常见实验动物处死方法的选择

（一）狗、猫、兔、豚鼠

1、空气栓塞法

向动物静脉内注入一定量的空气，使之发生栓塞而死。当空气注入静脉后，可在右心随着心脏的跳动使空气与血液成泡沫状，随血液循环到全身。如进到肺动脉，可阻塞其分支，进入心脏冠状动脉，造成冠状动脉阻塞，发生严重的血液循环障碍，动物很快致死。一般兔、猫等静脉内注入20～40ml空气即可致死。每条狗由前肢或后肢皮下静脉注入80～150ml空气，可很快致死。

2、急性失血法

先使动物轻度麻醉，如狗可按每公斤体重静脉注射硫喷妥钠20～30mg，动物即很快入睡。暴露股三角区，用锋利的杀狗刀在股三角区作一个约10厘米的横切口，把股动、静脉全切断，立即喷出血液。用一块湿纱布不断擦去股动脉切口周围处的血液和血凝块,同时不断的用自来水冲洗流血，使股动脉切口保持畅通，动物在3～5分钟内即可致死。采用此种方法，动物十分安静，对脏器无损伤，对活杀采集病理切片标本是一种较好的方法。

如果处死狗的同时要采集其血液时，则在用硫喷妥钠轻度麻醉后，将狗固定在狗手术台上。分离颈动脉，插一根较粗的塑料管，放低狗头，打开动脉夹，使动脉血流入装有抗凝血的容器内，并不断摇晃，以防血液凝固。

3、破坏延脑法

用器具破坏延脑或用木锤用力击其后脑部。

4、开放性气胸法

将动物开胸，造成开放性气胸。这时胸膜腔与大气压相等，肺脏因受大气压缩发生肺萎缩，纵隔摆动，动物窒息死亡。

5、化学药物致死法

静脉內注入一定量的氯化钾溶液，使动物心肌失去收缩能力，心脏急性扩张，致心脏迟缓性停跳而死亡。每条成年兔由兔耳缘静脉注入10%氯化钾溶液5～10ml；每条成年狗由狗前肢或後肢下静脉注入20～30ml。即可致死。

静脉內注入一定量的福尔马林溶液，使血液內蛋白凝固，动物由于全身血液循环严重障碍和缺氧而死。每条成年狗静脉注入10%福尔马林溶液20ml即可致死。也可将福尔马林与酒精按一定比例配成动物致死液应用。

皮下注射士的年致死：豚鼠剂量为3.0～4.4mg/kg体重，兔0.5～0.5mg/kg体重，狗0.3～0.42mg/kg体重，猫1.0～2.0mg/kg体重。

经口或注年DDT致死；（LD50）：

豚鼠：经口0.4g/kg体重，皮下0.9g/kg体重。

兔：经口0.3g/kg体重，皮下0.25g/kg体重；静脉0.043g/kg体重。

狗：静脉0.067g/kg体重。

（二）蛙类

常用金属探针插入枕骨大孔，破坏脑脊髓的方法处死。

将蛙用湿布包住，露出头部,左手执蛙，并用食指按压其头部前端，拇指按压背部，使头前俯；右手持探针由凹陷处垂直刺入，刺破皮肤即入枕骨大孔。这时将探针尖端转向头方，向前深入颅腔，然后向各方搅动，以捣毁脑组织。再把探针由枕骨大孔刺入并转向尾方，刺入椎管，以破坏脊髓。脑和脊髓是否完全破坏，可检查动物四肢肌肉的紧张性是否完全消失。拔出探针后，用一小干棉球将针孔堵住，以防止出血。

操作过程中要防止毒腺分泌物射入实验者眼内。如被射入时，则需立即用生理盐水冲洗眼睛。

（三）大鼠、小鼠

1、脊椎脱臼法

右手抓住鼠尾用力向后拉，同时左手拇指与食指用力向下按住鼠头。将脊髓与脑髓拉断，鼠便立即死亡。

2、断头法

用剪刀在鼠颈部将鼠头剪掉。详细方法可参考大、小鼠断头取血方法。鼠由于剪断了脑脊髓，同时大量失血，很快死亡。

3、击打法

右手抓住鼠尾，提起，用力摔击其头部，鼠痉挛后立即死去。

4、急性大失血法

可采用鼠眼眶动脉和静脉急性大量失血方法使鼠立即死亡。

5、药物致死法

吸入一定量的一氧化碳、乙醚、氯仿等均可使动物致死。皮下注射士的年，吸入乙醚、氨仿，均可致死。士的年注射量，小鼠0.76～2.0mg/kg体重，大鼠3.0～3.5ml/kg体重。氯化钾处死大鼠剂量：25%溶液0.6ml/只静脉注入。