丁香实验_LOGO
登录
提问
提问
我要登录
|免费注册
丁香通
点赞
收藏
wx-share
分享

B 细胞功能的检测

相关实验:B 细胞功能的检测

最新修订时间:

材料与仪器

步骤

基 本 方 案 1 抗原特异性的抗体产生

材 料

年轻的无病原体的成年小鼠 V IF1 2 完全培养基或者R P M I 培 养 基 (见配方) 无菌抗原: 1〜10/xg/ml TNP- L P S (Sigma-Aldrich) T N P - B A (同上) 1〜20ng/ml T N P - Ficoll (BioSearch Technologies; T N P - A E C M Ficoll) 荚膜肺炎球菌多糖: Pneumo Vax (Merck) 或 者 Pnu-Imune (Lederle) 疫苗或 者纯化的肺炎球菌多糖(A T C C 号 169-X ) 1〜2(Vg/ml T N P - O V A (见辅助方案5) 0 •01 % 〜1% V7V S R B C (Colorado Serum) V H B S S 或 生 理 盐 水 (可选) 带有防蒸发盖的9 6 孔 Costar平底微量滴定板 4 8 孔 平 底 板 (Corning) 带微量培养板套桶的冷冻低速离心机 1 . 根据需要制备脾脏或者淋巴结细胞,或 者 纯 化 的 初 始 (单 元 2. 2 ) 或 抗 原 刺 激 的 B 细 胞 (3〜4 周前用抗原或半抗原:载体免疫过的小鼠)、 T 细 胞 (Miirphy ^ W ., 1 9 90)和 巨 噬 细 胞 (单 元 6.1),并 将 其 悬 浮 在 IF1 2 完 全 培 养 基 或 者 R P M I 培养基 中。计 数 (如使用血细胞计数器,附 录 3A )。 从载体致敏的小鼠或特异性T 细胞受体转基因小鼠获得的T 细胞用于体外刺 激 。 D O 11.10T 细胞受体转基因小鼠可用于对T N P -O V A 的反应,因为它们的T 细 胞受体能特异性识别卵白蛋白多肽(M u r p h y 衫W ., 1990)。活化 的 B 细胞将产生更 高背景的应答。产生良好的反应需要巨噬细胞或树突细胞的存在。对 于 T 细胞依赖 的反应, T 细胞克隆可以取代来源于抗原冲击过的或T C R 转基因的小鼠的T 细胞。 该克隆的T h l 或 T h 2 类型可能影响抗体的亚型。 2a•对于带防蒸发盖的9 6 孔 Costar平底板:调 整细胞浓度至100/xl培 养 基 含 IO5〜IO6 个细胞。 2 b. 对 于 4 8 孔 Costar平 底 板 :调 整 细 胞 浓 度 至 5 0 0 M 1 培 养 基 含 0. 5 X IO6 〜 2 X IO6 细胞。 3 . 准备抗原稀释液的时候将细胞置于冰上,然后加入板中。当应用多克隆反应或者使
用 TI-I 抗原的时候使用较低的细胞密度,当 使 用 T N P -Ficoll、 S R B C ,其 他 T 细胞 依赖抗原的情况下使用较髙的细胞密度。 使用纯化的B 细胞时, T 细胞可以按照T 细胞/B 细 胞 为 0.2、 0.4、 0.6、 0.8、 1. 0 的比例滴定。如果需要, T 细胞可以用抗原或者抗C D 3 抗体预先活化。 巨噬细 胞按照巨噬细胞/B 细胞为0.1、 0.2、 0.5和 1.0的比例滴定。太 多 的 T 细胞或者巨 噬细胞能抑制B 细胞的活化。如果没加T 细胞或者巨噬细胞,可以向胸腺非依赖性 抗原活化的B 细胞加入细胞因子IL-4 和 IL-5联 合 ,或 者 IL-I 和 IL-6。在 加 入 IL-4 和 IL- 5 时,可以联合加入IL-2也可以不加入IL-2。 IL-1、 IL-2、 IL-4、 IL-5和 IL-6 可 以 购 于 R & D 公 司 。另 外 ,少 量 IL- 1 和 IL- 2 可 以 从 N I H Biological Response Modifiers Program 获得。 IL-10 可以由 Schering Plough 购得。 用于培养的活细胞的比例要介于9 0 % 〜9 5 % ,以获得较好的反应(附 录 3C )。 4 . 在 纯 化 B 细胞的时候,根据实验设计,在超净台中制备无防腐剂的抗原,并将其稀 释至加入每孔后终浓度符合以下要求, 9 6 孔 板 每 孔 加 入 50〜100M1 (终培养体积为 每 孔 200M1), 4 8 孔板每孔加入250〜500M1 (终培养体积为每孔I.Oml) : 1〜10Mg/ml T N P - LPS 1 : 100 T N P - B A 1〜20ng/ml TNP-Ficoll 0. 05〜5ng/ml荚膜肺炎球菌多糖 1〜20|Ltg/ml T N P - O V A 0.01 % 〜1% (W ) S R B C 0.1〜IOjUgAnl含 C P G 基 序 的 寡 核 苷 酸 (多克隆活化) 每孔不能加入多种抗原。 5a. 对 于 9 6 孔板 :加 入 100/xl细 胞 稀 释 液 (步 骤 3 ) 至内孔中。用培养基、 H B S S 或者 生理盐水充满外孔。 5b. 对 于 4 8 孔 板 :加 入 5 0 0 0 细 胞 稀 释 液 (步 骤 3 ) 至需要测定的孔中。 6 . 培 养 4〜5d 。当进行P F C 检 测 时 (见基本方案2),省略下面的2 个步骤,并在收获 细胞之前建立好所有的测定条件。如果用于E L I S A 测 定 (单 元 1.2),则进行下面所 有的步骤。 7 . 如果 做 E L I S A 测定,测 定 2d 前 用 200/xl完全培养基洗涤细胞去除可溶性抗原。在微 量培养板离心机里4°C , 170g 离 心 5〜IOmin以收集细胞。之后颠倒平板,抖动手腕 甩去上清。在灭菌纱布上轻拍。如果用来刺激反应的抗原不干扰E L I S A 检测,则可 跳过步骤8 和 9 , 从培养体系中收集上清。 8 . 向 9 6 孔板内每孔加入完全培养基200^x1或 者 4 8 孔板内每孔加入500M1。按 照 步 骤 7 离心弃上清。重复该步骤2 遍 。 9a. 对 于 9 6 孔板 :用 200M1培养基重悬细胞后培养24〜48h 。收 集 15(^1上清并保持冷 冻状态直到测定。 9b. 对 于 4 8 孔板 :用 SOOiUl培养基重悬细胞后培养24〜48h 。收 集 4 0 0 4 上清并保持冷 冻状态直到测定。 10.按 照 步 骤 7 和 8 洗涤细胞,去除上清之后,在吸水纸上轻轻拍去残余上清。加入

200ul 完全培养基重悬细胞(两种板)。在测定前将细胞置于冰上。

基 本 方 案 2 Jerne-Nordin PFC 测定法

材 料

2 X R P M I 1640 培养基中含碳酸氢盐(Invitrogen)

SeaPlaque 低 熔 点 琼 脂 糖(F M C BioProducts)
T N P - S R B C (见辅助方案3) 膝 鼠 补 体 (Colorado Serum) V D P B S 0.85% (m /V ) NaCl (如生理盐水) 43°C 水浴 12m m X 75m m 硼 硅 玻 璃 管 (Fisher) 琼脂糖包被的玻片(见辅助方案1) 纱布 V 玻片托盘,自 制 (图 2.5.1) 〇 〇 〇 227mm 〇 50mm O 12mm ^ 〇 123mm 〇 I27mm 〇 卡槽 — ^ O B 琼脂糖/血 玻片磨砂边丨 兔补体 J Illmml 图 2. 5, I A. 玻片托盘上面观。 B. 玻片托盘侧面观。 台布 玻片架和玻璃染色缸 间接光源的低倍(I O X ) 双目解剖显微镜 注意:在 P F C 测定开始前,玻片要预先用0 . 1 5 % 琼脂糖包被,当使用半抗原偶联 的 T I 或 T D 抗 原 时 S R B C 需和相应的抗原偶联(见辅助方案)。 1•在 43°C 水浴中预热 100ml 2 X R P M I 1640。准备 I.6 % (m /V ) 低熔点的 SeaPkqne 琼 脂 糖 溶 液 (见 辅助方案1,步 骤 2、 3)。加入等体积的预热2 X R P M I 使得溶液变 成 0 . 8 % 。摇晃烧瓶充分混合后保存于43°C 水浴中。 2 . 排 列 12m m X 75m m 硼硅玻璃管于水浴中,和组织培养板中的顺序相同,确保每孔有 一个管对应。 3 . 从玻片盒中取出琼脂糖包被的玻片,一次排列5〜1 0 个 ,编号。 4 . 水浴中的每管加入400/xl琼脂糖/R P M I 溶 液 (步 骤 1)。可使用连续移液器或者可以 吸 出 2. 0〜5. O m l 的溶液的Cornwall注射器加速该步骤

5.—次 分 配 50 ul T N P -S R B C 到 6〜8 管中。检 测 1 或 2 张玻片,将混合物倒在玻片上并沿管子边缘扩散开(玻片是橙红色)。

6 .从洗涤过的培养板中的第一孔转移 IOOul 细 胞 出 来(如果用多克隆刺激剂可用小点的体积,如 20〜50ul; 如果诱导剂很弱可以用大点的体积,如 120ul),吹打孔底多次使得所有的细胞都转移到含琼脂糖的第一管中。

7 .将水浴中的玻璃管拿出,紧握住玻璃管防止溅出内容物,用 有 2 片纱布的橡皮垫的混和器混旋。颠倒玻璃管将混合物倒入第一张玻片。迅速通过玻璃管管口扩散琼脂糖于玻璃表面上。

8 . 重复步骤 6 和 7 处 理 完 1 0 个管子;在玻片干之前不能移动,也不能使它们表面向上太长时间否则会干掉。在第一批 5〜1 0 个玻片做好之后,将它们上面朝下放在自制的玻片盒上。

9 . 剩余的玻璃管和玻片重复步骤 5〜8 直到所有的培养物都从管内转移到玻片上。

10.将 玻 片 盒(或玻片架和染色缸)重叠起来,将另外一个玻片盒放在上面,用湿布和大 塑 料 袋 盖 上(后者可选)。

11.在 无 C O 2 的 37°C 环境下培养 lh。

12.用 D P B S 稀 释 豚 鼠 补 体(通常每个玻片盒需要 48 ml 1 : 2 0 或 1 : 2 5 稀释的补体),温 和 混 匀(不要剧烈振荡),维 持 在 37°C 的环境下。

13.从玻片盒外去除湿布。用 IOml 或 20m l 移液管将稀释的补体从玻片的一端淹没玻片 ,移液管头要接近玻片的边缘,确保在玻片下没有气泡。

14.在无 C O 2 的 37°C 环境下培养 lh。

15.将玻片轻轻放在玻片架上,然后将玻片架浸泡在含有 0.85% (m /V ) 的氯化钠的染色缸中。

16.立即观察玻片或在 4°C 保存几个小时后观察。并 在 低 倍 双 目 解 剖 显 微 镜(放 大 10倍)下用间接光照亮琼脂糖层计数空斑数目。空斑在琼脂糖的 S R B C 层里显现成色圈样。如果在空斑处看到了颗粒,那么认为这是个假空斑

基本方案 3 Cunningham-Szenberg PFC 测定法

适当的吸收豚鼠补体对这项检测很重要。并 且 ,补体溶化后应该立即使用,不要再次冻存。所有的试剂应于室温时使用以避免在小室中形成气泡。玻片小室应该在灌满之后 的 20m i n 内用蜡封起来以避免干燥。

材 料

蜡(组织制备级)

含添加物的 R P M I 或 IF1 2 完全培养基

7.5% (V7 V ) S R B C 或 1 5 % T N P - S R B C (见辅助方案 3)

从培养细胞中洗涤的 B 细 胞(见基本方案 1)

完全培养基里的 5 0 % (V /V ) 豚 鼠 补 体(如 Life Technologies, ColoradoSerum)

120 cm2 玻璃培养皿

9 6 孔 U 形底微量滴定板
Cunningham-Szenberg 小 室 (见辅助方案 2) 玻 片 托 盘 (如 C O 2 培养箱里面的托盘) 10倍的解剖显微镜(可选) 注意:所有的试剂都应该预热至室温以免培养中在小室内形成气泡。 1 . 用加热板在120cm2 的玻璃培养皿里熔化组织制备级的蜡。将加热板调至较低的温度 以维持蜡的熔化状态。 2 . 加 入 5〇 W (每种) 含添加物的R P M I 或 IF12完全培养基、 7 . 5 % S R B C 或 1 5 % T N P - S R B C 、从培养细胞中洗涤过的B 细胞,和完全培养基中5 0 % 豚鼠补体到9 6 孔 U 形 微量滴定板的孔中。通 过 将 S R B C 与豚鼠补体冰上孵育30m i n 以去除血清中的溶血 抗 体 (每 IOml加入大约I m l 洗涤 压 积 S R B C 或 T N P -S R B C ),这 种 S R B C 吸收过的 豚鼠补体用于实验。 3 . 将孔内成分混合并缓慢转移至Cunningham-Szenberg小室。将枪头保持在小室开口 IMin透明带 l/4in透明带 蜡封 盛有细胞/SRBC/补体混合物的玻片小室注:(白点代表空斑) 图 2.5.2 A. 玻片小室示意图。三 个 矩 形 阴 影 区 代 表 放 置 两 边 的l /4in透 明 带 。 同时如图所示安放吸管并加入混有SRBC和补体的细胞。 B. 产 生 PFC后一个完 整的玻片小室的示意图。白点代表在加入玻片小室的细胞、 SRBC和补体的混合 物所形成的薄胶里的空斑

的 角 上(图 2.5. 2A )。

转 移 的 细 胞 数 目 应 该 调 整 为 不 多 于 75〜 IOOPFC/ 小 室 。

4.将它们浸没在热蜡中使小室的两边封闭(步 骤 1)。将玻片放置于玻片架上或 C O 2 培养箱的托盘上。并 在 37°C 条件下培养 lh。

5.用肉眼或者用 1 0 倍解剖显微镜计数空斑(通过模糊的边缘和没有反射性的特性与气泡相区别;图 2.5. 2B ),轻轻移动玻片防止摇晃,避免扰乱单层。
备 选 方 案 1 改 良Jerne»Nordin PFC测定法用于型特异性反应 Jeme-Nordin P F C 测 定 法 (见基本方案 2 ) 可 以 改 良以测定除I g M 以 外 的 其 他 Ig 类型。为达到这个目的,先按照Jem e-N ordin P F C 测定法步骤 1〜4 进行。然后,在加 有 T N P -S R B C 的玻璃管里加入50M 1稀释的羊抗IgM (如 1 : 1 0 0 ; 凭经验决定) (步骤 5 ) 以抑制I g M 的检测。同时,加 入 50/xl稀 释 的 (如 1 : 2 0 0 ; 凭经验决定)兔对需要 测 定 的 Ig同 型 (如 I g G K IgG2、 IgG3 或 IgA) 的抗血清。检 测 1 或 2 张玻片然后加工 玻 片 (步 骤 6〜10) 。 于 37°C培 养 90〜120m in。 加入豚鼠补体完成测定(步 骤 12〜16)。 备 选 方 案 2 改 良JernundefinedNordin PFC测定法用于测定多克隆抗体反应 除了测定特异同种型的反应(见备选方案1 ) 夕卜, Jeme-Nordin P F C 测 定 法 (见基 本 方 案 2 ) 也可以被改良测定多克隆抗体反应。这种方法利用葡萄球菌A 蛋白结合兔抗 体的能力以及相对容易得到的兔源性抗小鼠I g 同种型。分泌的抗体可以接合于连接在 蛋 白 质 A 的兔抗同种型抗体上,整个复合物能固定补体从而溶解R B C 。 为完成这个方法,用氯化铬包被蛋白质A 于 S R B C 上 (见 辅 助 方 案 4)。如前所述 准 备 玻 璃 管 (见基本方案2 , 步 骤 1〜4),但 只 是 在 43°C 水浴的条件下每管加入300/xl 琼 脂 糖 (步 骤 4)。然 后 准 备 玻 璃 管 (步 骤 5),但 不 是 将 50]ul T N P -S R B C 分配到管中 (步骤5),而是加入30〜4〇 4蛋白质A - SRBC (即作为靶细胞使用)。加 人 50/^1 (凭经 验决定)稀 释 的 兔 抗 I g M 、 I g G 或 I g A 同种型。检 测 玻 片 (步 骤 5),颜色应为淡红。 再 加 人 细 胞 (步 骤 6),但是只使用10〜20/xl来源于洗涤过的细胞板中的细胞,因为多 克隆反应通常比抗原特异性的反应强。完 成 剩 余 的 步 骤 (见基本方案2 , 步 骤 6〜16)

辅 助 方 案 1 制备琼脂糖包被的玻片

材 料

7 0 % 乙 醇

SeaPlaque 低 熔 点 琼 脂 糖(F M C Bioproducts)

一端磨砂的载玻片(如 Gold Seal Rite-O N 载玻片, Fisher)

玻 片 架 和 染 色 缸(Fisher)

烤箱

IOOml 玻璃瓶

43°C 水浴

载玻片盘
涂 料 刷 (可选) 玻片盒 1 . 将一端磨砂的载玻片放在玻片盒上。将它转移至含7 0 % 乙醇的染色缸中浸泡。移出 架子在烤箱内放置IOmin使玻片干燥。将玻片冷却至室温。 2 . 在 IOOml玻璃瓶中制备1.6% (m /V ) 低 熔 点 琼 脂 糖 溶 液 (每 20m l 水 里 加 入 0.32g 琼脂糖)并摇晃。 3 . 用微波炉加热玻璃瓶,使琼脂糖沸腾20s 以确保所有琼脂糖都溶解。将琼脂糖瓶放 在 43°C 水浴中。 4 . 将玻片放在玻片盒上,磨砂的一面向上。 5a. 用 涂 料 刷 制 备 玻 片 :用 21.3m l 温 水 稀 释 2. O m l 的 1 . 6 % 琼 脂 糖 (步 骤 2 ) 制备 0 . 15%琼脂糖。用涂料刷将0 . 1 5 % 的琼脂糖包被在玻片上,将玻片放于玻片盒中。 5b. 通过浸没制备玻片:将 玻 片 放 在 玻 片 盒 内 ,浸 泡 至 含 200ml 0 . 1 5 % 琼 脂 糖 [即 181. 25m l 温水中含18. 75ml 1 . 6 % 琼 脂 糖 (步 骤 2 ) ] 的染色缸中lmin。 6 . 在干烤箱内干燥玻片至少60min。将玻片冷却并保持在玻片盒里。包被的玻片可以 在室温中保存几个月

辅 助 方 案 2 制 备 Cunningham-Szenberg 小室

材料

7 0 % 乙醇

3inX I in X 0.93〜 1.05 mm 载玻片

玻 片 架 和 染 色 缸(Fisher)

干烤箱

0.25in 双 面 胶(如 3M )

滚 筒(如 25m l 移液管或者类似的圆形物体)

1.将 3in X l in X 0. 93〜 1.05m m 载玻片放于玻片架上。将 它 转 移 至 含 7 0 % 乙醇的染色缸内浸泡。移出玻片架将玻片在干烤箱内干燥 l 〇 m in。 然后使玻片冷却至室温。

2.将 15〜3 0 个玻片靠近排放,但是互相不接触。

3.将 0. 25in 双面胶贴于玻片两端和玻片的中间使得玻片被分成了两个 100/xl 部 分(图2. 5. 2A )

4.撕开双面胶的背面,将另一个玻片对齐粘上。

5.用滚筒轻轻地压玻片以使双面胶贴牢。使用的时候用刀片裂开玻片之间的胶带。

辅 助 方 案 3 三 硝 基 苯 半 抗 原(TNP) 偶 联 SRBC

材 料(带 V 项 目 见 附 录 1)

双 甘 氨 肽(改良的巴比妥缓冲液)

l X M B B

2 ,4,6-三 硝 基 苯 磺 酸(T N B S ) ,钠盐

O .28mol/L 二甲砷酸盐缓冲液, p H 6. 9
从同一绵羊采集的血液, < 4 周 龄 (通常从多只绵羊中筛选P F C 反应最佳和洗涤中 自发性溶血最少的S R B C ; 见基本方案3 ; 在 4°C 可 保 存 4 周 ) 15m l 刻度锥底离心管 IOml注射器和18G 针头 1•用20ml I X M B B 溶 解 12. 6m g 双甘氨肽。 2•使用之前用7m l 0.28mol/L p H 6 . 9 的二甲砷酸盐缓冲液溶解20m g 2 , 4 , 6-三硝基 苯 磺 酸 钠 (T N B S )。 3 . 用 IOml注射器和18G 针头将从同一绵羊来源的4. 5m l 血液转移至有刻度的15m l 锥 底离心管中,以维持储存S R B C 无菌。 4 . 往管里加入1父以33至14.51111刻度。 20〜25°〇, 80(^离心5111丨11。弃 上 清 ,轻轻吹 打重悬沉积物,重复洗涤一遍。上清如果是淡红色应该再洗涤一遍。如果第三次洗 涤后上清不清亮,则另外取新鲜的S R B C 用于研究。检 查 R B C 压积是 否 约 lml。 5 . 用 14. Oml 0. 28mol/L p H 6. 9 的二甲砷酸盐缓冲液洗涤R B C 沉淀物。 6 . 向洗涤过的S R B C 沉积物逐滴加入 T N B S 溶 液 (步 骤 2 ) 并吹打重悬。用锡箔纸覆 盖管口在室温下轻轻摇动lOmiri。 7 . 用 15m l 含刻度的锥底离心管同步骤4 加 入 8ml I X M B B 后离心。弃上清后用双甘氨 肽 15m l 洗 涤 (步 骤 1)。 8•弃上清后同步骤4 用 I X M B B 洗 涤 2 遍 。上清如果是淡黄色或淡红色应该再洗涤一 遍 (最 多 洗 3 或 4 次)。如果上清不清亮,则应另取存放时间较短的更新鲜的S R B C 用于研究。 9 . 弃上清后用锥底离心管刻度估计压积S R B C 的体积。加 入 I X M B B 制 备 1 3 % (V /V ) 或 15% S R B C 悬液分别用于 Jerne-Nordin (见基本方案 2 ) 或 Cunningham-Szenberg (见基本方案3 ) 测定。在 4°C 可以保存一周,每次用之前进行洗涤。

辅 助 方 案 4 蛋 白 质 A 偶 联 SRBC

材 料

材 料 绵 羊 红 细 胞 (S R B C ) 悬 液 (Colorado Serum) 生理盐水: 0. 15mol/L NaCl (Life Technologies) 生理盐水溶解的I.0m g /m l 蛋 白 质 A (Pharmacia或 Sigma-Aldrich) 六 水 合 氯 化 铬 (III) 15m l 锥底离心管 摇床 注意:磷 酸 盐 缓 冲 液 (P B S ) 不能在这些步骤里使用。 1 . 向 15m l 锥底离心管加入2.5ml S R B C 悬 液 。用生理盐水充满并混匀。台式离心机 4°C , 800g 离 心 lOmin。弃上清后至少用盐溶液再洗涤2 遍 (直至上清清亮)。 2 . 估计压积体积。如 果 S R B C 压 积 小 于 0.5m l ,返 回 步 骤 1 加 大 S R B C 的用量重新开 始 。如 果 S R B C 压积大于0.5m l ,那么返回步骤1 减 少 S R B C 的用量重新开始。加入 生理盐水溶解的〇.5m l 的 I.O m g /m l 蛋 白 质 A ,轻柔混勻。
3 . 将 13. 3mg氯化铬溶解在IOml生理盐水里制备新鲜的IOX氯化铬储存液。 1 •• 10稀 释 成 I X 溶液。向蛋白质A 和 SR B C 混 合 物 中 (步 骤 2 ) 逐 滴 加 入 5. Oml I X 氯化铬 (III) 并不停轻摇离心管。在摇床上轻微摇动并于室温培养lh。 4 . 将离心管充满生理盐水, 4°C , 80(^离 心 5min。 用 15m l生理盐水通过离心洗涤蛋白 质 A 偶 联 的 SR B C 两次后用生理盐水重悬至终浓度1 5 % 如果在偶联之前 或之后甚至3 次洗涤的上清都呈红色或淡红色,则应丢弃该SRBC, 重新使用新鲜的 (不超过几周) SRBC。 蛋 白 质 A -S R B C 可以保存在4°C 长 达 48h 。 辅 助 方 案 5 制 备 TNundefined ■卵白蛋白 此方法可用于将T N P 家族偶联至多种其他蛋白质,包 括 K L H 、 B S A 及人或牛免 疫球蛋白7 。 材 料 (带V 项 目 见 附 录 1) 卵 白 蛋 白 (Sigma-Aldrich) V 〇 .l m 〇l/L 碳酸氢钠溶液 T N B S I X 生理盐水 锡箔纸 注意:本单元的计算假定l .O m g /m l卵 白 蛋 白 的 O D 28。为 0.587, T N B S 的摩尔消 光系数为 1. 25 X IO 4N T 1 • cm — \ 1 . 用 L O m l 的 0. lmol/L 碳酸氢钠溶液溶解20m g 的 卵 白 蛋 白 (43 000g/mol)。 2 . 用 L O m l 水溶解 15m g T N B S (293g/mol) 制备 51.2mmol/L 溶液。 3 . 向 2.5m l卵 白 蛋 白 溶 液 (步 骤 1 ) 缓慢加入0.317ml T N B S 溶液并不断搅拌使TNBS 比卵白蛋白多13倍 。覆盖锡箔纸,轻轻摇荡4°C 过夜使反应发生。 4 . 用 2L 盐水透析反应物5 遍 。 5 . 测 定 O D 28q和 O D 34 q 。校 正 O D 28。得 出 T N P 族的吸光率: O D 28。校正= O D 280- O.337X O D 340 6 . 用每毫升的毫克数计算卵白蛋白的浓度: 卵 白 蛋 白 (m g /ml) = O D 28 q校正/0.587 7 . 用每升的摩尔数计算卵白蛋白的浓度: [卵 白 蛋 白 ]= 卵 白 蛋 白 (m g /ml) /43 000 8 . 用 mol/L 计 算 T N P 的浓度: [TN P] = O D 340A .25 X IO 4 9 . 计 算 T N P 和卵白蛋白的比率: T N P /卵 白 蛋 白 =摩 尔 TN P /摩尔卵白蛋白

辅 助 方 案 6 用 Percoll 梯度离 心纯 化 静息 B 细胞

材料

IX 和 IOX Hanks 平 衡 盐 溶 液(H B S S ) ,不 含 镁(Life Technologies), 4°C
Percoll (Pharmacia LKB 或 Sigma-Aldrich) lm o l/L HEPES lm o l/L HCl 15m l和 50m l聚丙烯离心管 Sorvall R T 6 台式离心机和H-IOOOB转子或者等值的转子 1 . 制 备 脾 脏 细 胞 (单 元 2.1)。用 抗 Thy-1、抗 C D 4 、抗 C D 8 抗体以及兔补体去除T 细 胞 。每个脾脏用L O m l 不含钙镁的I X 冷 H B S S 重悬细胞。 2 . 如下制备 9 0 % P erc〇ll: 90ml Percoll 原液 9ml I O X 无钙镁的 HBSS Im l lm o l/L HEPES 0. 45ml lm o l/L HCl 3 . 用 冷 H B S S 制 备 2. 7m l表 2. 5. 2 中所列的各种浓度的P ercoll溶液。 表 2. 5. 2 Percol丨梯度溶液的配方 Percoir浓度/% 90% (V/V) Percoll/ml HBSSa/ml 密度/(g/ml) 70 2. I 0. 6 I. 086 65 I. 98 0. 72 I. 0815 60 1.8 0. 9 I. 074 50 I. 5 1.2 1.062 a. HBSS应该不含钙镁。 4 . 在 带 盖 的 15m l 锥底离心管里按如下顺序轻轻滴入不同浓度的Percoll溶 液 各 2. 5ml 以制备浓度梯度(从底部开始): 7 0 % 、 6 6 % 、 6 0 % 和 5 0 % Perc〇ll。 5 . 将 1〜2m l最 多 含 I X lO 8〜2 X 108 个的细胞铺于 50% P e rco ll层上。沿着管壁缓慢加 入细胞悬液以免破坏梯度。在低温离心机内预冷20m in 至 4°C。 6. 4°C , 1900g (3000r/min) 用带 H -1000B 转子的 Sorvall 台式离心机离心 20min。 7 . 去 除 5 0 % PerC〇ll层上面的 H B S S 和细胞,然后去除其他层,收集每个不同浓度界面 间的细胞至50m l 离心管中。 8 . 用 冷 H B S S 充满离心管并混匀以稀释Percoll。 4°C , 300g 离 心 15min。再 用 冷 H B S S 洗涤细胞2 遍 。 运 用 此 方 法 得 到 的 位 于 6 5 % 和 7 0 % P e rco ll间 的 细 胞 是 静 息 细 胞 ,可 用 流 式 细 胞 仪 进 行 验 证 。 用 F A C S 进 行 分 析 ,静 息 细 胞 的 前 向 散 射 角 较 小 。位 于 5 0 % 和 6 0 % P ercoll上 面 的 是 活 化 的 细 胞 。位 于 6 0 % 和 6 5 % 之 间 的 大 多 数 也 是 静 息 细 胞 ,也可能 污 染 一 些 活 化 的 细 胞 ,如 果 需 要 使 用 大 量 的 静 息 细 胞 也 可 以 使 用 这 些 细 胞 。 通 常 静 息 B 细 胞 的 回 收 率 为 1 2 % 〜 2 0 % 。如 果 低 于 1 2 % ,有 时 可 以 从 整 个 脾 脏 细 胞 中 先 分 离 静 息 细 胞 ,然 后 用 抗 T 细 胞 抗 体 和 补 体 处 理 从 而 去 除 T 细 胞 。如果需 要 ,污 染 的 R B C 可 以 用 A C K 裂 解 缓 冲 液 (单 元 2 . 1 ) 或 者 G e y 溶 液 (单 元 2. 6 ) 去 除 。

来源:丁香实验

提问
扫一扫
丁香实验小程序二维码
实验小助手
丁香实验公众号二维码
关注公众号
反馈
TOP
打开小程序