【讨论】5'race的时候5'帽子端的g会不会出现在cdna的5'端
丁香园论坛
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如题:
帽子的糖环与核糖核酸链之间是-p-p-p-连接,而核糖核酸链之间的糖环之间是-p-连接,合成酶能识别-p-p-p-吗,能够以帽子结构为模板,在第一链cDNA的3'末端合成c吗?
谢谢!
wangxiaotong999@163.com
帽子的糖环与核糖核酸链之间是-p-p-p-连接,而核糖核酸链之间的糖环之间是-p-连接,合成酶能识别-p-p-p-吗,能够以帽子结构为模板,在第一链cDNA的3'末端合成c吗?
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5’-RACE技术的意义:可以精确定位转录起始位点。但是定位转录起始位点又有什么意义呢?以RNA聚合酶Ⅱ为例,启动子区一般位于转录起始位点上游200-300bp的范围内,也即转录起始位点的确定有助于分析基因的转录。而且有些基因具有多个转录起始位点,通过5’-RACE技术可以精确定位之,进而详细研究基因的调控机制。
5’-RACE试剂盒一般基于以下几种技术:SMART、Oligo capping method、self-ligation和anchored PCR。下面将分别介绍这些技术的原理和各自的优缺点。
1、SMART技术。该技术是基于以下两个观察发展起来的:a、不同反转录酶包括MMLV合成的cDNA 3’端保真度不高;b、不同的反转录酶具有不同的加尾特性,MMLV特意的在cDNA末端加上3-4个dCTP。该技术用MMLV合成cDNA第一链,同时利用它的加尾特性在合成的cDNA链3’加上3-4个dCTP,而且当帽子结构存在时该酶的加尾活性最高(对全长分子的富集机制),随后这3-4个碱基与体系中事先加入的引物(该引物的3’端有3-4个dGTP)配对,MMLV继而以聚合酶活性将配对引物补成双链。目前基于该技术的试剂盒只有Clontech公司生产,全名为SMART RACE cDNA amplification kit(Cat634914)流程见图:
该方法的突出优点就是操作简便,成功率较高,全场分子的比例较高。cDNA第一链的合成和加尾一步即完成,避免了其他方法中对mRNA和cDNA链的反复操作,降低了mRNA降解和合成产物丢失的风险,使本来就含量甚微的全长分子得到最大保存,所以这种方法得到了广泛认可,应用最多。如果加上RNA提取时间,这种技术可以在3个小时内得到加上接头的cDNA产物,最大限度地降低了mRNA的降解风险。
2、Oligo capping method方法(又称RLM-RACE)是由日本东京大学铃木等人开发,可以更精确的定位转录起始位点。我们知道真核生物的mRNA具有一个3’尾巴和一个5’帽子结构,该技术正是利用5’端的帽子特性对全长分子进行富集和扩增。降解的mRNA5’端都有一个磷酸基,用碱性磷酸酶去掉该磷酸基,随后用烟草酸性焦磷酸酶去掉帽子结构,则全长分子的5’端会暴露出磷酸基,随后的连接步骤中锚定引物将特意的加在全长分子的5’端而不会和降解的分子连接(全长分子的富集机制)。目前基于该方法的试剂盒有TaKaRa(5’-Full RACE kit D315)和Ambion(Firstchoice RLM-RACE kit AM1700)两家都有生产,步骤如图:
该方法的最大优点就是全长分子的比率高,可以说只要是扩增产物就肯定是全长分子。但是该方法的最大缺点是操作复杂,而且都是针对mRNA分子进行操作,使mRNA分子降解的风险极大提高,所以成功率不是很高。对于新手和实验室条件较差者不推荐使用该试剂盒。
3、Self-ligation技术。基因特异性(或者OligodT)反转录合成cDNA第一链,RNase H降解杂合链中的RNA,连接酶连接纯化后的cDNA链,在已知片段上设计反向PCR引物进行未知片段的扩增。该试剂盒宝生物以前有售,现在已停产,原理如图:
该试剂盒想法十分好,但是由于没有全长分子的富集机制,得到全长分子的几率比较低。而且在实际使用中它的扩增片段都比较短,不能满足实验要求。
4、Anchored PCR方法。利用一条基因特异性反转录引物,在反转录酶的作用下合成cDNA第一链,将RNA-DNA杂合链中的RNA降解纯化后,利用末端转移酶在cDNA链的3’端加入PolyC尾巴(尾巴长度不能确定),然后利用abridged anchored primer和一条基因特异性引物扩增(可能需要巢式PCR才能得到结果)。该试剂盒有Clontech(Marathon cDNA amplification, Cat: 634913)和Invitrogen(5’RACE system for rapid amplification of cDNA ends, Cat: 18374-058)公司在售,操作简图如下:
该法最大的缺点是全长分子的比率较低,而且操作复杂,整个实验流程需要耗费超过一天的时间。这种方法没有像SMART和Oligo capping method中那样采取对完整分子的富集机制,所以它依赖于高质量的反转录酶(具有通读复杂二级结构的能力、具有较高的反应温度)和高质量的RNA,否则得到全长分子的几率会很低。
5’-RACE试剂盒一般基于以下几种技术:SMART、Oligo capping method、self-ligation和anchored PCR。下面将分别介绍这些技术的原理和各自的优缺点。
1、SMART技术。该技术是基于以下两个观察发展起来的:a、不同反转录酶包括MMLV合成的cDNA 3’端保真度不高;b、不同的反转录酶具有不同的加尾特性,MMLV特意的在cDNA末端加上3-4个dCTP。该技术用MMLV合成cDNA第一链,同时利用它的加尾特性在合成的cDNA链3’加上3-4个dCTP,而且当帽子结构存在时该酶的加尾活性最高(对全长分子的富集机制),随后这3-4个碱基与体系中事先加入的引物(该引物的3’端有3-4个dGTP)配对,MMLV继而以聚合酶活性将配对引物补成双链。目前基于该技术的试剂盒只有Clontech公司生产,全名为SMART RACE cDNA amplification kit(Cat634914)流程见图:
该方法的突出优点就是操作简便,成功率较高,全场分子的比例较高。cDNA第一链的合成和加尾一步即完成,避免了其他方法中对mRNA和cDNA链的反复操作,降低了mRNA降解和合成产物丢失的风险,使本来就含量甚微的全长分子得到最大保存,所以这种方法得到了广泛认可,应用最多。如果加上RNA提取时间,这种技术可以在3个小时内得到加上接头的cDNA产物,最大限度地降低了mRNA的降解风险。
2、Oligo capping method方法(又称RLM-RACE)是由日本东京大学铃木等人开发,可以更精确的定位转录起始位点。我们知道真核生物的mRNA具有一个3’尾巴和一个5’帽子结构,该技术正是利用5’端的帽子特性对全长分子进行富集和扩增。降解的mRNA5’端都有一个磷酸基,用碱性磷酸酶去掉该磷酸基,随后用烟草酸性焦磷酸酶去掉帽子结构,则全长分子的5’端会暴露出磷酸基,随后的连接步骤中锚定引物将特意的加在全长分子的5’端而不会和降解的分子连接(全长分子的富集机制)。目前基于该方法的试剂盒有TaKaRa(5’-Full RACE kit D315)和Ambion(Firstchoice RLM-RACE kit AM1700)两家都有生产,步骤如图:
该方法的最大优点就是全长分子的比率高,可以说只要是扩增产物就肯定是全长分子。但是该方法的最大缺点是操作复杂,而且都是针对mRNA分子进行操作,使mRNA分子降解的风险极大提高,所以成功率不是很高。对于新手和实验室条件较差者不推荐使用该试剂盒。
3、Self-ligation技术。基因特异性(或者OligodT)反转录合成cDNA第一链,RNase H降解杂合链中的RNA,连接酶连接纯化后的cDNA链,在已知片段上设计反向PCR引物进行未知片段的扩增。该试剂盒宝生物以前有售,现在已停产,原理如图:
该试剂盒想法十分好,但是由于没有全长分子的富集机制,得到全长分子的几率比较低。而且在实际使用中它的扩增片段都比较短,不能满足实验要求。
4、Anchored PCR方法。利用一条基因特异性反转录引物,在反转录酶的作用下合成cDNA第一链,将RNA-DNA杂合链中的RNA降解纯化后,利用末端转移酶在cDNA链的3’端加入PolyC尾巴(尾巴长度不能确定),然后利用abridged anchored primer和一条基因特异性引物扩增(可能需要巢式PCR才能得到结果)。该试剂盒有Clontech(Marathon cDNA amplification, Cat: 634913)和Invitrogen(5’RACE system for rapid amplification of cDNA ends, Cat: 18374-058)公司在售,操作简图如下:
该法最大的缺点是全长分子的比率较低,而且操作复杂,整个实验流程需要耗费超过一天的时间。这种方法没有像SMART和Oligo capping method中那样采取对完整分子的富集机制,所以它依赖于高质量的反转录酶(具有通读复杂二级结构的能力、具有较高的反应温度)和高质量的RNA,否则得到全长分子的几率会很低。
谢谢!
该技术用MMLV合成cDNA第一链,同时利用它的加尾特性在合成的cDNA链3’加上3-4个dCTP,而且当帽子结构存在时该酶的加尾活性最高(对全长分子的富集机制),随后这3-4个碱基与体系中事先加入的引物(该引物的3’端有3-4个dGTP)配对,MMLV继而以聚合酶活性将配对引物补成双链。
这样说,帽子结构对应的碱基序列会出现在cDNA中了吧。
该技术用MMLV合成cDNA第一链,同时利用它的加尾特性在合成的cDNA链3’加上3-4个dCTP,而且当帽子结构存在时该酶的加尾活性最高(对全长分子的富集机制),随后这3-4个碱基与体系中事先加入的引物(该引物的3’端有3-4个dGTP)配对,MMLV继而以聚合酶活性将配对引物补成双链。
这样说,帽子结构对应的碱基序列会出现在cDNA中了吧。
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