RT-PCR原理与实验技术
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一、知识背景:
单拷贝基因表达存在逐步放大机制,如一个蚕丝心蛋白基因——104个丝心蛋白mRNA(每个mRNA存活4d,可以合成105个丝心蛋白)——共合成109个丝心蛋白 。因此单拷贝基因的mRNA表达水平对于其功能水平的调控是非常重要的。
以上三步为一个循环,如此反复。
(3)依赖DNA的DNA聚合酶活性:以第一条DNA链为模板合成互补的双链cDNA.
(1)引物的特异性决定PCR反应特异性。因此引物设计是否合理对于整个实验有着至关重要的影响。
在引物设计时要充分考虑到可能存在的同源序列,同种蛋白的不同亚型,不同的mRNA剪切方式以及可能存在的hnRNA对引物的特异性的影响。尽量选择覆盖相连两个内含子的引物,或者在目的蛋白表达过程中特异存在而在其他亚型中不存在的内含子。
g.5’端无严格限制:5’末端碱基可以游离,但最好是G或C,使PCR产物的末端结合稳定。还可以进行特异修饰(标记、酶切位点等)等等。
根据实验目的选择适当的引物。常用引物设计软件如Primer5.0,Oligo6.0等对于这些条件都可以自行设置。
实验所用的接触样品的耗材如冻存管、枪头、EP管之类事先都需经过0.1%DEPC水浸泡处理,除去RNA酶,防止操作过程中RNA降解。然后经高压灭活(灭菌和灭活DEPC)。
变性液、水饱和酚、乙酸钠、氯仿、异丙醇、75%酒精、经DEPC处理并高压的水。
RT-PCR中从细胞分离的RNA的质量至关重要,包括RNA的纯度和完整性。RNA分离的最关键因素是尽量减少RNA酶的污染。但RNA酶活性非常稳定,分布广泛,除细胞内源性RNA酶外,环境中也存在大量RNA酶。
因此在提取RNA时,应尽量创造一个无RNA酶的环境,包括去除外源性RNA酶污染和抑制内源性RNA酶活性,主要是采用焦碳酸二乙酯(DEPC)去除外源性RNA酶,通过RNA酶的阻抑蛋白Rnasin和强力的蛋白质变性剂如异硫氰酸胍抑制内源性RNA酶。
2、cDNA的合成:
3、PCR扩增:
PCR条件的优化主要是
①引物退火温度的调节,一般在引物设计软件推荐温度的上下2 ℃变化寻找最佳退火温度。
②此外Mg2+浓度的调节也非常重要,通常最佳浓度为2 mM左右。
③引物和模板的量等。
根据产物长度制作适宜浓度的琼脂糖凝胶(不同长度产物所需凝胶浓度),取适量PCR产物,加上样缓冲液充分混合,点样于事先做好的琼脂糖凝胶点样孔中,10V/cm电泳45-60min。成像系统成像分析。
1. 注意避免有毒、有害试剂伤害自己和他人:氯仿、溴化乙锭(EB)、酚、异硫氰酸胍、紫外线等。
2. 注意避免试剂污染。
3. 始终注意避免RNA酶的污染。