1．常规程序将PCR反应所需的成分配置完后，在PCR仪上于94-96℃预加热几十秒至几分钟，使模板DNA充分变性，然后进入扩增循环。在每一个循环中，先于94℃保持30秒钟使模板变性，然后将温度降到复性温度（一般50-60℃之间），一般保持30秒钟，使引物与模板充分退火；在72℃保持1分钟（扩增1kb片段），使引物在模板上延伸，合成DNA，完成一个循环。重复这样的循环25～35次，使扩增的DNA片段大量累积。最后，在72℃保持3-7min，使产物延伸完整，4℃保存。2．复性（退火）和延伸温度复性的温度是PCR扩增是否顺利的关键因素，通常在50-60℃之间。具体的温度主要由引物的Tm值决定。延伸温度绝大多数设定为72℃。如果复性的温度很高，可以将延伸温度和复性温度设置成同一温度，变成二步法PCR。3．反应时间变性步骤一般使用30秒钟，如果模板的G+C含量较高，或直接用细胞做模板，变性时间可适当延长。复性时间有30秒种一般是足够的。延伸时间由扩增产物的大小决定，一般采用1kb用1分钟来保证充足的时间。4．循环次数循环次数主要与模板的起始数量有关，在模板拷贝数为104～105数量级时，循环数通

一、琼脂糖凝胶的特点 天然琼脂（agar）是一种多聚糖，主要由琼脂糖（agarose，约占80％）及琼脂胶（agaropectin）组成。琼脂糖是由半乳糖及其衍生物构成的中性物质，不带电荷，而琼脂胶是一种含硫酸根和羧基的强酸性多糖，由于这些基团带有电荷，在电场作用下能产生较强的电渗现象，加之硫酸根可与某些蛋白质作用而影响电泳速度及分离效果。因此，目前多用琼脂糖为电泳支持物进行平板电泳，其优点如下。 1. 琼脂糖凝胶电泳操作简单，电泳速度快，样品不需事先处理就可以进行电泳。 2. 琼脂糖凝胶结构均匀，含水量大（约占98％~99％），近似自由电泳，样品扩散较自由电流，对样品吸附极微，因此电泳图谱清晰，分辨率高，重复性好。 3. 琼脂糖透明无紫外吸收，电泳过程和结果可直接用紫外光灯检测及定量测定。 4. 电泳后区带易染色，样品极易洗脱，便于定量测定。制成干膜可长期保存。 目前，常用琼脂糖作为电泳支持物，分离蛋白质和同工酶。将琼脂糖电泳与免疫化学相结合，发展成免疫电泳技术，能鉴别其他方法不能鉴别的复杂体系，由于建立了超微量技术，0.1ug蛋白质就可检出。 琼脂糖凝胶电泳也常用

细胞计数法是用来计数细胞悬液中细胞数量的一种方法。一般利用计数板（血球计数板）进行。即可用于分离（散）细胞培养接种前计数所制备的细胞悬液中的细胞数量，也可用于对培养物的细胞数量进行计数。不论计数的对象如何，均须制备分散的细胞悬液。一、步骤1、制备细胞悬液：对于悬液培养的细胞，可直接进行下面的步骤2（计数与计算过程）。如果计数对象为贴壁生长的细胞，首先需将培养物按如下步骤制备成细胞悬液。1）、终止培养，将培养液吸出，用PBS洗培养物一次。2）、给培养瓶内加入1ml 0.25％胰蛋白酶溶液，于37℃消化3～5min 。期间不断在镜下观察。当细胞变圆接近脱壁时，弃消化液。3）、加入一定量的培养液（如果这些培养细胞不再有用，可加PBS），用吸管吹打，使细胞脱壁而制成细胞悬液。2、计数与计算过程1）、在细胞计数板中央放置计数专用的盖玻片。2）、用玻璃虹吸管吸取细胞，让虹吸管在盖玻片上或下侧的计数板凹蹧处流出悬液，至盖玻片被液体充满为止。3）、置显微镜下计数四角大方格内的细胞总数。对于压线的细胞只计数在上线和左线者，对于细胞团按单个细胞计数。4）、按下式计数细胞悬液的密度：细胞密度＝（4个大格细胞

实验目的：体外检测蛋白质与蛋白质之间相互作用。用于验证两个已知蛋白的相互作用，或者筛选与已知蛋白相互作用的未知蛋白。 实验原理：利用重组技术将探针蛋白与GST（Glutathione S transferase）融合，融合蛋白通过GST与固相化在载体上的GTH（Glutathione）亲和结合。因此，当与融合蛋白有相互作用的蛋白通过层析柱时或与此固相复合物混合时就可被吸附而分离。 试剂：NaCl， KCl，Na2HPO4，KH2PO4，Triton-100，IPTG(Merck分装)，PMSF（Amersco），Cocktaier（Merck 539134），Immobilized Glutathione（PIERCE 15160） 实验操作程序： 材料及试剂 探针蛋白与GST融合的原核蛋白，裂解的细胞蛋白，或者组织蛋白提取物 细胞蛋白裂解液，洗脱液： PBS及PBS+1%Triton-100 PBS (1L) NaCl： 8g KCl： 0.2g Na2HPO4： 1.44g KH2PO4： 0.24g

1、离心收集细胞，弃上清，用预冷PBS洗细胞两次。 2、加入预冷70%乙醇，于4℃固定过夜，或-20℃长期固定（4℃过夜一般隔天就进行检测，如果想推迟几天测，那就保存在-20℃，有资料说-20℃可以保存一个月，个人建议尽量在最短时间内检测，有些实验是在不同时间点上收细胞，这时我就等最后一次固定完了一块测，基本上也多在一周内检测完毕，没有特地去比较保存时间对检测结果的影响）。 3、细胞染色 离心收集细胞，以1mL的PBS洗细胞一次，加入500uLPBS含50ug/mL溴化乙锭（PI），100ug/mL RNase A， 0.2% Triton X-100， 4℃避光孵育30分钟（PI我是直接用PBS配成工作浓度，然后加入细胞沉淀混匀，RNA酶现加，但有时不加发现对实验结果也没太大的影响） 。 4、流式分析 以标准程序用流式细胞仪检测，一般计数2-3万个细胞，结果用细胞周期拟和软件ModFit分析。 分析时，使用FL2-w和FL2-A显示，去除联体细胞。 细胞周期流式后一般分为G0/G1,S,G

因为自己做PC12细胞培养，想在接种前将培育皿用多聚赖氨酸包被，到园子里搜索了下，关于多聚赖氨酸的帖子不少，看了一些帖子，将大部分收集在此。个人觉得关于多聚赖氨酸的配置、保存、使用各方面问题，这些帖子里面都解释了。注：我只是摘了一个帖子里某段或某句话。一般一段话来自某一位战友。一、常用的多聚赖氨酸包被可以用三蒸水，或者PBS，浓度一般为用0.1 mg/ml进行包被。二、其他常用包被方法比较(以各种免疫分析为例)：49456826.snap三、我配成1mg/ml的储存液，用Mini-Q(超纯水)配制，放在－20℃储存，使用时稀释10倍（也用超纯水），即终浓度100ug/ml，过滤后使用。工作液过滤使用，如一次用不完，放在4℃储存。多聚赖氨酸在水溶液中易分解，所以一次不要配太多工作液。四、我现在要配多聚赖氨酸,书上写的用 PBS配,但没写PH,浓度，向各位请教。答：PH应该在7.0~7.4，PBS：取氯化钠7.650 g，无水磷酸 氢二钠0.724 g，磷酸二氢钾0.210g 溶于蒸馏水1000 mL 中，以1N 氢氧化钠 溶液调pH 值为7.0~7.4，经121℃灭菌15 分钟五、我准备

一、维生素D简介 维生素D为类固醇衍生物，属脂溶性维生素。维生素D主要由人体皮肤经紫外线照射后合成，少部分从食物或补充品中摄入。现已知对人体较为重要的是维生素D2和维生素D3。 研究表明，维生素D不仅仅影响钙磷代谢，而且具有广泛的生理作用，是维持人体健康、细胞生长和发育的必不可少的物质，与多种疾病密切相关。 二、维生素D的生理功能： 1.调节体内钙磷代谢，维持血磷和血钙浓度； 2.促进生长和骨骼钙化，促进牙齿健全； 3.促进骨形成，刺激骨吸收，促进钙盐沉着； 4.减少多种骨疾病的发生风险； 5.降低多种慢性疾病患病率，减少多种癌症风险。 三、维生素D的形式： 目前维生素D有两种形式，维生素D在肝脏中通过羟基化作用产25-OH-VD。25-OH-VD是维生素D的主要循环形式。维生素D的活性形式为1, 25-(OH)2-VD。 四、检测维生素D的重要性： 维生素D不再被认为是仅仅用于预防儿童佝偻病的营养必需品。维生素D对健康的意义被更加广泛的认知，并在大量临床试验中得到证实，这其中包括： 1.降低常见癌症的发生率，如乳腺癌、肺癌、结肠癌等。 2.防治自身免

各种浓度PAGE胶的配制（DNA电泳用）50ml体系：丙烯酰胺有效分离（bp)二甲苯青溴酚蓝丙烯酰胺30%（ml）10×TBE（ml)ddH2O（ml） TEMED（µl） 过硫酸铵10%（µl）3.5%100-10004601005.83539.1725.02505.0%100-500260658.33536.6725.02508.0%60-4001604513.33531.6725.025012.0%40-200702020.0525.0025.025015.0%25-150601525.0520.0025.025020.0%5-100451233.33511.6725.02505ml体系：丙烯酰胺丙烯酰胺30%（ml）10×TBE（ml） ddH2O（µl） TEMED（µl）过硫酸铵10%（µl）3.5%0.5830.53.9172.5255.0%0.8330.53.6672.5258.0%1.3330.53.1672.52512.0%2.000.52.52.52515.0%2.500.52.02.52520.0%3.3330.51.1672.5251、丙烯酰胺30

组织中的细胞周期和凋亡检测方法之一－－PI法schoman无论是肿瘤或其它正常新鲜组织均可用PI（碘化丙啶）的方法来检测，这是一种常见而且便宜的方法。主要操作步骤如下：1、组织块用0.25%胰酶消化30min－1h。2、200－400目筛网过滤细胞，获得单细胞悬液。3、75％乙醇（－20度预冷）固定细胞1h。4、加入PI（终浓度50ug／ml）和无DNA酶污染的RNA酶（终浓度50ug／ml）1ml染色30min－1h。5、流式细胞仪检测细胞周期和凋亡。注意事项： 1、组织消化后使细胞形成单个细胞悬液是本检测方法的关键。如组织难以消化，可加入适量胶原酶。另外，消化前，用剪刀将组织剪成小块也不要忘了。2、细胞可尽量的多准备（at least 100 thousand），这样流式检测方便，结果可靠。3、每次消化的时间等条件应尽量一致，否则使实验结果CV值偏大。4、细胞用乙醇固定后可以访置48小时（4度保存）后检测，便于无法立即检测的实验者，对实验结果基本没有影响。其它也有一些检测凋亡的方法，均有商品化试剂盒。在此不赘述。yanzishenyang：我看相关的说明：碘化丙啶（propidiu

相关专题 Bradford法测蛋白质浓度 一、实验目的 配制一组浓度分别为0.10mg/ml ，0.08mg/ml，0.06mg/ml ，0.04mg/ml ，0.02mg/ml，0 mg/ml的牛血清蛋白 (BSA)溶液，测定这组溶液的吸光度，得到蛋白质浓度对吸光度的一条标准曲线。测定未知蛋白质浓度样品的吸光度，根据标准曲线得到蛋白质的浓度。 二、实验原理 考马斯亮蓝(CBB)测定蛋白质含量属于染料结合法的一种。考马斯亮蓝在游离状态下呈红色，最大光吸收在488nm;当它与蛋白质结合后变为青色，蛋白质—色素结合物在595nm波长下有最大光吸收。其光吸收值与蛋白质含量成正比，因此可用于蛋白质的定量测定。蛋白质与考马斯亮蓝结合在2min左右的时间内达到平衡，完成反应十分迅速;其结合物在室温下1h内保持稳定。该法试剂配制简单，操作简便快捷，反应非常灵敏，灵敏度比Lowry法还高4倍，可测定微克级蛋白质含量，测定蛋白质浓度范围为0～1 000μg/ml，是一种常用的微量蛋白质快速测定方法。 三、实验过程 1.准备所需的药品和仪器。

MTT有下面一些优点：1、有灵敏度高，重复性好，2、操作简便、经济、快速、易自动化的优点，3、而且没有3H—TdR掺入试验放射性污染，4、还可以减少如细胞计数法、软琼脂克隆形成试验中的人为性因素所以可以选择这种实验方法丁香园网友jiangql的观点为：MTT 理论可以参见司徒镇强，吴军正主编. 细胞培养. 西安：世界图书出版社. 1996.MTT，3-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide, 四唑盐. 实验结束前，如杀伤实验或生存曲线培养48h后，加入5mg/mL的MTT 10μL，继续培养4h后离心弃上清，加入DMSO150μL溶解MTT，选择490nm或550nm波长，在酶联免疫检测仪上测定OD值。有三点体会：1、MTT的量各家报道不同，一般是过量的，所以10ul即够了。2、贴壁细胞效果好，悬浮细胞要离心2500rpm×10min，室温, 再吸去培养液，加入DMSO。3、如果实验孔不多，DMSO加入后可以用枪头吹打混匀，比振荡溶解效果好。丁香园网友Seattle78的观点为：MTT比色法是一种检测细胞存活

Hoechst染色的具体步骤caspase8428：我看到资料上说，荧光染色的时候可以用DAB与荧光物质反应生成沉淀。那么，Hoechst染色时，什么时候加DAB，浓度是多少，用什么稀释，最后怎么来终止反应？是不是还要用抗退色固片介质来封片？sunandsuny：Hoechst染色时无需用DAB来显色，它直接结合细胞的DNA ，经过紫外光激发后发出蓝色荧光。如果你是用来染培养的细胞的话，可以参考下面的步骤（切片雷同）：细胞涂片：甲醇：冰乙酸（3：1）固定15分钟，PBS洗一次，加Hoechest 33258荧光染料37℃孵育15~30分钟，于荧光显微镜下观察。凋亡细胞由于染色质固缩，细胞核呈致密浓染，或呈碎块状致密浓染。操作比较容易的。altbenair: 想做肝癌细胞 hepG2。看过很多帖子 还有文献上的方法，但是都不太具体大都是这样：固定（福尔马林4%），pbs洗三遍，加hoechst孵育1H，将细胞悬液滴于载玻片上荧光显微镜检测。细胞悬液怎么做？我要做贴壁细胞 用胰酶消化？drake015: .1．贴壁细胞 ，让细胞自己在盖玻片上爬片。操作如下：A. 取普通洁净盖玻片于70%乙

annexinＶ-FITC(FL1 通道)+ PI（FL2通道）双染细胞，FITC阳性＋PI阴性细胞百％就是早期凋亡％。一、原理磷脂酰丝氨酸（Phosphatidylserine，PS）正常位于细胞膜的内侧，但在细胞凋亡的早期，PS可从细胞膜的内侧翻转到细胞膜的表面，暴露在细胞外环境中。Annexin V 是一种分子量为35~36kD 的Ca2+依赖性磷脂结合蛋白，能与PS 高亲和力特异性结合。将Annexin V 进行荧光素（FITC、PE）或Biotin 标记，以标记了的Annexin V 作为荧光探针，利用流式细胞仪或荧光显微镜可检测细胞凋亡的发生。碘化丙啶（propidine iodide，PI）是一种核酸染料，它不能透过完整的细胞膜，但在凋亡中晚期的细胞和死细胞，PI 能够透过细胞膜而使细胞核红染。因此将Annexin V 与PI 匹配使用，就可以将凋亡早晚期的细胞以及死细胞区分开来。二、方法1、调整待检测细胞浓度为106个/ml，取200ul， 1000rpm×5min(4℃)。2、预冷的PBS1ml 润洗两次2，1000rpm×5min(4℃)。3、将细胞重悬于100ul

准备工作 （1）试管、试管架、滴管、吸管、小鼠固定架、玻璃瓶、玻璃皿、烧杯、橡皮头、剪刀、镊子、纱布、棉球、酒精灯、滴管、移液器、细胞计数器、生理盐水、PBS、双抗（青链霉素）、75%酒精、95%酒精、培养瓶（50ml，260ml）。 （2）BALB/C小鼠（4~5周龄，18~22g，雌雄不限）、胎牛血清（灭活）、DMEM-LG培养液（美国GIBCO） （3）针头与注射器：4.5号、7号针头（冲小鼠股骨、胫骨和肱骨骨髓，制单细胞悬液）。 实验前准备 （1）实验室消毒，隔离衣消毒，小鼠固定架消毒。配10%FBS培养液，加双抗（内含青霉素、链霉素各100μg/ml）。 （2）用75% 酒精擦拭无菌操作台面，取各种已消毒的培养用品置于超净台面，无菌室及超净台用紫外灯照射30~60 分钟灭菌。 （3）开始工作前先洗手、75%酒精擦拭手至肘部。穿隔离衣，戴手套。用70% 酒精擦拭无菌操作台面，并开启无菌操作台风机运转10 分钟后，才可开始实验操作。点燃酒精灯，安装吸管帽。 实验步骤 （1）BALB/C纯系小鼠脱臼处死后，75%乙醇浸泡5min后，在无菌操作台上无菌条件下分离双侧股骨及胫骨，在含生

焦磷酸测序（Pyrosequencing）技术是新一代DNA序列分析技术，该技术无须进行电泳，DNA片段也无须荧光标记，操作极为简便。Pyrosequencing技术是由4种酶催化的同一反应体系中的酶级联化学发光反应，在每一轮测序反应中，只加入一种dNTP,若该dNTP与模板配对，聚合酶就可以将其掺入到引物链中并释放出等摩尔数的焦磷酸基团（PPi）。PPi可最终转化为可见光信号，并由PyrogramTM转化为一个峰值。每个峰值的高度与反应中掺入的核苷酸数目成正比。然后加入下一种dNTP,继续DNA链的合成。测序仪（图片来组互联网） 瑞典Pyrosequencing AB公司基于Pyrosequencing技术而研究开发的PSQ 96系统是一个理想的遗传分析技术平台，它既可进行DNA序列分析，又可进行基于序列分析的SNP检测及等位基因频率测定。我公司是国内最早引进PSQ 96 MA 技术平台的公司之一，它具有以下优点：1.不需要制胶，不需要毛细管，也不需要荧光染料和同位素。2.10分钟内可分析96个样品的SNP,可满足高通量分析的要求。3.每个样品孔都可进行独立的测序或SNP分析，实验设

一、目的掌握还原糖和总糖测定的基本原理，学习比色法测定还原糖的操作方法和分光光度计的使用。二、原理还原糖的测定是糖定量测定的基本方法。还原糖是指含有自由醛基或酮基的糖类，单糖都是还原糖，双糖和多糖不一定是还原糖，其中乳糖和麦芽糖是还原糖，蔗糖和淀粉是非还原糖。利用糖的溶解度不同，可将植物样品中的单糖、双糖和多糖分别提取出来，对没有还原性的双糖和多糖，可用酸水解法使其降解成有还原性的单糖进行测定，再分别求出样品中还原糖和总糖的含量（还原糖以葡萄糖含量计）。还原糖在碱性条件下加热被氧化成糖酸及其它产物，3,5-二硝基水杨酸则被还原为棕红色的3-氨基-5-硝基水杨酸。在一定范围内，还原糖的量与棕红色物质颜色的深浅成正比关系，利用分光光度计，在540nm波长下测定光密度值，查对标准曲线并计算，便可求出样品中还原糖和总糖的含量。由于多糖水解为单糖时，每断裂一个糖苷键需加入一分子水，所以在计算多糖含量时应乘以0.9。三、实验材料、主要仪器和试剂1. 实验材料小麦面粉；精密pH 试纸。2. 主要仪器（1）具塞玻璃刻度试管：20mL×11（2）大离心管：50mL×2（3）烧杯：100mL×1（4）三角

问：我在做病毒纯化时，需先用超速离心，再用蔗糖密度梯度离心，求助高手用蔗糖密度梯度离心时的转速与超速离心时的转速有联系吗，是相等还是蔗糖密度梯度离心的转速要比超速离心的速度高？若为后者，那又若何决定蔗糖密度梯度离心时的转速？谢谢！答：1、病毒的纯化时，先用超速离心，你应该查一下资料，看在多大的转速时能够把病毒离心下来．那么你的这一步的转速应该至少不小于该转速，你这一步离心下来的沉淀中含有病毒和蛋白成分。2、因此你的第二步工作就是要将病毒与其他的蛋白以及杂质分离开，密度梯度离心就可以达到该目的。这时你的离心速度要考虑病毒的大小和蔗糖的密度，使得病毒不能沉淀道管底又可与蛋白层分开。这也可能要具体问题具体分析。问：谢谢主任的指点，我的病毒直径为100nm。查阅了有观资料，超速离心为21000rpm,45min，我用24000rpm2hr，我用20%-60%连续蔗糖密度梯度离心，该病毒在蔗糖中的浮密度为1.18mg/ml，请问我的糖密度梯度离心速度大概是多少？谢谢！答：我们实验室IBV （80-100nm）的纯化是：l 病毒纯化浓缩（方法一）1、冷冻之尿囊液解冻后，4℃，11000rpm离心

一、细胞总 RNA 的提取1、6 孔板细胞汇合度为 90-100% 时，取出无菌室，去其上清，用 PBS 洗两次后，每孔加 TRIZOL 试剂 1 ml，摇匀，无菌罩内消化 3-5 min。2、将各孔内消化好的细胞裂解液吸到一 DEPC 处理过的 1.5 ml EP 管中，加新开的氯仿 0.2 ml，轻摇15 s。3、室温静置 2-3 min后，12000 rpm，15 min，4 ℃，离心。然后取上清无色水相（约 0.6 ml）到 EP 管（DEPC 处理过），加 0.5 ml新开的异丙醇，室温下静置 10 min。4、12000 rpm，10 min，4 ℃，离心。观察总 RNA 在管底的白色沉淀，弃去上清，75%乙醇 1.0 ml洗涤（用DEPC水新配制）后，7500 rpm，5 min，4 ℃离心。5、去上清，点离，用小 Tip 吸干液体。气干沉淀 5-10 min， DEPC 处理水 20-30 μl 加入，中枪打匀，55-60 ℃水浴 10 min溶解总 RNA，测 OD 值。6、电泳。 二、从总 RNA 中分离 mRNA（Oligotex mRNA Mini Kit,Ca

问： A549细胞到底是如何形态？我见过三角形，近乎MDCK细胞形态的，还有的呈长梭形。我感觉自己的细胞好像混进了MDCK细胞。大家帮忙诊断一下，谢谢。 我培养的A549细胞 答1： A549 细胞正常状态下都呈长梭形.从你提供的细胞图片看,圆形细胞较多,可能是细胞生长过密,相互挤压所致!还有许多突起,估计是有其他细胞污染,或是培养液使用时间过长，有污染所致，建议更换新鲜培养液，用新瓶传代,密度不要过高! 我们培养的 A549 细胞 答2：

Jurkat细胞（人外周血白血病T细胞），是一种悬浮细胞。我的经验如下：1、培养液：RPMI1640，15％小牛血清，2％Na2CO3，1％HEPES，青霉素100IU／1ml，庆大霉素100IU／ml；2、培养条件：5％CO2，37度，30％湿度；3、细胞复苏：要快速将冻存管放入37度水中，不断轻轻摇晃，直到细胞完全溶解，加入10ml左右的培养液，800～1000rpm，10分钟离心，之后倒掉液体，加入新的培养基就可以进行培养了；4、细胞培养：起初进行传代时由于细胞刚刚复苏，长得比较慢，所以可以3～4天传一代，传过两代后，一般2～3天传一代，每次传代后在倒置显微镜下观察细胞形态，在传过几代合适的时候可以进行实验。5、细胞冻存：1000rpm离心后，弃去液体，加入含有15％DMSO的冻存液，按下列顺序降温：室温→4℃（20分钟〕→冰箱冷冻室（30分钟）→低温冰箱（－80℃ 1小时）→液氮。6、我在做细胞培养时的一些小经验：（1）细胞培养箱在每使用1个月最好用酒精擦洗一次，这样可以减少污染；（2）虽然说加样器放在紫外下照射会不准，但我们还是丢了一把1ml的加样器在超净台，没有拿出来过，我