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细胞如何计数?

生物学霸

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细胞计数

细胞计数,看起来简单,其实暗藏玄机。今天就一起来学习下如何计数。

1.原理

计算细胞数目可用血球计数盘或是 Coultercounter 粒子计数器自动计数。

血球计数盘一般有二个 chambers,每个 chamber 中细刻 9 个 1 mm² 大正方形,其中 4 个角落之正方形再细刻 16 个小格,深度均为 0.1 mm。当 chamber 上方盖上盖玻片后,每个大正方形之体积为 1 mm²×0.1 mm=0.0001 mL。使用时,计数每个大正方形内之细胞数目,乘以稀释倍数,再乘以 10000,即为每 mL 中之细胞数目。

存活测试之步骤为 dyeexclusion,利用染料会渗入死细胞中而呈色,而活细胞因细胞膜完整,染料无法渗入而不会呈色。一般使用蓝色之 trypan blue 染料,如果细胞不易吸收 trypan blue,则用红色之 Erythrosin bluish。

计算细胞活率:活细胞数/(活细胞数+死细胞数)×100%。计数应在台盼兰染色后数分钟内完成,随时间延长,部分活细胞也开始摄取染料;因为台盼兰对蛋白质有很强的亲和力,用不含血清的稀释液,可以使染色计数更为准确。

2.材料

0.4% w/v trypan blue

Erythosin bluish stain

取 0.1 gram Erythrosin bluish 及 0.05 gram preservative methyl paraben 溶于 100 mL Ca++/Mg++ freesaline

血球计数盘及盖玻片

计数器

低倍倒立显微镜

粒子计数器

白细胞稀释液(4% 乙酸溶液)。

3.步骤

(1)取 50 μL 细胞悬浮液与 50 μL trypan blue(or Erythrosinbluish)等体积混合均匀于 1.5 mL 小离心管中。

(2)取少许混合液(约 15 μL)自血球计数盘 chamber 上方凹槽加入,盖上盖玻片,于 100 倍倒立显微镜下观察,活细胞不染色,死细胞则为蓝色 (或红色 Erythrosin bluish)。

(3)计数四个大方格之细胞总数,再除 4,乘以稀释倍数 (至少乘以 2,因与 trypanblue 等体积混合),最后乘以 10000,即为每 mL 中细胞悬浮液之细胞数。若细胞位于线上,只计上线与右线之细胞 (或计下线与左线之细胞)。

注:4 大格细胞总数×稀释倍数×10000/4=细胞数/mL;每一大格的体积=0.1 cm×0.1 cm×0.01 cm=0.0001 mL 。

计数板计数时,最适浓度为 5~100000 细胞/mL,此范围外计数误差偏大。高浓度细胞悬液,可取出部分作稀释或连续稀释后计数。

4.范例

T75 monolayer culture 制成 10 mL 细胞悬浮液,取 0.1 mL 溶液与 0.1 mL trypan blue 混合均匀于试管中,取少许混合液加入血球计数盘,计数四大方格内之细胞数目。

活细胞数/方格:55,62,49,59;死细胞数/方格:5,3,4,6;细胞总数=243 。

平均细胞数/方格=60.75;稀释倍数=2

细胞数/mL:60.75×10000×2(稀释倍数)=1.22×10000000

细胞数/flask(10 ml):1.22×1000000×10 ml=12.2×10000000

存活率:225/243﹦92.6%

5.要点

(1)计数板和盖玻片擦拭好,绸布拭干。

(2)充分混匀细胞悬液(细胞活力高时,不必用胎盘兰染)。

(3)吸管取 1 滴至计数板:

吸管吸取细胞,让吸管在计数板一侧的凹槽处流出液体,至盖玻片被液体充满为止,不要溢出盖玻片,也不要过少或带气泡;(有人认为,10 uL 就可以被虹吸作用吸入且铺满计数板)。

移液器(20 μL 的微量加样器)吸取 20 μL 细胞悬液至计数板边缘,液体经虹吸作用进入凹槽。

(4)静置半分钟。

(5)在显微镜下观察(10 × 物镜),2 个以上细胞组成的细胞团按一个细胞计算,压线的细胞只计上线和左线者(防止细胞被重复计数)。

4 大格 _细胞总数 _2_*_10000~H4_~L_细胞数/mL * 每一大格的体积 = 0.1 cm x 0.1 cm x 0.01 cm = 0.0001 mL

作者:zjlijing
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