简介
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用途
检测目的蛋白表达量
材料与仪器
PBS,裂解液,ddH2O,30% 预制胶,Tris-HCl(pH8.8),Tris-HCl(pH6.8),SDS,APS,TEMED,BCA 的 A 液及 B 液,loading buffer,marker,甲醇,电泳液,转膜液,脱脂奶粉,TBST,一抗及对应二抗,显影 A 液,细胞刮刀,1.5ml 离心管,移液枪及枪头,96 孔板,离心机,电泳槽,PVDF 膜,摇床,曝光机。
步骤
一、蛋白样品制备(单层贴壁细胞)
1.倒掉培养液,PBS洗涤,弃净PBS,加入裂解液(毫升数视细胞数确定),置于冰上或4℃冰箱裂解10min,用细胞刮刀及移液枪将细胞碎片及裂解液移至1.5ml离心管,继续裂解20min。
2.于4℃离心机离心(14000rpm,15min),取上清,置于-20℃冰箱保存。
二、蛋白含量的测定(BCA)
1.取出蛋白样品,置于冰上融化。取4微升样品,20倍稀释(4微升样品+76微升ddH2O)。
2.配制BCA液(A:B=50:1),在96孔板上每孔加入100微升BCA液,加入20微升被试,每个样品重复3孔。避光37℃30min,于562nm测定,计算蛋白浓度。
三、电泳
1.玻璃板夹好,检漏后,加入 10% 分离胶。
10% 分离胶(20ml)=8ml ddH2O+6.6ml 预制胶 +5ml Tris-HCl(pH8.8)+0.2ml 10%SDS+0.2ml 10%APS+0.008ml TEMED
用移液枪加胶,加异丙醇,约30min后分离胶凝固,倒去异丙醇,加入5%浓缩胶。
5%浓缩胶(6ml)=4.05ml ddH2O+1ml30%预制胶+0.75ml Tris-HCl(pH6.8)+0.06ml 10%SDS+0.06ml 10%APS+0.006ml TEMED
插入梳子,约30min后浓缩胶凝固,放入电泳槽。
2.配制上样的样品,100℃ 金属浴 15min,放凉,上样,上 marker,60V 电泳,也可为 80V,跑过浓缩胶后可加到120V,跑至底层后可停止,也可在刚跑出时停止。
四、转膜
1.剪取适宜大小的 PVDF 膜,浸泡在无水乙醇中 2 min活化,移入转膜液中浸泡。
2.三明治结构:夹子的黑色一面+海绵垫+三层滤纸+胶+膜+三层滤纸+海绵垫+夹子的透明一面,夹紧。放入转移槽,夹子的黑色一面对槽的黑色一面,夹子的透明色一面对槽的红色一面,放入冰中,或在4℃冰箱转膜,250mA,2.5h。
3.可用丽春红染色后切膜,用 TBST 洗净。
五、封闭
1.以 TBST 作溶剂配制 5% 脱脂奶粉。
2.膜浸泡于 5% 脱脂奶粉,于摇床上低速摇晃,封闭 2 h,弃去 5% 脱脂奶粉,以TBST 于摇床上高速摇晃,洗涤 5 min,重复三次。
六、一抗孵育
1.加入一抗,于 4℃ 冰箱孵育过夜。
七、二抗孵育
1.回收一抗,TBST 洗涤 15min,重复三次。
2.加入对应的二抗,于摇床上常温孵育 2h,TBST 洗涤 15min,重复三次。
八、显影
1.将显影 A 液和 B 液以 1:1 配制,将膜浸入显影液 5s 后,即可在曝光机上曝光。
注意事项
1.三明治结构不可有气泡。
2.显影液现配现用。
3.TEMED 有毒,注意防护。
4.APS 和 TEMED 是催化剂,最后加。
常见问题
1.上样量多少?
我一般是 15-30 g,如果结果显示蛋白量很低,可能还会再增加。
2.裂解液的配制?
1ml 裂解液=560 微升 ddH2O+300 微升 3.3xRIPA+40 微升 25x蛋白酶抑制剂+100微升 10 x磷酸酶抑制剂+10 微升 PMSF+2 微升 DNase I
3.可用水代替异丙醇吗?
可以用水,只是异丙醇密度更大,压的效果会更好一些。
来源:丁香实验