家兔动脉血压的神经、体液调节

家兔动脉血压的神经、体液调节

　　【目的要求】

　　1．学习直接测定和记录家兔动脉血压的急性实验方法。

　　2．观察某些神经、体液因素对心血管活动的影响。

　　【基本原理】

　　在正常生理情况下，人和高等动物的动脉血压是相对稳定的。这种相对稳定性是通过神经和体液因素的调节而实现的，其中以颈动脉窦-主动脉弓减压反射尤为重要。此反射既可在血压升高时降压，又可在血压降低时升压，故有血压缓冲反射之称。家兔的减压神经在解剖上独成一支，易于分离和观察其作用，为实验提供了有利条件。

　　本实验是应用液导系统直接测定动脉血压的。即由动脉套管、输液管及水银检压计相互连通，其内充满抗凝液体，构成液导系统。将动脉套管插入动脉内，动脉内的压力及其变化，可通过密闭的液导系统传递压力，反映在水银检压计上，由水银面的上下活动记录血压波动曲线。此外，也可通过压力换能器将压力变化转换为电信号，间接地用生理记录仪记录。

　　【动物与器材】

　　家兔、手术台、常用手术器械、止血钳、眼科剪、电动双记纹鼓与杠杆或生理记录仪与压力换能器、电子刺激器或生理多用仪、电磁标、双凹夹、气管插管、动脉套管、动脉夹、水银检压计、水银、保护电极、照明灯、纱布、棉球、丝线、注射器、生理盐水、3.8%柠檬酸钠、20%氨基甲酸乙酯、肝素（300单位/ml）、肾上腺素（1∶10000）、乙酰胆碱（1∶10000）。

　　【方法与步骤】

　　1．实验装置

　　(1)水银检压计法记录血压的实验装置

　　1)水银检压计是一个有刻度标记的“U”形玻璃管，管内装有水银。在管的一端水银面上加一浮标。浮标上有伸出管外的铝丝，铝丝上垂直装置杠杆与笔尖。管的另一端有两个侧管：下侧管通过输液管连接塑料三通管，再连动脉套管；上侧管供制压时排除管内空气使用。当动脉套管插入动脉后，其压力变化使水银面及浮标上下活动。笔尖便在鼓面上记录出压力曲线。

　　按图4-14装好水银检压计与两个电磁标，上电磁标连电子刺激器，作刺激记录；下电磁标接记时装置，作时间记录。注意：

①水银检压计之零点应与心脏在同一水平；

②三只笔尖应在同一垂直线上；

③水银检压计在零位时，其笔尖应与作刺激记录的电磁标笔尖重叠于一点，这样，刺激记录的基线即代表血压的零线。

　　2)水银检压计制压法将水银检压计下侧管与动脉套管之间的塑料三通管侧管接到装满柠檬酸钠溶液的注射器（如使兔肝素化，可用生理溶液代替柠檬酸钠溶液）。用止血钳先夹闭动脉套管侧的乳胶管，将柠檬酸钠溶液注入管内，从水银检压计上侧管彻底驱出管道内的气泡，然后夹闭上侧管。

继续向管内推注溶液，使水银面上升至100—120mm刻度处，立即用另一止血钳夹闭检压计侧的乳胶管，取下前—止血钳，同样将溶液注入管内，使动脉套管内无气泡残留。最后夹闭塑料三通管的中间侧管，取下注射器。

　　(2)压力换能器记录血压的实验装置

　　按连接压力换能器-生理记录仪和刺激器。注意：压力换能器的位置应大致与动物心脏在同一水平面。换能器的一端连生理记录仪的输入端，另一端有两个伸向外端的小管，分别与两个三通管相连。三通管A作注石蜡油和定零位用。三通管B的两个接头分别与动脉套管与注射器相连。

在插入颈总动脉之前，需旋动B上的开关，用注射器将肝素注入动脉套管，然后关闭三通管B。

　　调零与定标：接通生理记录仪电源，开启后级放大器开关，调节“调零”旋钮，使描笔移至水平位置，以此作为零线。拨通血压放大器的“输出”开关，再将描笔调至零线。开启“测量”开关。

旋动三通管A，使换能器与大气相通，如描笔移位，调节换能器的“调零”装置，使描笔“回零”。将校对的选择开关拨至100mmHg，将灵敏度旋钮调至50，按下“校对”按钮，检查描笔是否向上移动2cm。定标完毕，关闭三通管A。

　　连接记录仪的“外接标记”与刺激器的“连续”插孔，将保护电极连至刺激器的“输出”插孔，此时如开启刺激器，记录仪便可作出同步刺激标记。最后调节时间标记（10s）和走纸速度（0.5或1mm/s）。

　　2．手术过程

　　(1)术前准备

　　1)麻醉取家兔一只，称重，耳缘静脉缓慢注射20%氨基甲酸乙酯（1g/kg体重）进行麻醉。注射时速度要慢，并注意观察动物情况。当动物四肢松软，呼吸变深变慢，角膜反射迟钝时，表明动物已被麻醉，即可停止注射。

　　2)固定与剪毛将动物背位固定于手术台上，用剪毛剪将颈部手术野的被毛剪去，即可进行手术。

　　(2)手术

　　1)在紧靠喉头下缘，沿颈部正中线作一长约5—7cm的皮肤切口，用止血钳分离皮下结缔组织，首先看到胸锁乳突肌。再向下分离，便露出胸骨甲状肌和紧贴于气管上的胸骨舌骨肌。

　　2)气管切开术用止血钳由正中线将胸骨舌骨肌分离，暴露出气管。于已暴露的气管下面用镊子穿一丝线，打一活结。在喉头下2—3cm处的气管上作一“T”形切口，将与气管口径相近的气管插管向心方向插入气管中用线结扎，并将余线固定于气管插管的分叉处，以防气管插管松脱。

　　3）颈部神经血管分离术在颈部，神经与颈总动脉被结缔组织膜束在一起，形成血管神经束，位于气管外侧，其腹面被胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌所覆盖。

用止血钳分离上述肌肉之间的结缔组织，后用左手拇指和食指轻轻摄住分离的肌肉和皮肤，稍向外翻，即可将血管神经束翻于食指之上，然后用弯头止血钳分离颈总动脉外的结缔组织膜，将动脉分离约4cm长，即可穿线备用。注意：

①在分离及穿线时，切勿伤及其下的神经；

②在颈动脉近甲状腺处有甲状腺前动脉，分离时应稍靠其下，以免损伤。用同样方法分离另一侧颈总动脉，穿线备用。

　　轻轻提起右侧颈总动脉下的备用线，即可清楚看到3条粗细不同的神经：迷走神经最粗，呈白色，一般位于外侧，易于识别；交感神经较细，但较减压神经稍粗，略呈灰色，一般位于内侧；减压神经最细，呈白色，一般位于迷走和交感神经之间。

识别准确后，用玻璃解剖针沿纵向小心分离其外的结缔组织膜，一般先分离减压神经，然后再分离交感神经和迷走神经。神经由周围组织中分离出2cm即可穿线备用。

　　需要说明的是，上面对家兔颈部神经位置的描述是属于正常的解剖位置，由于家兔品种不同，个体的差异，常可发现3条神经的解剖位置有较大的变异。图4-18示家兔减压神经的5种变异类型：

①减压神经外侧位型，位于迷走神经之外侧；

②减压神经两分支型（如图所示又有两种情况）：

③减压-迷走神经干型；

④减压神经内侧位型，位于交感神经之内侧；

⑤减压-交感神经干型。由于这些变异类型的存在，在基本确定3条神经之后，可根据刺激神经时的瞳孔反应、耳血管网的数目和充血情况以及对血压的影响加以验证。

　　4）动脉套管插入法首先从耳缘静脉注入肝素（300单位/kg体重）以防凝血，而后插入动脉套管

　　在分离出来的右侧颈总动脉的远心端处（尽可能靠头端），用丝线将动脉结扎。在颈总动脉之近心端处（尽可能靠心端），用动脉夹将动脉夹住。于两者之间另穿一线，打一活结。

在紧靠结扎处的稍后方用锐利的眼科剪在动脉上沿向心方向作一斜形切口（注意：不可只剪开外膜，也切勿将整个动脉剪断，切口大小约为管径的一半）。将准备好的动脉套管由切口插入动脉管内，用备用线将套管尖端固定于动脉管内，并将余线结扎于套管的侧管上，以免滑脱。

注意：套管应与血管方向一致，且将套管放置稳妥，以防扭转或套管尖端刺破动脉管壁）。

　　3．实验观察在实验装置准备妥当、手术完毕以后，慢慢放松动脉夹，即可见有少量血液自颈总动脉冲向动脉套管。然后慢慢取下通向水银检压计的止血钳，此时检压计浮标的笔尖开始上下移动，随后可按以下实验项目进行观察。

　　(1)记录正常血压曲线开动电动记纹鼓或生理记录仪，描记一段正常血压曲线。识别一级波（心波）与二级波（呼吸波）。

　　(2)提起另一侧颈总动脉的备用线，以动脉夹夹闭10—15s。观察记录血压之变化，分析其原因。

　　(3)用手指压迫另一侧颈内动脉和颈外动脉分叉处，血压有何变化，为什么？

　　(4)刺激减压神经用中等强度的电刺激通过保护电极刺激另一侧减压神经，血压有何变化？然后进行双结扎，切断之。以同样强度的电流依次刺激减压神经的中枢端和外周端，观察记录血压变化，分析其变化是怎样引起的。

　　(5)用同样强度的电流刺激另一侧迷走神经，血压有何变化？在双结扎后切断，分别刺激其外周端与中枢端，观察记录血压变化，阐述其原因。

　　(6)耳缘静脉注入肾上腺素0.2—0.3ml，血压有何变化，为什么？

　　(7)耳缘静脉注入乙酰胆碱0.2—0.3ml，血压有何变化，为什么？

　　(8)窒息对血压的影响夹闭气管插管10s，观察记录血压变化，分析其可能的原因。

　　按实验观察的项目，将每一步骤的实验结果填入表4-3，并分析其机制。

　　【注意事项】

　　除文中已提及的注意事项外，在实验过程中还须注意：

　　1．一项实验后，须待血压基本恢复后再进行下一项实验。

　　2．随时注意动脉套管的位置，特别是动物挣扎时，避免扭转而阻塞血流或戳穿血管。

　　3．随时注意动物麻醉深度，如实验时间过长，动物经常挣扎，可补注少量麻醉剂。

　　4．注意保温：深度麻醉可使外周血管扩张，冬季保温不好常引起动物死亡。

　　5．血液凝固的处理一般血凝易发生在动脉套管的尖端。在轻度凝血时，可用止血钳夹闭动脉套管远端的乳胶管，而后双手挤压管壁，可将套管内的小血块压出。在凝血严重时，首先应用动脉夹夹闭动脉套管近心端的动脉，而后剪开结扎线，取下套管进行清洗。在补注少量肝素以后，再插入动脉套管。