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B 细 胞 功 能 的 增 殖 检 测 方 法

相关实验:B 细胞功能的增殖检测方法

最新修订时间:

材料与仪器

步骤

基 本 方 案 抗 I g M 与 L P S 刺激的 B 细胞增殖

材 料(带 V 项 目 见 附 录 1)

纯化的静息 B 细 胞(单 元 2. 5),采 用 Percoll 梯度离心制备

V D M E M -10 完全培养基

山羊抗 IgM (JacksonImmunoresearch) 或细菌 LPS (E . Difco #011B 4)

0.lm C i/m l 溶 于 HBSS ( 附 录 1 ) 的 [3 H ] 胸 腺 嘧 啶(20Ci/mmol/L ; Du PontN EN )

15m l 聚 丙 燦 管(Falcon)

9 6 孔 平 底 微 孔 板(Costar)

直接收集细胞到玻璃纤维板条的收集系统(P H D Harvester, Cambridge Technologies)
1 . 在 15m l 离心管中,用含添加物的D M E M -I O 培养基制备纯化的静息B 细胞悬液,浓 度为 IO6 个细胞/ml (—般> 1 0 ml D M E M -10/板)。 2 . 用含添加物的D M E M -10制 备 山 羊 抗 IgM (2〜2( % Lg/ml) 或 L P S (1〜100Mg/ml) 的工作液,刺激物至少应有3 个浓度范围。 有些山羊抗I g M 抗体制备物比其他的具备更强的促分裂能力。但是无论如何当 抗 I g M 抗体通过偶联到琼脂糖珠子而变成固相试剂时其促分裂能力将会增强(Pur6 and Vitetta, 1980)。改善促分裂能力的另一种方法是使用F (at/)2 片 段 (单 元 1.6、 1.7、 2. 6 ) 而非整抗体以避免F c 受体介导的增殖抑制(当使用兔抗I g M 时这个方法 是非常重要的)。单克隆大鼠抗I g M 抗体也能用作丝裂原,但是与多克隆抗体的情况 一样,它们以这种方式作用的能力是可变的。最后,在大多数 情 况 下 抗 I g D 抗体可 代 替 抗 I g M 抗体使用。 3 . 向 9 6 孔培养板的三孔中加人0. I m l 含添加物的D M E M -10作为阴性对照。于其他孔 的 3 复孔组合中,加 入 0.1m l 三种浓度中任一浓度的刺激剂(步 骤 2 中)。 4 . 向每孔加入0.1m l 纯 化 的 B 细 胞 悬 液 (来 自 步 骤 1 ; 终 浓 度 为 每 孔 IO5 个细胞)。颠 倒管子混匀细胞以确保一致的细胞悬液。 5 . 将培养板放置在饱和湿度的37°C , 5 % <302培养箱中24〜72h (赙育时间根据经验来 确定, 24h 时大细胞及细胞团块的存在代表良好的细胞增殖)。 培养箱的湿度,温度和C O 2 水平是影响细胞活力继而增殖反应强弱的重要因素。 对于如前所述的小鼠B 细胞的体外培养, 5 % C 0 2 环境是最好的。可以将一金属盘盛 满含有抑菌物的去离子水放在孵箱底部的托盘下面来维持湿度。每 2 周更换盘内的 水。 37°C 的准确温度非常重要。高于或低于此温度的一个很小的波动都对细胞生长 有巨大的影响。 6 . 用多道移液器向每孔中加入O.l m l O .lmCi/m i P H ] 胸腺嘧啶。将培养板放回饱和 湿 度 的 37°C , 5 % C O 2培养箱中最后培养16h (作用时间长度不是很重要)。 7 . 用 P H D 收细胞仪器收细胞到玻璃-纤维盘上或冻存于一20°C 以备以后收集。 8 . 将盘加入到含I.5m l 闪烁液的小瓶中并用P 液闪仪检测c p m 。 9 . 依 单 元 2.11基本方案1 中的步骤9 所述方法计算数据。

备 选 方 案 1 用 8-巯 基 喹 啉(8-MG) 剌 激 B 细胞多克隆活化

附 加 材 料(见基本方案)

8- M G (Sigma)

0.Imol/L N a O H

2mol/L HCl

1.如 果 8-M G 被作为唯一的 B 细胞激活剂,则采用位于 5 0 % 与 6 0 % Percoll 间纯化的 B细胞,而非位于 7 0 % Percoll 区带的静息 B 细 胞(单 元 2.5)。

2.准备 2 mmol/L 8- M G 液 体 :将 5m g 8- M G (Sigma) 溶解于 0.3 ml 0 •lmol/L N a O H ,加 入 7. O m l 含添加物的 D M E M -I O 并 用 2mol/L HCl (15M1 ) 调 节 p H 至 7. 0 。

3.按基本方案步骤 3 单 独 将 0. 05 ml 2 mmol/L 8-M G 或 将 其 与 抗 Ig (0.5 mmol/L 终浓度)联合加入到 9 6 孔培养板中,每孔最终体积为 0. 2m l 。

4 . 继续基本方案步骤 4〜9。

备 选 方 案 2 用 蛋 白 激 酶 C 激活剂及钙离子载体刺激 B 细胞多克隆活化

附 加 材 料(见基本方案)

lmmol/L 溶于乙醇的 P M A 与 P D B U (Sigma)

10 mmol/L 溶于乙醇的 indolactam (LC Services)

lmmol/L 溶于乙醇的伊屋霉素(Calbiochem)

1 .采用含添加物的 D M E M -I O 准 备 P K C 激活剂与钙离子载体的工作液(每种设置三个稀释浓度):

0.04〜4. Opmol/L P M A 与 P D B U

0.04〜4. Ojumol/L indolactam

0.4〜4. Ommol/L 伊屋霉素

2.按基本方案步骤 3 将 50M1 P K C 激 活 剂 与 5 〇 4 伊 屋 霉 素 按 每 一 稀 释 浓 度(来自步骤1 ) 加 入 到 9 6 孔 培 养 板(培养孔中终浓度为: P M A 与 P D B U , 0.01〜1.0 Mmol/L ;
indolactam, 0.01 〜1.0jtxmol/L ; 伊屋霉素, 0.1 〜I.Ommol/L )

3.继续基本方案步骤 4〜9。

备 选 方 案 3 硫 酸 葡 聚 糖 与 poly (I : C) 刺 激 B 细胞多克隆活化

附 加 材 料(见基本方案)

10mg/ml 硫 酸 葡 聚 糖 (G I B C O /B R L ) 100mg/ml poly (IC) (Sigma) 1 . 采用含添加物的D M E M - 1 0 , 准 备 20〜200Mg/m l 硫 酸 葡 聚 糖 或 1.0〜lOmg/mlpoly (IC) 的工作液。 2•按基本方案步骤3 , 将 0.1m l 每 一 稀 释 浓 度 的 丝 裂 原 (在 抗 Ig不存在的条件下)加 入 到 9 6 孔培 养 板[最佳终浓度是50)ug/m l 硫酸葡聚糖与10(^g/ml poly (1C )]。 3 . 继续基本方案步骤4〜9。

备 选 方 案 4 细胞数量增加的定量

附 加 材 料(其他材料见基本方案,带 n/ 项 目 见 附 录 1)

V 磷 酸 缓 冲 盐(P B S )

用 P B S 制 备 的 0.5mol/L E D T A (冰冷的)

冰 冷 的 9 5 % 乙醇

lmmol/L Hoechst 33342 (Sigma)

lmmol/L 派洛宁 Y (Sigma)

5m l 圆 底 离 心 管(Falcon)

双 激 光 流式细胞仪(如 FACScan、 Becton Dickinson; 单 元 4. 2)
1 . 在 2 4 孔培养板中,加入静息B 细 胞 (2 X 106 个细胞/孔)与感兴趣的刺激剂的液体使 总体积达2ml (见基本方案,步 骤 1〜3)。对照应包括单独培养基、静 息 (G 。)细胞 与对数生长期细胞。在饱和湿度的37°C , 5 % C O 2 培养箱中培养24〜48h 。 2 . 在每孔中,用巴氏吸管重悬细胞并转移1〜5m l 到试管中。加 入 2ml P B S 并 用 IEC 216转 头 于 4°C , 170g 离 心 5min,尽可能吸弃上清。 3 . 用 0.25m l 冰 冷 的 0.5mol/L E D T A 重 悬 细 胞 并 涡 旋 混 匀 2s。加 入 0.75m l 冰冷的 9 5 % 乙醇并再次涡旋混勻。将离心管置于一20°C 冰 箱 30min (如无需立即检测可冷藏 1 周)。 4 . 每个离心管加入2m l P B S 。按 步 骤 2 离心并完全吸弃上清。 5 . 用 Iml 冰冷的 0 •5mol/L E D T A 液重悬细胞,加入 IOjtxl lmmol/L Hoechst 33342, 涡旋混匀2s,并 在 37°C 孵 育 lh。 6 . 用 水 以 I : 1 0 稀 释 O.lmmol/L 派 洛宁Y 并 加 入 40/xl的这种稀释液到步骤5 中的每 个离心管。涡旋混匀2s 并将离心管置于冰上直到分析时。 7•对于流式细胞分析,设 定 F A C S c a n 激 光 波 长 为 350n m 与 530n m 。 Hoechst 33342 (D N A ) 与派洛宁Y (R N A ) 的发射光分别在400〜500n m 和 大于580n m 处检测。 8 . 计 数 10 OOO个细胞,将 Hoechst与派洛宁Y 处理的细胞与静息细胞比较增加的荧光 强度来检测不同峰值(单 元 4. 2)。

来源:丁香实验

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