免疫共沉淀实验步骤
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免疫共沉淀样品制备:
1. 电转染CO-IP质粒入60 cm2 培养瓶,表达48h;
2. 吸干培液;
3. 加入预冷的RIPA Buffer(0.5ml/60 cm2培养瓶),冰上孵育10~3 0min;
4. 用预冷的细胞刮子将细胞从培养皿或培养瓶上刮下,把悬液转到1.5EP管中;
5. 4℃,12000 rpm离心10~20 min,立即将上清转移到一个新的离心管中;
6. 准备Protein G/A agarose,用PBS 洗两遍珠子,然后用PBS配制成50%浓度,建议减掉枪尖部分,避免在涉及琼脂糖珠的操作中破坏琼脂糖珠;
7. 每1ml总蛋白中加入100 μl Protein G/A琼脂糖珠(50%),4℃摇晃10 min(EP管插冰上,置水平摇床上),以去除非特异性杂蛋白,降低背景 ;
8. 4℃,12000 rpm离心15 min,将上清转移到一个新的离心管中;
9. 测定蛋白浓度,定量,分装后,可以在-80℃保存一个月;
10. 加入一定体积(2 ug)的IP抗体到500 μl总蛋白中,抗体的稀释比例因兴趣蛋白在不同细胞系中的多少而异;
11. 4℃缓慢摇动抗原抗体混合物1h-Overnight;
12. 加入30~50 μl Protein G/A琼脂糖珠来捕捉抗原抗体复合物,4℃缓慢摇动抗原抗体混合物3~5 h,如果所用抗体为鼠抗或鸡抗,建议加2 μl“过渡抗体”(兔抗鼠IgG,兔抗鸡IgG);
13. 2000 rpm瞬时离心5 s,收集琼脂糖珠-抗原抗体复合物,去上清,用预冷的RIPA buffer洗3遍,彻底吸尽上清;
14. 用60 μl 1×上样缓冲液(加入巯基乙醇或DTT)将琼脂糖珠-抗原抗体复合物悬起,轻轻混匀;
15. 将上样样品煮5 min,以游离抗原,抗体,珠子,离心,将上清电泳,收集剩余琼脂糖珠,上清也可以暂时冻-20℃,留待以后电泳,电泳前应再次煮5 min变性。
免疫共沉淀中常见问题及原因分析:
未检测到目得蛋白或蛋白很少:
可能原因 | 处理方法 |
样品被蛋白酶降解 | 添加蛋白酶抑制剂;所有操作保持4℃以下冰上操作并防止冻融 |
抗体浓度太低 | 调整IP和/或IB抗体浓度, 必要时设立浓度梯度,摸索最佳浓度 |
抗抗体亲合力太低 | 选用适合于IP和/或IB的相应抗体 |
IP抗体未与agarose珠子结合 | 选用适合于IP的相应珠子, 正确保存防止变质或干燥 |
Tag未暴露在融合蛋白构象的表面 | 改变tag融合表达部位 |
裂解液严谨度太高 | 改用低严谨度裂解液 |
目得蛋白高背景:
可能原因 | 处理方法 |
非特异蛋白结合 | 在无血清培养液中裂解细胞; 在免疫沉淀前用protein (G/A)珠子预洗免疫沉淀后增加漂洗次数和严谨度(高盐或去垢剂) |
裂解液严谨度太低 | 改用高严谨度裂解液 |
实验仪器或液体被污染 | 使用洁净的仪器或液体 |
转移膜上的非特异吸附 | 戴手套, 用镊子夹取, 不要接触膜转移面 |