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S V 4 0 体 外 传 递 系 统

相关实验:SV40 的体外包装: 一种假病毒体基因递送系统

最新修订时间:

材料与仪器

步骤

S V 4 0 体 外 传 递 系 统

材料

试剂

A T P (10 0 m m o l/ L ;R oche)

缓冲液 I

10 m m o l/L H E P E S (p H 7. 9)

10 m m o l/L K C l

0.lm m o l/L E D T A

0 . 1 m m ol/L E G T A

用 0.22um 滤膜过滤灭菌。缓冲液 I 能在 4°C 保存 30d。

使用前加入:
0.5m m o l / L phenylmethylsulfonyl fluoride (P M S F )

l m m o l / L 二硫苏糖醇(D T T )

在 Iml PBS 中溶解 1 片蛋白酶抑制剂( Roche 1873580 ) , 用缓冲液 I 1 :50 稀释。

缓冲液 II

20m m o l / L H E P E S ( p H 7. 9)

0.4m m o l / L NaCl

0.l m m o l / L E D T A

l m m o l / L E G T A

用 0.22um 滤膜过滤灭菌。缓冲液 II 能在 4℃ 保存 30d。

使用前加入:

l m m o l / L P M S F

l m m o l / L D T T

在 Iml PBS 中溶解 1 片蛋白酶抑制剂( Roche 1873580 ) ,用缓冲液 11 :50 稀释

CaCl2 (10 mmol/L)

细胞

用于研究的细胞系

在培养皿或悬浮维持要转化的细胞系。

草 地 夜 蛾(Sf9 ) 细胞

培养基

细胞生长培养基(含有乳清蛋白和 yeastolate 的 G r a c e 昆虫培养液)

完全生成培养基

使用所研究细胞系合适的培养基。

M g C l 2 (200m m o l /L )

Nonidet P -40 (N P -40; 1 0% V /V in P B S )

磷酸盐缓冲液(P B S )

质粒 D N A (可达17. 7k b)

要获得最高体外包装效率,使 用 C s C l —氯化铯密度梯度平衡离心纯化质粒 D N A 。

小 干 扰 R N A (s i R N A )

V P l 杆状病毒

通过引人一’个 DNA 片段(SV40 上 1463^〜2770) 到由 Aw 吨 ra 灿 a cW/omicanuclear pholyhedrosis 病毒(AcMNPV) 衍生(Luckow and Summers 1988) 的 pVL1393 质粒(PharMingen, San Diego, California) 中,进行 VPl 的克隆(PharMingen, San Diego,
California) 。然后经限制性内切核酸酶 SmaI 和 BgZII (Sandalon and Opperiheim 1997,2001) 消化。分装病毒储液,保存在一 80°C 中。

仪器

培 养 箱(恒湿, 37°C , 5 % C O 2)

离 心 管(40m l ,无菌, Sorvall)

微 型离心管(1.5m l )

摇床

搅拌培养瓶(250m l )

组织培养皿(60m m )

有微型离心管平台的涡旋混合器

恒 温水浴锅 (37°C )

方法

转化 Sf9 细胞

1.在 250m l 培养瓶中,以感染复数为 1 0 的 V P l 杆状病毒感染新鲜培养的 5 X 1 〇8 Sf9细胞。

不建议放大到 500 ml。

核蛋白提取

感 染 后 4〜5d 收 集 Sf9 细胞。收获细胞的时间由 vpl 的表达水平及核提取物的包装功能决定。

2•把转化后的细胞从 250m l 培养瓶转移到预冷的 40m l 试管中。

3•准备缓冲液 I 和 II。放置在冰上。预冷微型离心管。

4.用 冷 的 P B S 清洗细胞三次,每次在 4°C , 6000r/m i n 离 心 5m i n 。

5•去上清。涡旋使沉淀完全重悬

这一步不要冷冻。

6•加入 I m l 缓冲液 I。轻轻吹打使沉淀重悬直到完全分散。

7.慢慢加人 28m l 缓冲液 I。在冰上孵育 15m i n 。

8•加人 2. 3m l 10% N P -40。涡旋混合 10s。

9•在冷冻离心机 (约 4°C ) 中 13 000r/m i n 离 心 3m i n 。

10.用连接真空吸气器的吸头去除上清。 、细胞核内物质在沉淀中。

11•涡旋振荡沉淀。加 人 5m l 缓冲液 II。充分混合后转移到微量离心管中。

每管的总体积本要超过 lml。

I2. 把管子放在连接到振荡器的平台上。 4°C 涡旋混合 15m i n 。

13.4 C , 13 000r/m i n 离心微量离心管 5m i n 。

14•将核提取物上清分装到预冷的管子里。

15•测定核提取物的蛋白质浓度。

注意到核提取物含有 N P -4 〇。并不是所有测定蛋白质浓度的方法都和 N 1m o 兼容。只有当浓度起过 3m g /m l 才能用于体外包装。

16• 在 一 20〜一 8℃ 储存核提取物。
体外包装 17•对于每个反应的体外包装混合液,在 微 量 离 心 管 中 加 入 24y 200mm〇 l/L MgCl2、 30M1 100mmol/L A T P 和 IOOfXg从 V Pl-转化细胞中得到的核提取物。 18•加人 IOOpg 质粒 DNA 或 I^g siRNA。 体外包装反应的对照应是无核提取物的反应、从 未 转 化 的 Sf9 细胞得到的核提取物的反应 或 报 道 基 因 D N A 。 19. 加人双蒸水到总体积600/J 。充分混合。 20. 37°C水浴孵育6h。 21. 加 人 66/J 10mmol/L CaCl2 到每个反应管中。轻轻祸旋混合。 22. 在冰上孵育lh 。 23. 在一20°C保存体外包装反应管直到使用。 使 用 SV4 0 体外包装转化细胞 对原来的实验步骤所做的一些改变可以同时提高在几种细胞系的表达水平和转化效 率 (表 2)。 表 2 . 增加到原来实验方法里能提高表达量和转化率的步骤 体 外 准 备 在 步 骤 1 9 之 前 加 人 0 •3mmol/L 谷胱甘肽二硫化物和3mmol/L 还原型谷胱甘肽 包 装 反 应 在 转 化 之 前 ,用 〇 •1 单 位 的 DNase I 消 化 0 •0 1 个体外包装反应液30min后马上放到冰上 细 胞 转 化 转 化 前 5d,在细胞里加人0. 5ng/m l佛波酯(phorbol 12-myristate 13-acetate) 长期表达可以通过选择,转 化 后 24〜48h 就可以开始使用药剂,如 对 于 新 霉 素 使 用TOOpg/ml G418, 使 用 60; ig /m l的秋水仙素 使用相同的方法在第一次转化24h 后再次转化细胞 使用两个原来反应的体外载体(步骤14)用微量浓缩过滤系统浓缩成一个反应的体积(Centricon离 心过滤系统体积至少2ml,YM-100 w•膜Millipore) 转 化 前 加 人 IOngAnl的组蛋白去乙酰化抑制剂T S A 到细胞中 24.转 化 前 16〜24h,用胰酶消化贴壁生长的所需细胞系。 25•转移细胞到60m m 组织培养皿,密度为每盘I X l O 5 个细胞。 如果细胞是悬浮生长,每 个 6 0 _ 培养皿中加入 I X l O 5 个细胞,总 体 积 340fj 。 26•加人5ml完全培养基。在 37°C , 5 % C0 2 恒湿培养箱中孵育。 27•解冻体外包装反应管(步 骤 23)。每个盘中加人一管体外包装反应液。 用经裸露D N A 转化的细胞作为对照。 2 8 . 把盘子放在位于培养箱内的摇床上。摇 2. 5h 。 29. 加 入 4m l新鲜的完全生成培养基到每个盘中。然后放回到培养箱里。 30. 2 4 h 后或转化后更长时间计算基因表达量和功能。

来源:丁香实验

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