000 转 2 分,去上清,在沉淀加 0.02%NaN3 的 PBS,离心后去上清,重复 2 次,最后沉淀加 20 ml 含 0.02%NaN3 的 PBS,冷藏保存
用单抗做一抗时,把 protein A sapharose 先用抗鼠 Ig 兔血清处理 (每 50ulprotein A sapharose 用 1-5ul 血清)。旋转 1-2 h, 混匀后,再离心 1-2s
去上清后,加 PBS,vortex 混合,离心去上清,重复二次
加含 0.02%NaN3 的 PBS 到原来体积,冷存。避免长期保存。
2.抗原的检出
以下操作全在冰面或 4 度进行
去除细胞培养液,用冷 PBS 洗一次。加 RIPA,溶解后,转移到 eppentube 中用 vortex 混匀。RIPA 的量:6 cm 的培养皿加 1 ml(蛋白质的量为 500 mg/ml), 组织块用液氮粉碎,在缓冲剂中捣匀,蛋白定量。
30m,15000rpm 离心,上清转移到新 tube 。不用移液枪,直接从 tube 倒进另一个 tube
往上清加抗体,1 ml 加 2-5ul 抗体,冷室内旋转混匀 1 h
加 protein A sapharose50ul,再混匀 1 h
5000rpm 离心 1s, 使 sapharose 沉淀,去上清。往 sapharose 加 RIPA,vortex 混匀,离心,去上清。重复 4 次洗净。
加电泳用 sample 缓冲液 40ul,2m 煮沸,泳动后,固定/干燥胶,现像。
3. 注意点
A:不熟练使用移液枪,会混入沉淀的不溶性蛋白,使实验失败。对无论怎么也除不去的混入蛋白,只使用上清的上半部,或用超速离心机。
B:对电泳的非特异条带,最后可依次用含 300 mM,1omMNaCl 的 RIPA 洗净各一次。(完)