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TUNEL法检测细胞凋亡操作步骤

丁香园

53881

操作步骤(Roche公司)

1.用二甲苯浸洗2次,每次5min;

2.用梯度乙醇(100、95、90、80、70%)各浸洗1次,每次3min;

3.PBS漂洗2次;

4.用Proteinase K工作液处理组织15-30 min 在21–37°C或者加细胞通透液8min;

5.PBS漂洗2次;

6.制备TUNEL反应混合液,处理组用50μl TdT+450μl 荧光素标记的dUTP液混匀;而阴性对照组仅加50μl 荧光素标记的dUTP液,阳性对照组先加入100μl DNase 1,反应在室温~37℃×10~30min,后面步骤同处理组。

7. 玻片干后,加50μl TUNEL反应混合液(阴性对照组仅加50μl 荧光素标记的dUTP液)于标本上,加盖玻片或封口膜在暗湿盒中反应37℃×60min。

8.PBS漂洗3次;

9.可以加1滴PBS在荧光显微镜下计数凋亡细胞(激发光波长为450~500nm,检测波长为515~565nm)

10.玻片干后加50μl converter-POD于标本上,加盖玻片或封口膜在暗湿盒中反应37℃×30min。

11.PBS漂洗3次;

12.在组织处加50~100μlDAB底物,反应15~25℃×10min;

13.PBS漂洗3次;

14.拍照后再用苏木素或甲基绿复染,几秒后立即用自来水冲洗。梯度酒精脱水、二甲苯透明、中性树胶封片。

15.加一滴PBS或甘油在视野下,用光学显微镜进行计数(200~500个细胞)并拍照。

操作步骤(Promega公司)

1. 脱蜡:用二甲苯浸洗5 min×2次;

2. 水化:用梯度乙醇(100%×5 min、100%×3 min、95%×3 min、85%×3 min、70%×3 min、50%×3 min)

3. 浸洗:0.85%NaCl×5 min→PBS洗5 min;

4. 固定:浸入4%多聚甲醛15 min;

5. 浸洗:PBS 5 min×2次;

6. 细胞通透:用每片100 ul 20 μg/ml Proteinase K处理组织15(10~30) min RT;

7. 浸洗:PBS洗5 min;

8. 固定: 浸入4%多聚甲醛5 min;

9. 浸洗:PBS 5 min×2次;

10. 平衡:加100 ul平衡液,湿盒平衡10(5~10) min;

11. 制备TUNEL反应混合液:处理组用1 μl rTdT+1 μl 生物素标记的dUTP+98 ul平衡液混匀;而阴性对照组不加rTdT,改为三蒸水;阳性对照组先加入100 μl DNase 1 缓冲液孵育5 min,甩掉液体后再加100 ul DNase 1(10 U/ml)酶切10 min,用去离子水冲洗4次,PBS浸洗5 min,后面步骤从第10步开始。

12. 标记反应:加100 μl TUNEL反应混合液于标本上,加盖玻片或封口膜在暗湿盒中反应37 ℃×1 h。

13. 终止反应:浸入2×SSC 15 min;

14. 浸洗:PBS 5 min×3次;

15. 封闭POD:浸入0.3%H2O2 15 min;

16. 浸洗:PBS 5 min×3次;

17. 酶标反应:加100 ul streptavidin标记HRP(按1:500 PBS稀释)30 min;

18. 浸洗:PBS 5 min×3次;

19. DAB显色(避光):加100 ulDAB混合液(50 ulDAB+50 ulDAB底物缓冲液+50 ul H2O220×+950 ul三蒸水)10 min左右,镜下出现浅棕色背景时。

20. 用去离子水冲洗几次;

21. 用苏木素复染,3 s左右后立即用自来水冲洗。梯度酒精脱水(50、70、85、95、100、100%各1 min)、二甲苯透明1 min×2次、中性树胶封片。

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