原理
七十年代初，由于发现M期细胞内有某种促进染色体凝集因子，它无种属特异性，所以在细胞融合和染色体技术的基础上，建立了制备染色体提前凝集标本的方法。即让M期细胞与间期（I期）细胞融合，从而诱导I期细胞染色质提前浓缩成染色体。形成的这种染色体称提前凝集的染色体(PrematurelyCondensedChromosome，PCC)。这项技术已应用于细胞周期分析、正常细胞和肿瘤细胞染色体的微细结构的研究、多种因素作用细胞使染色体损伤及修复效应的研究，预测某种血液病的病程、愈后及复发的临床实践等方面。
材料与仪器
HeLa细胞
PEG Hanks液 RPMI-1640培养基 小牛血清 秋水仙素 KCl 柠檬酸钠溶液 次甲基兰染液 PBS Carnoy固定液 Giemsa染液
显微镜 离心机 水浴箱 热吹风机 离心管 针头注射器 试管架 染色槽 载玻片 酒精灯
PEG Hanks液 RPMI-1640培养基 小牛血清 秋水仙素 KCl 柠檬酸钠溶液 次甲基兰染液 PBS Carnoy固定液 Giemsa染液
显微镜 离心机 水浴箱 热吹风机 离心管 针头注射器 试管架 染色槽 载玻片 酒精灯
步骤
1. 收集培养的M期HeLa细胞取一瓶处于对数生长期的HeLa细胞。
2. 向培养基中加入10 μg/ml 的秋水仙素使终浓度为0.04 μg/ml，在37℃二氧化碳培养箱内继续培养12小时，使大量生长的细胞被阻断于M期。
3. 每组取一瓶经上述处理的细胞，以平行于细胞生长面方向反复振摇，使培养液不断冲涮细胞层（或用吸管吹打），M期细胞因变成球形容易脱离瓶壁而悬浮。
4. 将含有M期细胞的培养基移入离心管中，1 000 rpm 离心5分钟，弃去上清加入5 ml Hanks液，用吸管吹打成细胞悬液。
2. 向培养基中加入10 μg/ml 的秋水仙素使终浓度为0.04 μg/ml，在37℃二氧化碳培养箱内继续培养12小时，使大量生长的细胞被阻断于M期。
3. 每组取一瓶经上述处理的细胞，以平行于细胞生长面方向反复振摇，使培养液不断冲涮细胞层（或用吸管吹打），M期细胞因变成球形容易脱离瓶壁而悬浮。
4. 将含有M期细胞的培养基移入离心管中，1 000 rpm 离心5分钟，弃去上清加入5 ml Hanks液，用吸管吹打成细胞悬液。
5. 收集培养的HeLa细胞取一瓶生长良好的HeLa细胞，弃去培养基。
6. 加入少量0.25%的胰蛋白酶消化2~3分钟，弃去胰酶消化液。
7. 然后加入5 ml Hanks液，用吸管吹打成单个悬浮细胞备用。
8. 50%PEG的制备
（1）称取0.5 g PEG（MW4 000），倒入离心管中。
（2）在酒精灯上加热使之融化（约为0.5 ml）。
（3）再加入预热的Hanks液0.5 ml 混匀，放在37℃水浴中待用。
9. 细胞融合
（1）将上述1、2两管细胞倒入一个离心管中充分混匀。1 000 rpm 离心5分钟，去掉上清，再小心地吸尽残液。
（2）用指弹法弹散细胞，在37℃水浴条件下吸取0.5 ml 50%PEG，逐滴加入离心管内，并不断地轻轻摇动，整个过程约90秒钟。然后迅速加入5 ml Hanks液以终止PEG的作用。在37℃水浴甲静置5分钟。
（3）1 000 rpm 离心5分钟。弃去上清，加入2 ml 有血清的RPMI-1640培养基，同时用针头的注射器垂直加入10 μg/ml 的秋水仙素1滴，轻轻吹打成悬液，37℃水浴中温育30~60分钟。
10. 制备PCC标本
（1）细胞温育后，1 000 rpm 离心5分钟弃去上清，加入10 ml 0.075 mol/L KCl低渗液轻轻制成悬液。
（2）在37℃处理25分钟左右；终止时加入1 ml Carnoy固定液进行固定，1 000 rpm 离心8分钟，去掉上清。
（3）指弹离心管底部使细胞分散，加入10 ml Carnoy固定液固定30分钟。
（4）1 000 rpm 离心5分钟，弃去上清留0.2 ml，用吸管轻轻吹打成悬液。
（5）取预冷的载玻片滴一张片，烤干后，Giemsa染色15分钟左右，水冲洗，干燥后镜检。
11. 结果观察：在低倍镜下，可以容易地找到M期与I期细胞融合而诱导产生的PCC图像，由于处于I期不同时相的细胞均能与M期细胞融合而被诱导产生PCC，因此有三种不同形态特点的提前凝集染色体：G1期PCC、S期PCC和G2期PCC。
（1）形态特点分别是：
①G1期PCC为单线染色体，细长，着色浅呈蓬松的线团状；
②S期PCC由于染色体解旋，DNA以多点进行复制，复制后的部分着色较深，以双线染色体片段形式存在，故呈粉碎颖粒状结构；
③G2期PCC因DNA复制完毕，所以可见凝集的双线染色体，但较M期染色体细长。
来源：丁香实验
