定点诱变(DpnI法)
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1、引物设计:每条引物都要携带有所需的突变位点,引物一般长25~45bp,设计的突变位点需位于引物中部。
2、反应:使用高保真的pyrobest DNA聚合酶 ;循环次数少,一般为12个循环。
反应体系:
10x pyrobest Buffer 5 ul
dNTP Mixture(10mM) 1ul
模板DNA(5~50ng) 1ul
primer 1 (125ng) 1ul
primer 2 (125ng) 1ul
pyrobest DNA polymerase(TaKaRa)(5U/ul) 0.25ul
加无菌蒸馏水至 50ul
3、产物沉淀纯化:加1/10 体积的醋酸钠,1倍体积的异丙醇,混匀置冰上(或-20゜C冰箱)5min,离心弃上清,70~75%乙醇洗盐两次,烘干后溶于无菌水中。(此步可省略,直接用 DpnI酶切)
4、DpnI酶切:Buffer 2ul
BSA(100╳) 0.2ul
DNA x ul
DpnI 0.5ul
加无菌去离子水至 20ul
30゜C酶切 1~4 h ;65゜C 水浴15min 终止反应。
5、将酶切产物转化大肠杆菌DH5a菌株,利用抗生素筛选突变子。
6、测序验证