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透 射 电 镜 样 品 制 备 技 术

相关实验:干细胞的鉴定实验

最新修订时间:

材料与仪器

步骤

透 射 电 镜 样 品 制 备 技 术

为了满足透射电镜观察的要求,超薄切片必须做到以下几点:①切片能够耐受电子 束 的照射,在热和高真空条件下有一定的稳定性。②细胞的超微结构保存良好,尽量减少人工假象。③ 切 片 厚 度 一 般 在 60〜80nm 为 宜 。切片太薄可得到较高的分辨率,但 反 差 弱 ;切片太厚,又会出现结构重叠,分 辨 率 低 ,甚至会出现电子束不能穿透切片以致无法观察的现象。④要求切片无皱褶、无 刀 痕 、无颤痕和无染色剂污染,并具有 良 好 的 反 差 。 g 样 品 制 細 基 本 辦 :祕 —細 修块〜半薄切片—定 位 —超薄切片- 重金属染色-VTEM观 察 。 2 2 2 . 1 取 材 从 动 物 组 织 上 剪 下 2〜 3 _ 3大 小 的 样 品 ,迅速投入到戊二醛固定液(4SC)中 ,固 定5min 之 后 ’、再 用 新 双 面 刀 片 将 组 织 切 成 Imm3小 块 ,然后 放 入 同 样 的 固 定 液 中 固 定 2h。 、注意:取材时要求做到:①动作迅速:为了保存酶的活性和防止组织自溶, 动物组 织 应 在 离 体 后 I m i n 内,迅速投入到固定液(4 ¾ ) 中固定。② 部 位 准 确 :样品大小为 l ~1.5mm3, 取样部位一定要准确。③避免人工损伤:取材时动作要轻,要避免机械损伤、 牵拉和挤压组织样品。 2.2.2.2 固定 样品的固定使细胞死亡后的变化迅速终止,即尽可能地保存细胞生活状态下的结构 和 成 分 。固定方法可分为物理固定和化学固定两大类,其中最常用的固定方法是化学固 定 法 。 1 ) 常用的固定剂 ⑴ 戊 二 酸 (glutaraldehyde, C5H8O2) : 市 售 戊 二 醛 为 25 % 或 5 0 % 水 溶 液 ,淡黄 色 。 能与蛋白质间 形 成 交 联 ,对 糖 原 、糖蛋白有很好的固定作用,但对脂类固定效果差。能 保 存 酶 的 活 性 ,适合进行细胞化学的工作。 (2)四氧化锇(〇 811111111^13'€^(16,〇 8〇 4):又称锇酸,是 一 种 淡 黄 色 结 晶 体 ,易 挥 发 , 有 毒 性 ,是 强 氧 化 剂 。能 与蛋白质形成交联,起稳定蛋白质的作用。能与不饱和脂肪酸 分 子 发 生 反 应 ,形 成 交 联 复 合 物 ,对脂类起到良好的保护作用。对酶活性的保护能力差, 不宜进行细胞化学的工作。锇 酸 分 子 密 度 大 ,能使经它固定的样品的电子反差提高。通 常与戊二醛联合使用称为双固定。 a. 常 用 1.5%〜3 % 戊 二 醛 固 定 液 的 配 制 : 戊二醛固定液最终浓度/% 10 I-5 2.0 2.5 3.1 4.0 2 5 % 戊二醛/ml 1 1 I 1 I 1 0.075moiyLPBS/ml 24 15-66 11.5 9 7 5.25 b.1 % OsO4 固定液的配制方法: A 液 : 2 % OsO4储藏液 OS〇 4 ig 双蒸水 50ml B 液 : 1 % OsO4 固定液 A 液 1 份 0.24 mol/L PBS 1 份
2 ) 固定方法 用 2 % 〜 3%戊二醒前固定2h ,O.〇75mol/L PBS+0.19mol/L 蔗糖缓冲液清洗2 次后过夜, 1 % O s0 4后 固 定 2h ,用 0.075mol/L P B S 清 洗 lOmin,以上步骤均在4T :下进行。 3 ) 缓冲液的配制 缓冲液的目的是把固定液的p H 维持在生理值上,以阻止由于渗透压效应而引起的 组织收缩或膨胀。常用的缓冲液有磷酸盐缓冲液(PBS)和二甲砷酸钠缓冲液。由于后者具 有较强的毒性,除特殊需要外大多数都使用P B S 。 (I) 0.075mol/L PBS(pH 7.4) NaH2PO4 • 2H20 0.198g Na2HPO4 • 12H20 1.934g 双蒸水 IOOml (2) 0.075mol/L PBS + 0.19mol/L 蔗糖缓冲液(pH 7.4) NaH2PO4 • 2H20 0.198g Na2HPO4 . 12H20 1.934g 蔗糖 6.504g 双蒸水 IOOml (3) 0.24mol/LPBS(pH7.4): NaH2PO4 • 2H20 0.712g Na2HPO4 • 12H20 6.962g 双蒸水 IOOml 注意:①样品经戊二醛固定后要彻底清洗,残留的醛可与锇酸起反应而产生电子致 密的还原锇,它留在样品内会影响观察。②样品经锇酸固定后也要彻底清洗,以防残余 的锇酸固定液和脱水剂形成新的沉淀。③四氧化锇是强氧化剂,有 毒 性 操 ^ 应在通^ 橱中进行。 ’ 2 . 2 . 2 3 脱水 使用脱水剂将组织内的水替代出去,以确保包埋介质均勻地渗透到相扣.部 用 的 脱 水 ■ 乙 醇 、酬 等 械 _ J。 」1 、哪 。最吊 脱 水 步 骤 :样 品 经 5 0 % 乙 醇 —7 0 % 乙醇—9 0 % 乙醇—9 0 % 乙 醇 : 9 0 % 丙 酮 (1 : 1)—9 0 % 丙酮—无 水 丙 酮 无 水 丙 酮 脱 水 ,脱水时间5〜 1〇 次 ,无 水 丙 酮 15而 除最后一次无水丙酮脱水在室温下进行,其他步骤均在4丈下进行。 , 注意:高浓度脱水剂会造成脂类被抽提,而低浓度脱水剂又会^ 成 因此应根据组织的致密程度和块的大小,适当增加或减少脱水时间。 皮 心 紐 臟 。 2 . 2 . 2 . 4 浸 透 与 包 埋 (1) 浸 透 :通过脱水剂稀释包埋剂,最终让 包 埋 剂 取 代 脱 水 剂 储宜^ 合换潘到扣 100% W | :^ 1J(1 : 1)M 30J , 密组织(皮肤、脑组织块)浸透时间可延长到18h 左右。 ⑵包埋••将样品置入适当的觀中,灌入包埋剂,经 加 温 逐 渐 聚 合 成 麵 聚 合 物

它将成为细胞结构的支架,并能承受切片时的各种力的作用。

包埋剂:环氧树脂包埋剂常温下为单体,属于甘油多聚酯类,分子中含环氧基和羟基两种反应基团,环氧基与胺类 (加速剂) 反应,形成首尾相接的长链状聚合物,而硬化剂 (固化剂) 的酸酐则与羟基结合形成分子间的横桥连接◦ 环氧树脂单体、胺类和酸酐等按一定比例混合,在一定温度条件下,可形成具有三维空间结构的稳定交联状聚合物。常用包埋剂的配制:环氧树脂 Epon812 是一种淡黄色、低黏度,使用最广泛的环氧树脂,它易渗入组织,利于细胞结构的保存。它与硬化剂 D D S A (十二烷基琥珀酸酐)、 M N A (甲基内次甲基邻苯二甲酸酐) 和加 速 剂 DMP-30[2, 4, 6-三 (二甲氨基甲基) 苯酔] 按一定的比例配制而成,见 表 2.4。
表 2.4 Epon 8 1 2 包埋剂配方表

(3) 包埋和聚合方法:将胶囊注满包埋液,用牙签移动样品到胶囊的中心,使组织自然沉落到胶囊的底部。如做定向包埋 (如皮肤、消化道、呼吸道等组织),取材时应将组织切成长方形,包埋时将所要切片的一端对准包埋模具的尖部进行包埋。包埋后样品放入聚合器内,聚合温度及时间为: 35℃ , 12 h ; 4 5℃ , 12 h ; 60℃, 24 h 。

半 薄 切 片

为了在电镜下最后确定感兴趣的组织的位置,』获得在光镜下检查的半薄组织切片是很有必要的。

修块

将包埋块修成与顶面呈 45。斜面的锥体形。顶端是切片面,修成梯形、正方形或长方形。

切半薄切片

用 超 薄 切 片 机 切 下 的 切 片 ,滴一滴蒸馏水在涂有血清的载物片上,将切片浮在蒸馏水滴上,在 70——80 ℃电热板上烤干后,再进行苏木素-伊红 (HE) 染色。3) H E 染色方法 (1) 切片放在染色盘中,滴 2.5%过碘酸溶液在切片上进行脱锇, 50¾, 15~20min; ( 2 ) 自来水洗5min,蒸馏水漂洗Imin,烤干; ⑶滴苏 木 素 染 液 于 切 片 上 , 60~70t :染 色 30min; ⑷ 自 来 水 洗 5min。如苏木素着色太深,可 用 0.25%酸性乙醇分化, 1 % 氨水蓝化; (5) 滴 1 % 伊红于切片上, 60~70丈染色10〜 15min; (6) 清洗同第⑵步; (7) 中性树胶封片。 4 ) 染液配制 (1) 2.5%过碘酸 过碘酸 2.5g 双蒸水 IOOml 冰箱保存 ⑵ Lie苏木素染液(pH 12.0) 硫酸铝钾 6.0g 苏木素 〇.5g 黄色氧化汞 〇.25g(缓慢加入) 取 7O m I 双蒸水煮沸后依次加人以上试剂搅拌溶解,待其冷却后再加甘油30ml、冰 醋 酸 4ml。配好后避光保存,过滤后使用。 (3) 1% 伊红(pH 5.5) 伊红 I-Og 9 5 % 乙醇 40ml 蒸馏水 60ml 待伊红完全溶解后,加几滴冰醋酸调p H 至 5.5。

超 薄 切 片

载网及支持膜

(1) 载 网 :超薄切片需放置到铜、镍 、金等材料制成的载网上,经染色后才能在电镜下观 察 。 载 网 的 直 径 为 3m m ,孔 数 有 50、 100、 2 0 0 和 4 0 0 目。最 常 用 的 是 200目载网。

(2) 支持膜:在载网上铺覆一层薄膜是为了增加切片对电子轰击的耐受强度。

支持膜的制备方法:支 持 膜 是 用 0.4% 火棉胶-醋酸戊脂溶液或 0.1%〜 0.2% 聚乙烯醇缩甲醛膜 (formvar 膜) 氯仿溶液制备而成。先将干净载玻片浸人上述液体中,提出载玻片并使之直立于滤纸上,待干后即在载玻片上形成一层薄膜。用小刀或镊子尖划断膜的四边 ,将载玻片插入双蒸水中,使薄膜与载玻片剥离而漂浮于水面上。再将洗干净的铜网凸面贴膜,排列于膜上。最后用干净载玻片捞起支持膜及铜网,干燥备用。

超薄切片

(1) 超薄切片机:现市场上有国产及进口的不同牌号的切片机,就其推进原理可分为热膨胀式和机械式两种类型。不同型号的超薄切片机操作方法不同,使用者应按仪器操作手册进行操作。

(2) 切 片 刀 :切片刀分有玻璃刀和钻石刀两种。大多数是使用一次性的玻璃刀。钻石刀价格昂贵,适合用于硬度高的样品。

(3) 超薄切片厚度: 60——70n m 。

(4) 捞 片 :用眉毛针把切片集中,然后用铂金丝圈将它捞出,放置于载网中央。

超 薄 切 片 的 染 色

指染色剂 (一般为重金属盐) 与细胞的某些成分结合或吸附,从而增加其散射电子的能力。不同部位对重金属盐离子的吸附能力不同,吸附重金属能力强的区域,散射电子的能力就强,表现为暗区,反之为亮区。

醋酸双氧铀-柠椽酸铅染色法

(1) 醋酸铀:又称醋酸双氧铀。能与细胞内大多数成分结合,主要是提高核酸、核蛋白和结缔组织纤维成分的反差,也能对糖原、分泌颗粒和溶酶体染色,但对膜结构染色效果差。

醋酸铀染液:使用棕色试剂瓶配制染液,醋酸双氧铀 2 g 加 5 0 % 乙 醇 IOOml,充分搅拌 lOmin,静 置 1〜 2 天后取其上清液或过滤后取其过滤液。醋酸铀具有一定的放射性及化学毒性,遇光易分解,应密封避光冷保存。

(2) 柠檬酸铅:铅的电子密度很高,对细胞的微细结构有广泛的亲和力,能提高细胞膜系统、脂类和糖原颗粒的反差。柠檬酸铅具有一定的毒性。

柠檬酸铅染色液:
硝酸铅 Pb(N O 3)2 l.33 g
柠檬酸钠 Na(C6H5O2).H2O 1.76 g
双蒸水 30 ml

将上述成分放入 50m l 容量瓶中,用力振荡 30 min,至溶液呈乳白色混浊状后,加入lmol/L N a O H 8m l ,使溶液变为清亮透明,再加 双 蒸 水 至 50m l ,染 液 p i m . O , 置 4 ℃ 冰箱保存。

2 ) 娃胶板染色法

硅胶板染色器具:小玻璃试管 2 支 ,同时每根试管各配一个橡皮塞子;硅 橡 胶 板 1 块 :用双面刀片在板上划两排共 36 条划缝 (图 2.1)。图 2 . 1 硅 胶 板 染 色 器 具

染色方法:
(1) 左手持桂橡胶板,用中指从板背面轻轻顶起,使板上的划缝张开,右手用镊子将铜网插入划缝内,直到插完最后一张切片。

(2) 将硅橡胶板插入试管内,加入铀染色液 ,盖好橡皮塞子,染 色 15——20 min。

(3) 用镊子将硅橡胶板从试管内取出,用蒸馏水冲洗 20 min,再用滤纸将水吸干。

4) 用同样的方法将硅橡胶板插入到另一根试管内,加 入 铅 染 液 ,盖好橡皮塞子,染 色 5——7m in , 取 出 板 用 蒸 馏 水 冲 洗 20m in , 用滤纸将水吸干, 自然干燥后即可电镜观察。

注意:①铅染液最好使用 99.99% 的高纯度的硝酸铅配制,因为其染色效果好并且不易污染切片。②由于醋酸铀和柠檬酸铅染液具有放射性和毒性,因此操作时要注意防护。

特 殊 样 品 的 制 备

1 ) 血细胞、骨髓细胞

抽静脉血 (抽骨髓)3——4m l ,放入含有肝素抗凝剂的离心管内摇勻,以 800——1000r/min的 速 度 离 心 8〜 lOmin,血液可分为血浆 (上层)、白细胞 (白色中层) 和红细胞 (红色下层) 三层 。用吸管沿管壁轻轻地将血浆吸掉,露出白细胞层,沿壁缓慢加人 2.5% 的戊二酵,4℃固 定 lh。取出透明层,切 成 l m m x l m m x 2m m 长方块,再用戊二醛固定 1h。其他步骤按常规样品制备。

2 ) 培养细胞样品

由于培养细胞小、数量少以及培养方式的多样化,使得完全按照同一个方法制备样品已不能满足培养细胞电镜观察的要求。应根据观察目的选择合适的细胞培养方式,再采用不同的制样方法。

(1) 根据观察目的的不同,归纳了 4 种不同的细胞培养方式:①观察细胞一般形态的超微结构,细胞应在培养瓶 (玻璃或塑料) 或培养皿 (玻璃或塑料) 内培养,细胞呈贴壁式或悬浮式生长;②观察细胞和细胞间的连接结构,细胞应在载玻片、可拆卸的 9 6 孔培养板中或滤膜 (millipore 0.45p m pore) 上培养;③观察原位特定细胞 (如观察某个培养细胞的
分裂像),细胞应在 35m m 塑料培养皿中或 6 孔培养板内培养;④观察组织工程中培养在胶原内的新生细胞。

(2) 根据不同的细胞培养方式,选择不同的样品制备方法。

a. 培养瓶内细胞的样品制备方法:游离的培养细胞以 800〜 100 〇 r/m i n 的转速离心IOmin,细胞沉在离心管底部,1.5 h 。其他步骤按常规制样方法进行。贴 壁 细 胞 :用硅胶刮将细胞刮下来,切忌使用刀片刮,离心后按上述方法制备。

b . 原位包埋法:①细胞长在载玻片上:将细胞连同载玻片一起固定、脱水和浸透 。细胞面朝上与液体直接接触。在光镜下先选好要观察的细胞区域然后再包 埋 。②细胞在可拆卸的用吸管吸去培养液,加人戊二醛固定液 4 ^ 固定 96 孔板内培养:样品制备在板内进行,固定、脱水、浸透和包埋均按上述方法
操作,聚合后用锤子砸碎塑料外壳,取出样品块,修块后可直接切片。③原位
特定细胞培养在 35 mm 塑料培养皿或 6 孔板中:同②制备方法一样,在培养皿内进行固定、脱水、浸透、包埋和聚合,在光镜下定位观察细胞,经修块后再切超薄切片。④细胞长在滤膜或胶原上:将滤膜或胶原视为一个组织块,按上述制备方法进行固定、脱水和浸透,最后用定向平板包埋板包埋 (图 2.2)图 2 . 2 大 鼠 脊 髓 少 突 胶 质 细 胞 (HOOx)

来源:丁香实验

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