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简介
来源:丁香实验
操作方法
(1) 大鼠、小鼠的采血方法:①剪尾采血:适用于少量采血,如制作血涂片、白细胞计数等。动物麻醉后,将尾尖剪去约 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾动脉或尾静脉,让血液自行流出。小鼠可每次采血约 0. 1 ml, 大鼠约 0.4 ml。②眼眶后静脉丛采血:一手拇指及食指抓住鼠两耳之间的皮肤固定,轻轻压迫颈部两侧,使眼球充分外突。取血管在眼角与眼球之间向眼底方向刺人,旋转切开静脉丛,血液即流入
实验动物脑脊液采集(1) 狗、兔脑脊液的采集:通常采取脊髓穿刺法,穿刺部位在两髂连线中点稍下方第七腰椎间隙。动物麻醉后侧卧位固定,头尾部尽量弯向腰部,去被毛。消毒后一手固定穿刺部位的皮肤,腰穿针垂直刺入,当有落空感及动物的后肢跳动时,针已达椎管内,抽去针芯,即见脑脊液流出。如无脑脊液流出,轻轻调节进针方向及角度。避免脑脊液流出太快,以免形成脑疝。(2) 大鼠脑脊液的采集:可采用枕大孔直接穿刺法。大鼠麻醉后,头部固定
实验动物尿液采集尿液的采集 常用的采集方法较多,一般在实验前需给动物灌服一定量的水。(1) 代谢笼法:此法较常用,适用于大、小鼠。将动物放在特制的笼内。一般需收集 5 小时以上的尿液,最后取平均值。(2) 导尿法:常用于雄性兔、狗。动物轻度麻醉后,固定于手术台上。导尿管导尿。(3) 穿刺膀胱法:动物麻醉后固定,在耻骨联合上腹中线去被毛,消毒穿刺。(4) 反射排尿法:小鼠被人抓住尾巴提起时出现排泄反射。故需采取少量
实验动物腹水的采集抽取大鼠、小鼠的腹水时,抓取固定动物,使动物腹部朝上,消毒皮肤,针头在腹股沟和腹中线之间刺人腹腔,腹压高时腹水自然流出,腹水少时可用注射器抽取。
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