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流感病毒实验室检查技术

一、标本的采集与处理(一)标本的采集1、病毒分离标本的采集病毒分离成功与否很大程度上取决于采集标本的质量,及其保存、运输等环节。多数标本取自患者上呼吸道鼻咽腔,其次为气管和支气管分泌物,有时也采用肺活检材料等。标本采集后应立即放入适当的采样液中低温保存,常用的采样液为:普通肉汤,pH7.4-7.6的Hank‘s、Eagle’s或水解乳蛋白液。为防止细菌和真菌生长,在采样液中需加入抗菌素,以往抗菌素多用青、链霉素,近来发现不少种类细菌对它们具有耐药性,故近来多用庆大霉素(其终浓度为每ml采样液中加入0.1 ml的10mg/ml)和抗真菌药物(终浓度为每毫升采样液中加入0.008 ml的250ug/ ml)。主要的采集方法有以下几种:1)鼻拭子:将棉签轻轻插入鼻道内鼻腭处,停留片刻后缓慢转动退出。以同一拭子拭两侧鼻孔。将棉签浸入4-5 ml采样液中,尾部弃去。2)咽拭子:用棉签擦拭双侧咽扁桃体及咽后壁,同样将棉签头浸入4-5 ml采样液中,尾部弃去。注:亦可将鼻、咽拭子收集于同一采样管中,以便提高分离率,减少工作量。3)鼻咽抽取物:用与负压泵相连的收集器(国外有售)从鼻咽部抽取粘液。先将收

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13种蛋白浓缩方法的应用过程需知

相关专题蛋白浓缩蛋白浓缩在免疫学中应用广泛,蛋白浓缩的方法数数还不少:聚乙二醇沉淀法、冷冻干燥浓缩法、超滤膜浓缩法、有机溶剂沉淀法……那么,这些方法用的时候该注意哪些问题呢? 1、丙酮沉淀法:三氯醋酸沉淀法试验要求的仪器简单,但是常常导致蛋白质变性。 2、免疫沉淀法:得有特异性抗体 3、硫酸铵沉淀法:利用高浓度盐将蛋白质析出(盐析),选择硫酸按是因为:盐析有效性,pH范围广,溶解度高,溶液散热少,经济,大多数的蛋白都可以用资格方法 4、聚乙二醇沉淀法:使用PEG时旨在个别情况下才会是蛋白质稍有变性!他溶解是散热低,形成沉淀的平衡时间短,通常达到30%时蛋白质就会达到最大量的沉淀! 5、离子交换层析:可用阴离子交换树脂进行浓缩。 6、透析袋浓缩法:利用透析袋浓缩蛋白质溶液是应用最广的一种。将要浓缩的蛋白溶液放入透析袋(无透析袋可用玻璃纸代替),结扎,把高分子(6 000-12 000)聚合物如聚乙二醇(碳蜡)、聚乙烯吡咯、烷酮等或蔗糖撒在透析袋外即可。也可将吸水剂配成30%-40%浓度的溶液,将装有蛋白液的透析袋

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实时定量PCR的原理、探测化学物质及探针优化(一)

1. 实时PCR原理对扩增产物进行可重复性的定量长期以来一直是科学家和研究者的目标。传统的方法需要对终产物进行凝胶电泳分析。这种方法可以确定目的产物和竞争产物的大小,估算纯度,计算条带强度。然而,所用扩增试剂和体系的变动会造成扩增的终产物的重复性有较大的变动,成为这种方法的主要弊端。扩增过程的指数期提供给我们最有用的,可重复的数据。在起始的目的DNA量与循环过程的指数期的扩增产物量之间存在着定量关系。这正是实时扩增的基础。随着DNA内嵌染料和探针特异性化学的发展,实时探测量子学的跳跃发展推动了对扩增过程的研究进展。今天的实时设备由荧光读数计和热循环仪组成,用来监测循环过程的荧光。与实时设备相连的计算机收集荧光数据。数据通过开发的实时分析软件以图表的形式显示。原始数据被绘制成荧光强度相对于循环数的图表。在扩增的每个循环中至少收集一次荧光数据来进行扩增的实时监控。用户能够根据一个一个的循环知道那个样品正在扩增。这些即时的数据允许用户看清楚各个样本相对于标准品,阳性对照和阴性对照是如何扩增的。用户不仅能在扩增过程中监督整个反应,还可以根据反馈的信息来优化相应程序。因此增加了敏感性,特异性和有

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流式细胞术的常用样品制备方法

相关专题单细胞悬液 流式细胞术的实验检测对象是单细胞悬液,因此,在组织化学和免疫组织化学实验中欲对待测样品细胞进行分类计数,也需把样品制备成细胞悬液,并要求被检细胞大小为0.2~80pm,每个样品中至少有20 000个细胞,细胞浓度为105 ~107 个/ml。制备成的单细胞悬液经荧光或免疫荧光标记即可上机检测。一.单细胞悬液的制备1. 弃去培养细胞(对数生长期)中的旧培养液,加入1~2ml 0.25%胰蛋白酶,倒置显微镜下观察,见细胞稍变圆时,停止胰蛋白酶作用。也可直接观察培养瓶,静置消化2~3分钟,待细胞逐渐变白,有脱落趋势时,立即竖立培养瓶,停止胰蛋白酶作用,弃去胰蛋白酶; 2. 加入3~4ml无钙离子和镁离子的PBS液,用吸管反复吹打,使其分散为单个细胞悬液,移入离心管中;3.离心,去掉上清液,加入约0.5mlPBS液,用振荡器使细胞分散;4.用细滴管或注射器将细胞迅速注入4℃ 70%乙醇中,保存于4℃冰箱中备用。 二.实体组织单细胞悬液的制备 1.机械法 ①用剪刀剪碎或者用锋利的解剖刀剁碎组织; ②将剪碎的组织加入匀浆器中匀浆;

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GC含量高的PCR小结

xjktony扩增模板的GC 含量为66%,也不算很高,我做过更高的GC 含量(80%)的PCR.对于 这种高GC含量的PCR,要加些DMSO等,以解除其二级结构的影响,当然现在也有专门这种PCR Buffer卖.vanny宝生物有这种做高GC含量的酶和buffer,称为LA TAKARA酶,里面有GC buffer,效果还不错。westernblot你用DMSO5%加到里面,60%应该不是算高的,如果实在不行,就用advantage 2 high GC taq polymeras.(clontech), 效果好,就是贵了点。我用的退火温度为60度可见模糊片段,但58度就只有引物二聚体了,你用高温变性,向95度,5min,后加入taq酶,其余度循环中间用95度,15s,如果TM值高过60,可以考虑用65-62度,增加循环数。changle可以用双温法试试,比如35个循环,总变性之后,前五个循环双温即没有延伸,后三十个循环三温,具体温度根据引物Tm值定。我试过效果不错。mcli如果基因的5’端含有丰富的GC碱基,设计的PCR引物Tm值很高,用普通PCR很难理想地扩增出此基因。用热启动(h

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细菌培养常用培养基和抗生素的配制方法

一、常用培养基 1、LB培养基 将下列组分溶解在0.9L水中: 蛋白胨10g 酵母提取物5g 氯化钠10g 如果需要用1NNaOH(~1ml)调整pH至7.0,再补足水至1L。注:琼脂平板需添加琼脂粉12g/L,上层琼脂平板添加琼脂粉7g/L。 2、SOB培养基 将下列组分溶解在0.9L水中: 蛋白胨20g 酵母提取物5g 氯化钠0.5g 1mol/L氯化钾2.5ml 用水补足体积到1L。分成100ml的小份,高压灭菌。培养基冷却到室温后,再在每100ml的小份中加1ml灭过菌的1mol/L氯化镁。 3、SOC培养基 成分、方法同SOB培养基的配制,只是在培养基冷却到室温后,除了在每100ml的小份中加1ml灭过菌的1mol/L氯化镁外,再加

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小鼠树突状细胞培养攻略

一、方法 根据1999年lutz的方法,做了一些改进,培养DC很多人用的是高浓度的细胞,高浓度的因子,但是这样产量不高,我每一次分离一只小鼠的骨髓,大约可以得到107个细胞,分成10盘,每盘10 ml培养基,用低浓度的细胞因子,这样可以大大提高产量,每次能培养得到1*107个DC左右,流式细胞术检测:细胞纯度应该大于90%,这个方法还是很好用的。 二、具体步骤 1. C57Bl/6小鼠 2. 处死小鼠,75%酒精浸泡10 min。 3. 解剖取出小鼠股骨和胫骨。 4. 取出骨上组织。 5. 冲洗骨髓腔,直至骨变白。 6. 收集的细胞沉淀一10 000/ml接种,培养液含200 U/ml rmGM-CSF和IL-4。 7. 隔天换液并补充细胞因子,到第三天的时候如图:可以见到出芽状的突起,突起还不是特别多,也不是很长。 8. 第8天的时候,细胞形态已经出来,如图所示: 细胞形态具有典型的树突状细胞形态,长长的突起,到这个时候细胞已经比较成熟了,补充一下:第七天半量换液的时候,加入TNF-a刺激细胞成熟三、相关应用 1、

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同型半胱氨酸(Hcy)的参考值及临床意义

同型半胱氨酸(homocysteine,Hcy)作者:北京大学第一医院心血管内科 马为 同型半胱氨酸(homocysteine,Hcy)是一种含硫氨基酸,为蛋氨酸代谢过程中重要中间产物。目前认为高Hcy血症是体内叶酸和维生素B12缺乏的敏感指标,是心血管疾病的独立危险因素。动脉粥样硬化者中,高Hcy血症患病率为13-47%。在心血管疾病高发的今天,评价血Hcy继而进行针对性的处理具有非常重要的临床意义。 一般而言,在非叶酸强化地区,Hcy的上限一般为15-20μmol/L。但对于维生素状态良好、生活方式良好的人,上限约12μmol/L。美国心脏协会和脑卒中协会2006年脑血管病防治指南提出Hcy>10μmol/L为高Hcy血症。每个实验室应根据当地情况制定具体的参考值。应该针对妊娠期妇女、不同年龄段的人制定参考值。15岁以下儿童青少年和妊娠妇女,没有叶酸强化地区Hcy正常上限为10μmol/L,有叶酸强化地区为8μmol/L。15-65岁人群中分别为15和12μmol/L,60岁以上老年人分别为20和16μmol/L。 对不同个体,由于测量变异和生理变异,一次测量不能完全反

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RT-PCR在基因表达(gene expression)检测中的应用

相关专题基因表达的检测方法基因表达的检测有几种方法。经典的方法(仍然重要)是根据在细胞或生物体中 所观察到的生物化学或表型的变化来决定某一特定基因是否表达。随着大分子分离技 术的进步使得特异的基因产物或蛋白分子的识别和分离成为可能。随着重组DNA技术 的运用,现在有可能检测.分析任何基因的转录产物。目前有好几种方法广泛应用于 于研究特定RNA分子。这些方法包括原位杂交、NORTHERN凝胶分析、打点或印迹打 点、S-1核酸酶分析和RNA酶保护研究。这里描述RT-PCR从RNA水平上检查基因表达的 应用。(1)RT-PCR检测基因表达的问题讨论关于RT-PCR技术方法的描述参见PCR技术应用进展, 在此主要讨论它在应用中的问题。理论上1μL细胞质总RNA对稀有mRNA扩增是足够了(每个细胞有1个或几个拷 贝)。1μL差不多相当于50-100,000个典型哺乳动物细胞的细胞质中所含RNA的数 量,靶分子的数量通常大于50,000,因此扩增是很容易的。该方法所能检测的最低 靶分子的数量可能与通常的DNAPCR相同;例如它能检测出单个RNA分子。当已知量的 转录RNA(用T7RNA聚合酶体外合

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HLA抗原和等位基因命名

HLA 抗原和等位基因命名 HLA抗原和等位基因因检测方法的不同而有相应的命名系统。 1.用血清学及细胞学技术检测的抗原特异性 HLA抗原的检出最初采用诺贝尔奖获得者法国人Dausset倡导的白细胞凝集反应,随后由荷兰人VaT/Rood、美国人Terasaki等建立了血清学分型技术,即补体依赖的微量淋巴细胞毒试验。其通用的标准方法称为NIH二步法。HLA-A抗原、HLA-B抗原、HLA-C抗原及HLA-DR抗原、HLA-DQ抗原可用血清学方法分别检出,其检出的抗原特异性覆盖面较广,称为宽特异性。 HLA-Dw与HLA-DP特异性可分别通过纯合分型细胞(homozygotetypingcell,HTC)及预致敏淋巴细胞(primed lymphocyte test,PLT)方法检测。但因分型所需细胞来源困难及细胞表面表达抗原的复杂性,细胞学方法已不再用于常规分型。 2.用分子生物学方法检测的等位基因 20世纪80年代后期,分子生物学引入HLA领域,并进一步在PCR基础上发展了各种DNA分型技术,称为基于PCR的HLA基因分型(PCR-based HLAgenotypi

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胎牛血清使用中的常见问题

相关专题 胎牛血清产品选择指南 1、 如何储存和解冻血清才不会使产品质量受损? 将血清从冷冻箱取出后,先置于2~8℃冰箱使之融解,然后在室温下使之全融。但必须注意的是,融解过程中必须规则地摇晃均匀。 长时间储存在2-8℃时,血清中的各种蛋白和脂蛋白(如冷凝集素、纤维蛋白原、玻粘连蛋白等)可能聚集而形成沉淀或可见的混浊。因此,推荐在-20℃以下储存血清,并避免反复冻融。 我们建议血清应保存在-2O℃。若存放于4℃时,请勿超过一个月。若一次无法用完一瓶,建议无菌分装血清至恰当的灭菌容器内,再放回冷冻。 2、血清中包含絮状沉淀,它们是什么,怎么处理? 沉淀包含纤维蛋白和脂蛋白。这是正常特性,不会影响产品性质。要除去沉淀,离心血清(400g,1-2分钟)或者简单的让其沉淀在瓶子底部,将血清小心的转移到另一个无菌瓶里(一般不建议采用过滤的方法除去沉淀,因为沉淀会堵塞滤膜而无法过滤)。大多情况轻轻摇动沉淀并加热至37℃就会再溶解。所以,使用产品时要摇动并加热血清至37℃,沉淀会自然消失。 3、实验室如何选择适

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基因芯片与SNP分析

相关专题基因芯片技术基因芯片技术作为一种新兴的生物技术,近年来得到迅速发展,其应用具有巨大的潜力。单核苷酸多态性(SNP)作为新的遗传标记对基因定位及相关疾病研究的意义亦非常重大。本文主要介绍了DNA 芯片技术的原理和分类、单核苷酸多态性检测方法及DNA 芯片技术在单核苷酸多态性检测方面的应用。生物芯片技术是90 年代初发展起来的,集分子生物学、微电子技术、高分子化学合成技术和计算机科学等于一身的一门新型技术。目前发展的生物芯片种类繁多, 如蛋白质芯片、基因芯片、激素芯片、药物芯片等。但最初的生物芯片主要用于对DNA 的测序, 基因表达谱的鉴定及基因突变体的检测、分析等方面。迄今为止, 使用最多的也是DNA 芯片。DNA 水平遗传多态性标记至今已经历了3 个阶段:限制性酶切片段长度多态性标记(RFLP)、DNA 重复序列的多态性标记(包括小卫星、微卫星DNA 重复序列)、单核苷酸多态性标记(single nucleotide polymorphisms , SNPs)。SNP 具有数量多,分布广泛,易于快速、规模化筛查,便于基因分型等特点。伴随着SNP 检测和分析技术的进一步发展,尤其

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DNA小片段的纯化回收

相关专题DNA 电泳小于100bp的片断通常在电泳时就比较难观察分辨,需要用分辨率很高的琼脂糖或者丙烯酰胺凝胶。比如Cambrex的NuSieve 3:1或者GTG,或者是大名鼎鼎的MetaPhor琼脂糖。所以实际上对于小片断,可以分为两种情况:一个是真的要回收电泳中特别小的片断,这种情况我们前面有提到,比如Qiagen MinElute系列可以回收70bp以上的片断;而QIAEX纯化介质可以回收40bp以上的小片断,可以根据情况选择。另外一种情况是要去除一些小片断或者是核苷酸、标记物、或者是一些酶切碎片,或者去掉接头(Linker/Adeptor)或者什么的。其实这时已经不需要用电泳来分别,也就算不上胶回收的范围,不过既然提到了就顺手写写。PCR产物回收试剂盒实际上也是一种除去小片断的试剂盒,通常回收范围是100bp到10KB之间,也就是说将小于100bp(或者70bp)的引物或者引物二聚体连同其他杂质一同去除,操作简单,只需要将PCR产物加入过滤纯化柱中离心,清洗一次,洗脱就可以了,5分钟搞定,回收率高达95%。PCR后需要酶切时,以前常常为省略跑胶纯化的步骤,要在PCR产物中直接

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正常小鼠原代骨骼肌细胞培养

正常小鼠原代骨骼肌细胞培养 一、实验试剂1、培养基: PriCells Medium + 10% FBS + 1% P/S + PriCells Supplement2、冻存液: PriCells Medium + 20% FBS + 10% DMSO3、洗涤液: 1 × PBS (pH 7.4 )+ 1% P/S4、染色液: 0.4% Trypan Blue5、消化液: PriCells Isolation of Primary Cell Kit6、检测试剂:鼠抗人及大鼠desmin一抗,肌球蛋白(myosin)单克隆抗体二、实验器械1、培养皿2、培养瓶3、直剪和眼科剪4、眼科镊和止血钳5、烧杯6、15ml离心管三、实验流程取肌肉于平皿,Hank’s洗3次↓剔除脂肪、结缔组织↓肌肉标本剪约0.1cm3小块↓移至离心管,Hank’s洗3次↓静置1min,弃去上层液及漂浮组织↓0.25%胰酶,37度水浴消化20min,每5min摇动或吹打1次↓生长培养基终止消化,反复吹打,依次100,200,400目过筛↓离心,1000rmp,10min,弃去上清↓重悬,计数细胞,接种密度以5 × 10

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植物病原真菌的分离培养

一、实验原理植物患病组织内的真菌菌丝体,如果给予适宜的环境条件,除个别种类外,一般都能恢复生长和繁殖。植物病原菌的分离就是指通过人工培养,从染病植物组织中将病原真菌与其它杂菌相分开,并从寄主植物中分离出来,再将分离到的病原菌于适宜环境内纯化,这个过程总称植物病菌的分离培养。植物病原真菌的分离一般都是采用组织分离法,就是切取小块病组织,经表面消毒和灭菌水洗过后,移到人工培养基上培养。二、实验目的植物病原菌的分离培养是植物病理学实验最基本的操作技术之一,它对原害鉴定,病原形态观察、植物病害接种体的培养等方面都是经常使用的研究手段。通过本实验,要求植物病原菌分离培养的一般原则和方法。三、实验材料及准备1.分离材料:梨黑斑病(Alternaria kikuchiana),柿树圆斑病(Pestnlotia sp)及杉木炭疽病(Glomerella cingolata)新发病的病叶;杨树烂皮病(Cytospora chrysosperma)国槐腐烂病(Dothiorella sp.)的带有新病斑的枝条;油松种子。2.分离用具(每小组为单位)酒精灯4个,手术剪4把,眼科镊4把,PDA培养基3瓶,培养

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三维细胞培养-无支架培养模式

在细胞和组织培养领域,从上世纪70年代起二维(2D)培养科学家已经看到其局限性,并且更多地关注三维(3D)培养的优点,目前越来越多的研究从细胞培养的平面环境中转变到三维培养。当前,虽然对基于细胞的效应研究和毒性测试中,制药工业如今最常用的依旧是2D方式,3D培养技术已在学术研究中被广泛应用。细胞增殖,分化和代谢等生理活动都严重受到微环境的影响。当前细胞生物学研究大多还是在二维平面培养进行,这种平面培养、生长方式与机体内立体环境差别很大,导致细胞形态、分化、细胞与基质间的相互作用以及细胞与细胞间的相互作用与体内生理条件下细胞的行为存在明显差异。2D和3D环境下培养的细胞相比较,诸多生理指标都显著不同,例如原代小鼠乳腺管腔上皮细胞(mammary luminal epithelial cells, MEC)在3D基底膜基质中增殖的时间明显长于2D培养环境;更有甚者,有时药物作用于2D培养的细胞呈现的效应与3D细胞相反。3D培养可以设计模拟体内的生理环境,让细胞在生理行为上与机体实际的生理环境更接近。随着在生物相关性,通量,产出量等方面的改进,伴随3D培养成本的降低,3D培养在再生医学,基础

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电子显微镜检测法检测细胞凋亡

具有凋亡特征的细胞程序性死亡后,可在扫描或透射电镜下观察到“凋亡小体”,该小体系由细胞膜卷曲、脱落形成的小泡,其内包含有完整的细胞器及核片段。这种小体易被巨噬细胞、上皮细胞等吞噬,借以清除正常发育过程中死亡的细胞。细胞坏死则无此小体形成。但是并非所有发生程序性死亡的细胞皆形成凋亡小体。 一、仪器与试剂 射电子显微镜或扫描电子显微镜,组织切片机,离心机,离心涂片机。 戊二醛固定液:取25%戊二醛原液10ml,加入0.2mol/L PBS液50ml,再加入蒸馏水40ml,混匀,4℃保存。 锇酸固定液:将含有1g锇酸的小瓶浸入清洁液过夜,用双蒸水冲洗数遍后,将小瓶放在盛有50ml双蒸水的100ml棕色磨口瓶内,击破锇酸小瓶使其内锇酸溶于水,1~5ml小瓶分装,避光,4℃保存。用时再稀释1倍成1%的应用液。 二、操作步骤 离心收集约5×106 细胞,用PBS洗涤两次后,弃上清,加1ml 2.5%戊二醛悬浮细胞,移入1.5ml Ep管中,室温下4 000r/min离心15min,固定细胞0.5~1h; 在磷酸缓冲液里漂洗1~2h或更长时间,尽量将戊二醛冼净,用1%的锇酸固定液固

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拟南芥培育方法—通用指南

一、原理 拟南芥作为高等植物的模式生物被全世界的植物生物学实验室广泛研究。然而,照顾好这种小植物可能不是那么容易。这里介绍一个马里兰大学帕克学院的HevenSze实验室的通用指南。Sze实验室及其他实验室的成员为建立这个在实验室培育拟南芥的通用指南做出了许多努力。 二、步骤 1. 准备种植用土 我们使用Miracle-Gro混合土(2立方英尺一袋)与Miracle-Gro8夸脱.MiracleGro珍珠岩来培养拟南芥,在一个可以放下2袋混合土的大容器中和土,1袋混合土(2立方英尺)混入半袋珍珠岩(4夸脱)。 注意:Sze实验室在装土之前经常将土灭菌!(方法如下) (1)将干土放入灭菌容器中,直至与顶部相差一英寸,将土拍实。 (2)用铝箔纸将容器封住,在每一个容器上放一张灭菌用胶带,缠好。确保容器外没有土,放入灭菌锅。 (3)用常规/秒速/快速模式灭菌30~50 min,灭菌模式及时间取决于灭菌的容器数量。 (4)当温度降至室温,将土放入花盆,轻轻压实。记住将灭菌土保存好,避免种子或菌类污染。灭过菌的土至少可以使用两星期,如无需要请不要多次灭菌。 (5)将花盆用

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Western blotting细节——献给完全一个人做此实验的xdjm们

新人经验 在正文开始之前,请允许小妹我简单介绍一下个人情况,顺带为即将独自一人做此实验的xdjm们打打气。小妹我上无师兄师姐(上届师姐于我开始做实验时已毕业),下无师弟师妹(下届师弟师妹尚未开学),由于种种原因被老板发配到外院一个生物治疗中心进行我的实验。在我开始做Western时,制胶器及转膜仪等均未开封,老师们均表示以前也未做过Western。所以我是第一个吃螃蟹的人,吃苦或许是注定的。我自己找了一个常做Western的帅哥(本不认识)学习了大概两天的样子,就独自一人开始了我的Western生涯。从开始到现在总共也不到一个月,所以经验之类我几乎没有,但是之所以斗胆写此文,仅仅不希望下一个与我情况类似的xdjm们犯一些低级错误,我犯的低级错误足以让大神们笑掉大牙(后表)。啰嗦这么久,正式开始吧。1. 即使没有师兄师姐带,即使在外院,不管条件多么恶劣,找人跟着学习是必须的,不然完全无从下手,最好自己先预习,对实验原理、步骤等等有初步的理解,然后每一步骤争取看上3遍,我只学了两天,太少了,细节问题很多没注意到。2. 先讲制胶器,玻璃板、梳子都是有规格的,我用的是六一的DYCZ-24

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BIO-RAD(伯乐)电泳仪、电泳槽

相关专题 Mini Protean 3 Cell 小型垂直电泳简介: 凝胶数:1 或2玻板尺寸(W x L)短板10.1 x 7.3 cm间隔板10.1 x 8.2 cm凝胶大小(W x L) 手灌胶:8.3 x 7.3 cm; 预制胶: 8.6 x 6.8 cm典型上层缓冲液体积120 ml典型下层缓冲液体积180 ml典型SDS-PAGE电泳 时间45 min ( 200 V 恒压)建议电源PowerPac™ Basic 或PowerPac™ HC 大小(W x L x H) 12 x 16 x 18 cm PowerPac Universal 电泳仪 电源简介:a. 输出范围:电压 10-500 V电流 0.01-2.5 A功率 1-500 W b. 输出类型 恒压、恒流或恒功率c. 有暂停/继续功能d. 有断电后自动恢复功能e. 输出插孔# 4对并联,可同时对四个同类型的电泳槽进行电泳f 安全标准 通过EN-61010, CE标准 PowerPac 3000电泳电源简介:PowerPac 300

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