单链丝状噬菌体展示系统

一、单链丝状噬茁体展示系统

1、pIII展示系统及噬苗体抗体

丝状噬茵体是单链DNA病毒，pIII是病毒的次要外完蛋白（minor coatprotein）、位于病毒颗粒的一端，每个病毒颗粒都有3—5个拷贝pIII蛋白，pIII有两个位点可供外源序列插入，即N端和近N端可伸屈胃内。

当抗体片段或蛋白质融合到PIII的N端时，噬菌体仍有感染性，但若融合到后一位点则会切去N端而丧失感染性，这时就需有辅助噬菌体提供野生型pIII蛋白。PIII很容易为蛋白水解酶水解。所以有辅助噬菌体超感染时．可以使每个噬菌体平均显示不到一个融合蛋白，即所谓“单价“噬茵体，从而使抗体部分最大限度地保持原构型而功能完好。

PIII展示系统的主要用途是制备噬茵体抗体，它的突出优点是模拟了自然免疫选择系统。自然免疫系统中．抗原结合于B细胞表面受体而使其活化并分裂增殖、分化成有抗体分泌功能的浆细胞。

这个过程可以从约5×109个鼠细胞和约1012人细胞中选出一个至几个特异B细胞，并有选择性地富集特异性B细胞，通过多轮突变和选择使抗体亲和力成熟。pIII展示系统完全模拟了自然选择系统；噬菌体展示的抗体片段可以由抗原包被的板、柱等选择，或者用生物素标记的抗原从液相中捕获。

结合在固相抗原的噬茵体抗体经洗涤后可用可溶性半抗原、酸、碱等洗脱，然后感染大肠杆菌培养扩增，再经下一轮的“吸附—洗脱—扩增”筛选。首轮筛选可使特异性噬菌体富集20一1000倍，一般经4轮筛选，可富集107倍。对初步筛选的抗体，可以用错构酶及PCR锗配技术等实行多轮突变或采用链置换法使其亲和力成熟。

用PIII系统制备抗体的基本程序是：从经免疫或未免疫者获取淋巴细胞（外周血淋巴细胞，或脾、淋巴结、骨髓等的淋巴细肥），提取细胞mRNA（或细胞基因组DNA），逆转录成cDNA，用PCR方法扩增抗体重链和轻链基因，若制备ScFv抗体片段，还需设计接头Linker，如（Gly4—Ser），做成VH—Linker—VL连接）。

将扩增的抗体基因克隆到丝状噬茵体载体中，若欲制备ScFv抗体，则克隆VH—Linker—VL基因，若制备Fab抗体、则可将VHCHl基因克隆入λ菌体载体，轻链基因克隆入PASK22类型载体中，在大肠杆菌共表达，或将二者克隆入同一噬茵体载体中进行表达。

P III展示系统的载体，在抗体基因与P III蛋白之间插入了一个琥珀中止密码（amber stop codon），当此密码受抑制时抗体片段就展示在噬菌体表面，当此密码不受抑制时抗体则分泌。因此在抑制型和非抑制型大肠杆菌中培养重组噬菌体时就分别模拟了B细胞表面呈现抗体SmIg和浆细胞分泌抗体的功能。已有用P III展示系统成功地筛选到高亲和力特异性抗体的报道。

与杂交瘤技术相比，pIII展示系统筛选范围从几千扩增到几百万甚至几亿．而时间可以从几个月缩短到几周，它不但绕过了繁琐的杂交瘤技术．甚至可以绕过免疫，而且可以直接获取人源性抗体，解决了鼠单抗应用于人体免疫原性问题。

2、PVIII及其它展示系统

PVIII是丝状噬茵体主要衣壳蛋白（major Coat protein），每个病毒颗粒有3000拷贝pVIII蛋白。PVIII的N端附近可融合五或六肽，但不能融合更长的肽链，因为较大的多聚蛋白会造成空间障碍，影响噬菌体装配，使其失去感染力。但有辅助噬茵体参与时，可提供野生型pVIII蛋白．降低价数，此时可融合多肽甚至抗体片段。

二、λ噬茵体展示系统

1、pV展示系统

λ噬菌体的主要尾部蛋白P v可供外源序列插入。λ噬菌体基因V编码的主要尾部蛋白形成管状结构，由32个盘状结构组成，每个盘状结构又由6个Pv亚单位组成。Pv有两个折叠区〔fo1ding domain），C端的折叠区是病毒的非功能区，可供外源序列插入或替换。

Maruyama等用p v系统成功地展示了有活性的大分子蛋白：β—半乳糖苷酸（465KD）和植物外源凝集素BPA（120KD）。DNA结合蛋白、放多细胞质蛋白若融合进丝状噬菌体，将相互干扰由细菌细胞质到周质腔分泌的通道，而用λ噬菌体使其在细胞质中完成折叠，无需分泌，因此避免了这一干扰。λ噬菌体还可以展示难以分泌的肽或蛋白质，因此可作为丝状噬菌体展示系统的补充。

2、D蛋白展示系统

D蛋白是λ噬菌体头部组装必需蛋白，分子量11KD。λ噬茵体颗粒的两个结构单位头部和尾部是分别组装的。在头部组装过程中先形成支架状前头，然后水解加工成前头，当DNA进人头部以后，D蛋白附着于病毒衣壳的外侧、将噬茵体头部锁住，使之围绕DNA就位，因此正常情况下，D蛋白在噬茵体头部形态发生上是必需的。

但是当噬茵体基因组小于野生型基因组的82％时，它可以在缺少D蛋白的情况下完成组装，故D蛋白可作为外源序列融合的载体。这种展示一般为N端展示。

它的组装可以在体内，也可以在体外，体外组装即是将D融合蛋白结合到λD—噬菌体表面，而体内组装是将含D融合基因的质粒转化入λD—溶源的E．Coli菌株中从而补偿溶源茵所缺的D蛋白，通过热诱导而被组装，或利用噬菌体P1的Cre—loxP定点重组系统将外源基因整合进入噬茵体基因组中。

D蛋白展示系统的特点：因为是在病毒细胞内完成组装．无需将外源肽或蛋白分泌到细菌细胞膜，可以展示对细胞有毒性的蛋白。另外，D蛋白展示系统还可以用于cDNA文库的构建，抗原位点分析及作为基甲输送工具。Mikawa等对D蛋白的基因进行了改造，使外源序列在D蛋白的N端和C端都能插入，并成功地表面展示了有活性的葡萄球菌A蛋白IgG结合域、β—半乳糖昔酶和β—内酰胺酶。

三、T4噬茵体展示系统

T4噬菌体展示系统是将外源肽或蛋白质与T4噬菌体的小外衣壳蛋白（small outer capsid protein SOC）C端融合而被展示。如SOC是一个分子量为9KD的小蛋白，是T4衣壳组装非必需的，而且不论在体内还是体外，它都具有与成熟衣壳表面特定位点高亲和力地专一结合的能力，T4噬菌体是在宿主细胞内组装而不必通过分泌途径，因此可以展示的败或蛋白质范围广，尤其适用于展示那些不能被E．coli分泌的复杂蛋白质。

目前已成功地利用该系统展示了HIV—1病毒被膜糖蛋白gpl 20的v3环状结构域和脊髓灰质炎病毒VPl衣完蛋白（312肽），两者均能形成正确的折叠结构。

由于该系统容量大（至少35KD的蛋白质）、拷贝数高，故在完整结构域或蛋白质的免疫学展示、蛋白质与蛋白质问相互作用的研究及生物工程学方面有相当大的应用潜力。

现在有研究报道利用E.coli的脂蛋白、鞭毛蛋白展示外源蛋白。

但是相对而言，革兰氏阳性菌比阴性的有优越性：G+细菌表面受体比G—细菌更易接受外源序列的插入；G—细菌展示系统的表面展示要穿过整个细胞质膜，需要膜上的正确整合过程，而G+细菌展示系统只需穿过单层膜就可以实现理想的展示；以细菌全细胞作为诊断或Panning实验，从巨大文库中筛选特异性细菌克隆的实际操作中，因为G+细菌有较厚的细胞壁，不容易在各种实验过程中发生细胞溶解。