原理
材料与仪器
步骤
材料
无菌
单层细胞培养:A549、Vero 或 HeLa-S3, 75 cm2 培养瓶,晚对数期 1 瓶
0.25% 粗制胰蛋白酶混合有 10 mmol/L EDTA 5 ml
生长液,100 ml, 伴有 26 mmol/L NaHCO3 300 ml
D-PBSA(预洗并用于细胞计数)50 ml
12 孔培养板 10 块
非无菌:
用于装培养板的塑料盒
CO2 温箱或 5% CO2 以充盈塑料盒
操作步骤
1. 对于一般的传代,先用胰蛋白酶消化细胞(见方案 13.2)。
2. 稀释细胞悬液分别至 1X105 个/ml,3X104 个/ml 和 1X104 个/m l,每种浓度均含 25 ml 培养基。
3. 用 3 块 12 孔板,每孔一种细胞浓度,每孔 2 ml 细胞悬液。最上面四孔加 1X104 个/ml,第二排加 3X104 个/ml,第三排加 1X105 个/ml (图 21. 7)。从孔的中央处慢慢地将细胞悬液加入,这样不会使液体在孔内产生旋涡。同样地不要摇动培养板以期混合细胞,因为培养基的圆周运动会使细胞集中在孔的中央。
4. 将培养板贾于湿润的 CO2 湿箱内,或者用 5%C02 充盈塑料盒,然后封闭。
5. 24 h 后,将培养板从温箱中取出第一块板,计数每种浓度的 3 个孔中的细胞数:
(a) 将含有要计数细胞的 3 个孔中的培养液完全吸掉;
(b ) 加入 0.5 ml 胰蛋内酶/EDTA 至上述 3 个孔中;
(c) 温育培养板 15 min;
(d ) 加人 0.5 ml 含血清的培养基,在胰蛋白酶/EDTA/培养基中将细胞分离开来,取 0.4 ml 细胞悬液至 19.6 ml 的 D-PBSA 中;
(e) 用电子细胞计数器计数细胞。
6. 染剩余不同密度孔中的细胞(见 16. 4.2 节)。
提示 也可以用血球计数板进行细胞计数,但这对于细胞浓度较低者比较困难。如果要用血球计教板,可将胰蛋白酶的容积减少至 0.1 ml,小心地用微吸管将细胞分散,使之不产生气泡,然后将细胞移至血球计数板。
7. 如第 5 、6 步,在 48 和 72 h 时重复取样。
8. 于 72 h 时或者更早一些时间换培养液,这可依据 pH 的下降来决定(见方案 13.1,彩图 22b )。
9. 对于迅速生长的细胞(即 PDT 为 12~24 h 的细胞)可以每天连续取样,但是对于生长缓慢的细胞(也就是 PDT > 24 h ),则每两天取样,直至细胞达到平台期。
10. 依据 pH 的改变,每 1、2 或 3 天换培养基。
来源:丁香实验