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细胞凋亡的分子生物学检测方法

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<font>细胞凋亡中染色体<span>DNA的断裂是个渐进的分阶段的过程,染色体DNA首先在内源性的核酸水解酶的作用下降解为50-300kb的大片段。然后大约30 �的染色体DNA在Ca<sup> ²+</sup> 和Mg<sup>²+</sup> 依赖的核酸内切酶作用下,在核小体单位之间被随机切断,形成180~200bp核小体DNA多聚体。DNA双链断裂或只要一条链上出现缺口而产生的一系列DNA的3</span> </font> <font><span>’</span> <span>-OH末端可在脱氧核糖核苷酸末端转移酶(TdT)的作用下,将脱氧核糖核苷酸和荧光素、过氧化物酶、碱性磷酸化酶或生物素形成的衍生物标记到DNA的3</span> <span>’</span> <span>-末端,从而可进行凋亡细胞的检测,这类方法一般称为脱氧核糖核苷酸末端<a href="https://www.biomart.cn/supply/1001011315.htm" target="_self">转移酶</a>介导的缺口末端标记法(TUNEL)。由于正常的或正在增殖的细胞几乎没有DNA的断裂,因而没有3</span> <span>’</span> <span>-OH形成,很少能够被染色。低分子量的DNA分离后,也可使用DNA聚合酶进行缺口翻译(nick translation),使低分子量的DNA标记或染色,然后分析凋亡细胞。TUNEL或缺口翻译法实际上是分子生物学与形态学相结合的研究方法,对完整的单个凋亡细胞核或凋亡小体进行原位染色,能准确的反应细胞凋亡最典型的生物化学和形态特征,可用于石蜡包埋组织切片、冰冻组织切片、培养的细胞和从组织中分离的细胞的细胞凋亡测定,并可检测出极少量的凋亡细胞,灵敏度远比一般的组织化学和生物化学测定法要高,因而在细胞凋亡的研究中已被广泛采用。</span> </font>
<font> 一、过氧化物酶标记测定法</font>
<font> </font> <font>原理:脱氧核糖核苷酸衍生物地高辛[(digoxigenin)-11-dUTP]在TdT酶的作用下,可以掺入到凋亡细胞双链或单链DNA的3-OH末端,与dATP形成异多聚体,并可与连接了报告酶(过氧化物酶或碱性磷酸酶)的抗地高辛抗体结合。在适合底物存在下,过氧化物酶可产生很强的颜色反应,特异准确的定位出正在凋亡的细胞,因而可在普通光学显微镜下进行观察。</font>
<font> </font> <font>毛地黄植物是地高辛的唯一来源。在所有动物组织中几乎不存在能与抗地高辛杭体结合的配体,因而非特异性反应很低。抗地高辛的特异性抗体与脊椎动物甾体激素的交叉反应不到1%,若此抗体的Fc部分通过蛋白酶水解的方法除去后,则可完全排除细胞Fc受体非特异性的吸附作用。</font>
<font> </font> <font>本方法可以用于福尔马林固定的石蜡包埋的组织切片、冰冻切片和培养的或从组织中分离的细胞凋亡测定。<br /> (一)<b>试剂配制</b> </font>

<font> 1、</font> <font><span>磷酸缓冲液<span>PBS(pH7.4):磷酸钠盐 50mM,NaCl 200mM。</span> </span> </font>
<font> 2、</font> <font><span>蛋白酶<span>K(200μg/ml,pH7.4):蛋白酶K 0.02g;PBS 100ml。 </span> </span> </font>
<font> 3、</font> <font><span>含<span>2%H<sub>2</sub> O<sub>2</sub> 的PBS缓冲液(pH7.4):H<sub>2</sub> O<sub>2</sub> 2.0ml;PBS缓冲液 98.0ml。</span> </span> </font>
<font> 4、</font> <font><span>TdT酶缓冲液(新鲜配):Trlzma碱 3.63g用 0.1N HCl调节pH至 7.2,加</span> <span>ddH<sub>2</sub> O</span> <span>定容到<span>1000ml;再加入二甲砷酸钠 29.96g和氯化钴0.238g。</span> </span> </font>
<font> 5、</font> <font><span>TdT酶反应液:TdT酶32μl;TdT酶缓冲液 76μl,混匀,置于冰上备用。</span> </font>
<font> 6、</font> <font><span>洗涤与终止反应缓冲液:氯化钠 <span>17. 4g;柠檬酸钠 8.82g;</span> </span> <span>ddH<sub>2</sub> O</span> <span> 1000ml<br /> 7、</span> <span>0.05%二氨基联苯(DAB)溶液:DAB 5mg;PBS 10ml,pH7.4, 临用前过滤后,加过氧化氢至0.02%。</span> </font>
<font> 8、</font> <font><span>0.5%甲基绿(pH4.0):甲基绿0.5g;0.1M乙酸钠100ml。</span> </font>
<font> 9、</font> <font><span>100%丁醇,100%、95%、90%、80%和70%乙醇,二甲苯,10%中性甲醛溶液,乙酸,松香水等。</span> </font>
<font> 10、<span> </span> </font> <font><span>过氧化物酶标记的抗地高辛抗体(<span>ONCOR)</span> </span> </font>
<font> (二)实验步骤</font>
<font> </font> <font>1、标本预处理:</font>
<font><span> (1)</span> <span>石蜡包埋的组织切片预处理:将组织切片置于染色缸中,用二甲苯洗两次,每次<span>5min。用无水乙醇洗两次,每次3min。用95%和75%乙醇各洗一次,每次3min。用PBS洗5min 加入蛋白酶K溶液(20ug/ml),于室温水解15min,去除组织蛋白。用蒸馏水洗4次,每次2min,然后按下述步骤2进行操作。</span> </span><br /> <span> (2)</span> <span>冰冻组织切片预处理:将冰冻组织切片置<span>10%中性甲醛中,于室温固定10min后,去除多余液体。用PBS洗两次,每次5min。置乙醇:乙酸(2:1)的溶液中,于-20℃处理5min,去除多余液体。用PBS洗两次,每次5min,然后按下述步骤2进行操作。</span> </span><br /> <span> (3)</span> <span>培养的或从组织分离的细胞的预处理:将约<span> 5 × 10<sup>7</sup> 个/ml细胞于 4%中性甲醛室温中固定 10min。在载玻片上滴加 50~100μl细胞悬液并使之干燥。用PBS洗两次,每次5min,然后按下述步骤2进行操作。</span> </span> </font>
<font> 2、色缸中加入含2%过氧化氢的PBS,于室温反应5min。用PBS洗两次,每次5min。</font>
<font> 3、</font> <font><span>用滤纸小心吸去载玻片上组织周围的多余液体,立即在切片上加<span>2滴 TdT酶缓冲液,置室温1~5min。</span> </span> </font>
<font> 4、<span> </span> </font> <font><span>用滤纸小心吸去切片周围的多余液体,立即在切片上滴加<span> 54μl TdT酶反应液,置湿盒中于37C反应 1hr(注意:阴性染色对照,加不含TdT酶的反应液)。</span> </span> </font>
<font> 5、</font> <font><span>将切片置于染色缸中,加入已预热到<span>37℃的洗涤与终止反应缓冲液,于37℃保温30min,每10min将载玻片轻轻提起和放下一次,使液体轻微搅动。</span> </span> </font>
<font> 6、<span> </span> </font> <font><span>组织切片用<span>PBS洗 3次,每次 5min后,直接在切片上滴加两滴过氧化物酶标记的抗地高辛抗体,于湿盒中室温反应30min。</span> </span> </font>
<font> 7、</font> <font><span>用<span>PBS洗4次,每次5min。</span> </span> </font>
<font> 8、</font> <font><span>在组织切片上直接滴加新鲜配制的<span>0.05%DAB溶液,室温显色3~6min。</span> </span> </font>
<font> 9、</font> <font><span>用蒸馏水洗<span>4次,前3次每次1min,最后1次5min。</span> </span> </font>
<font> 10、<span> </span> </font> <font><span>于室温用甲基绿进行复染<span>10min。用蒸馏水洗3次,前两次将载玻片提起放下10次,最后1次静置30s。依同样方法再用100%正丁醇洗三次。</span> </span> </font>
<font> 11、<span> </span> </font> <font><span>用二甲苯脱水<span>3次,每次2min,封片、干燥后,在光学显微镜下观察并记录实验结果。</span> </span> </font>
<font> (三)注意事项</font>
<font><span> </span> <span> </span> <span>一定要设立阳性和阴性细胞对照。阳性对照的切片可使用<span>DNaseI部分降解的标本,阳性细胞对照可使用地塞米松(1μM)处理3-4hr的大、小鼠胸腺细胞或人外周血淋巴细胞。阴性对照不加TdT酶,其余步骤与实验组相同。</span> </span> </font>

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