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小 鼠 巨 噬 细 胞 的 分 离

相关实验:小鼠巨噬细胞的分离

最新修订时间:

材料与仪器

步骤

基 本 方 案 1 小鼠腹腔巨噬细胞的分离

材料

小鼠,洁 净 环 境 中 饲 养(最好置层流柜中饲养)

7 3 % (m /V ) 豚 蛋 白 胨 或 者 3 % (W V r) Brewer 硫 基 乙 酸 盐 肉 汤(Brewerthioglycollate medium,分离炎性腹腔巨嗤细胞用)

7 0 % 乙醇

收集用培养基:含 5 % (v/V ) FBS (Hyclone,无内毒素)的 D M E M (G I B C O /B R L )

Diff-Quik 染液 I、 II 和 III (Baxter)

25 G 针头

6m l 和 30m l 注射器

镊 子 和平头外科剪(浸 于 7 0 % 乙醇中)

19 G 针头

50m l 聚丙烯锥底塑料离心管,冰上预冷

离 心 机(Shandon/Lipshaw)

细 胞 甩 片 机(Shandon/Lipshaw)

Sorvall R T 6000 离 心 机 及 H l O O O B 转 子(或替代品)

la. 收集静息腹腔巨噬细胞时:断 头 或 C O 2 窒 息 处 死 小 鼠(附 录 2 G )

Ib. 收集炎性腹腔巨噬细胞时:用 6m l 注射器吸取 Iml 3 % 豚蛋白胨肉汤。换 用 25 G 针头将肉汤注入小鼠腹腔(附 录 2E )。 3d 后断头或 C O 2 窒 息 处 死 小 鼠(附 录 2 G )。 也可腹腔注射 Iml 3 % Brewer 硫基乙酸盐肉汤, 5〜7d 后收集细胞。

2.7 0 % 乙醇消毒小鼠腹部。无菌剪开腹部毛皮,用镊子夹住腹部毛皮,向两边撕开,暴露完整腹膜。

3 . 将 1 9 G 针头装在 3 0 m l 注射器上,吸 取 I O m l 收集用培养基。针尖斜面向上,在腹中线 处 刺 透 腹 膜(附 录 2E ) ,将培养基注入腹腔。为防止刺破肠壁,在针尖穿过腹膜时 ,可推动针筒使少量培养基流经针头,进入腹腔。

4 . 调整针尖斜面向下,轻轻挑起腹膜,慢 慢 吸 回 腹 腔 灌 洗 液(每只小鼠约 8 ml)。将腹腔灌洗液加入冰上预冷的 50m l 聚丙烯塑料离心管中。

5 . 取 20ul 腹腔灌洗液,计 数(附 录 3A )。

6 . 取 0. 2m l 腹腔灌洗液加入细胞甩片机中。按说明书, 600r/m i n 离 心 6 min,制备细胞甩片。风干后,进 行 Diff-Quik 染色,并计数。

7 . 将剩余的腹腔灌洗液, 4°C , 400 g 离 心 lOmin,弃上清,轻弹管底,混勻细胞。加入收集培养基调整细胞至合适浓度。

一 只 小 鼠 可 获 得 2 X 1 0 6〜 3 X 1 0 6 个 腹 腔 细 胞 , 其 中 巨 噬 细 胞 占 5 0 % 〜 7 0 % 。 月示蛋 白 胨 或 硫 基 乙 酸 盐 肉 汤 腹 腔 注 射 后 小 鼠 , 每 只 可 分 别 获 得 3 X IO6〜 4 X IO6 个 及 约IO7 个 巨 噬 细 胞 。 这 些 促 炎 剂 可 募 集 新 生 的 、 未 成 熟 巨 噬 细 胞 至 腹 腔 。

基 本 方 案 2 小鼠骨髓巨噬细胞的分离和培养

材 料

小鼠 ,洁 净环境中饲养(最好置层流柜中饲养)

PBS

淋 巴细胞分 离 液(L S M ; Organon Teknika Cappel)

含添加 物 的 E M E M 和 E M E M -10

小鼠特异性 C S F 或 IL-3 (G e n z y m e )

II 型中性蛋白酶, 1.0m g / m l (BoehringerMannheim)

镊 子 和 剪 刀(浸 于 7 0 % 乙醇中)

25m l 注射器

26 G 针头

50m l 聚丙烯锥底塑料离心管,冰上预冷

15m l 聚丙烯锥底塑料离心管

Sorvall R T 6 0 0 0 离心机和 H B 1 0 0 0B 转 子(或替代品)

25c m 2 和 75c m 2 细 胞 培 养 瓶(Corning)

无菌橡皮细胞刮子

1 . 处 死 小 鼠(附 录 2 G )。将小鼠后肢的皮毛剥至足部。连同褪下的皮毛剪去双足。剪下后腿,放入盛有无菌 P B S 的培养皿中。

2 . 镊子夹住腿骨一端后,用剪刀剔除肌肉。在关节处剪断腿骨3. 25m l 针筒装上26G 针头,吸取2〜5m l 无血清的E M E M 或 P B S 。将针头刺入骨髓腔 (股骨或胫骨),冲洗骨髓。重复冲洗直至骨髓腔变白。将骨髓冲洗液加入冰上预冷 的 50m l 锥底离心管中。 4 . 室温, 500g 离 心 IOmin,弃上清,收集骨髓细胞。加 入 3〜5m l 无 血 清 E M E M 重悬 细胞。 5 . 在 15m l 离心管底部加入5m l L S M ,将 5m l 骨髓细胞悬液轻轻叠加其上。避免超过 L S M 分离液最髙细胞负荷(一般情况下, 5ml L S M 可 分 离 5 只小鼠的骨髓细胞)。 室温, 500g 离 心 20min,缓慢减速。 6 . 用 Pasteur吸管或5m l 枪头轻轻吸取界面层细胞,至新的离心管中,操作时将吸管头 一直置于界面层,边缓慢移动吸管头,边轻吸界面层细胞。 7. 4°C , 500g 离 心 lOmin,收集界面层细胞。用 IOml含 血 清 的 E M E M -10洗涤细胞, 然后将细胞重悬于E M E M -I O 中,并调整浓度至5 X 106个细胞/ml (每只小鼠可获得 3 X 106〜IOXlO6个细胞)。 8 . 将 I X l O 7〜3 X 107个骨髓细胞加入25cm2细胞培养瓶中,然 后 加 入 IOml含适量生长 因 子 (C S F 或 IL- 3 ) 的 E M E M -10。细胞 置 37°C , 5 % C 0 2细胞培养箱中培养24h 。 根据所用C S F 不同,其用量需相应调整。一般说来,有效刺激半固体培养基中 克隆形成的C S F 浓度,即足够提供液体培养基中巨噬细胞生长所需。如 lOng/ml G M -C S F ,或 IL-3,或 500〜1000U/ml CSF-1。 9 . 将 悬 浮 细 胞 转 移 至 75cm2细胞培养瓶中。加 入 IOml含 生 长 因 子 的 E M E M - 1 0 , 置 37°C , 5 % C 0 2细胞培养箱中培养4d 。 1 0 . 补 充 IOml含生长因子的E M E M -I O 培养基,继续培养3d 。 1 1 . 吸弃细胞培养上清。加 入 15ml P B S 洗涤贴壁细胞。 1 2 . 用 P B S 配 制 I.O m g /m l 的 中 性 蛋 白 酶 溶 液 (每 瓶 细 胞 需 5ml)。滤 过 除 菌 ,预温 至 370 C 。 1 3 . 吸 弃 P B S 。加 入 5m l 中性蛋白酶溶液, 37°C 消 化 5min。为避免细胞过度消化,最 多同时处理5 瓶细胞。 1 4 . 轻拍培养瓶侧面振松细胞,用无菌橡皮细胞刮子沿同一方向轻轻刮下细胞(避免来 回刮除)。 1 5 . 加入1〇 1111£以£以-10培养基,收集刮下的巨噬细胞。 4°〇, 50(^离心1〇 111丨11。用 3〜5m l 培养基重悬细胞并计数(附 录 3A )

来源:丁香实验

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