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HA-DNA 基质和薄膜的制备

相关实验:特定质粒 DNA 的交联透明质酸基质和薄膜实验

最新修订时间:

材料与仪器

步骤

HA-DNA 基质和薄膜的制备

材料

试剂

己 二 酸 二 酰 胼(ADH; Sigma-A ldrich )

A nti-F lag 抗 体(S g m a -A ldrich ) ,

C0 S——1 细 胞(A T C C , R ockville, M aryland )

二 甲 基 甲 酰 胺(Sigma-A ldrich)

D M EM 培 养 基(C ellgro , H ein d o n , V irginia)

乙 基 -3- [3-二 甲 氨 基 ] 丙 基 碳 二 亚 胺(ED C I) (Sigma-A ldrich )

胎 牛 血 清(FB S ) (C ellgro)

FGM -2. B ulletK its 培 养 基(R oche D iagnostics)

H A 定 量 试 剂 盒(C orgenix , W e stm in ste r, Colorado)

H oescht 33342 突 光 染 料(e x : 485n m , e m : 530n m ; M olecular P ro b es).

H A ( K raeber G m bH & Co. , W a ld h o fstr, G erm an y ) 储 存 液(10m g/m l,i. e. ,1% )

透 明 质 酸 酶(S g m a -A ldrich)

盐酸 , lm o l/ L H C l

异 丙 醇(8 0 % 、 9 0 % 和 1 0 0 % ; F ischer C hem ical)

MC 285 兔抗鼠 H A S 2 多克隆抗体(来自 D r. John M cD onald, U niversity of U ta h )和 过 氧 化 物 酶 标 记 的 羊 抗 兔 二 抗

正 常 的 新 生 人 皮 肤 成 纤 维 细 胞(N N H D F ; C lonetics)

磷 酸 盐 缓 冲 液(P B S , Sigma-A ldrich )

质 粒 D N A (p D N A ,不同浓度),溶于无菌水

pFlag-C M V -5a 哺乳动物表达载体

这个载体有 c D N A 编码的 P D G F 或 H A S 2 克隆位点。

P D G F 检 测 试 剂 盒 Q uantikine E L IS A K it (R & D S ystem s)

仪器

铝质称重盘(灭菌,直径 4 mm) (V W R S cien tific )

细 胞 荣 光 计 C ytofluorom eter (C ytofluor-I I , B iosearch, B edford, M assach u setts)

37°C 培 养 箱(V W R Scientific)

冻 干 机(Freezem obile 12E L , G ard in er, N ew Y o rk )
振 荡 摇 床(L abQ uake shaker L-1237, Lab In d u strie s, B erkeley, C alifornia)

方法

HA-DNA 基质和薄膜的制备

1•将 I m l 合适的 p D N A 溶液和 20m l 的 I % 的 H A 溶液缓慢混合。

2.将 8m l 上 述 H A /p D N A 混合物转移到每个铝盘。然后按如下步骤操作。

H A-D N A 基质

a . 突然冷冻,并冻干 HA-DNA 混合物形成固体 HA-DNA 基质。

b •将 IOOmg A D H 溶解在 9 0 % D M F /10% H 2O 的 IOOml 混合溶液中。将上述固体H A -D N A 基质与此 A D H 溶液培养 30m i n 。

c•将 120 mg EDCI 溶解在上一步的混合物中,并 用 lm o l/L 的 H C l 调 节 p H 至 5 启动交联反应。

d•倒出溶液,倒 人 I O Oml 9 0 % 的异丙醇,并反复用 9 0 % 异丙醇洗涤 H A -D N A 基质,最后用 100% 异丙醇洗涤一次。

e. 将 H A -D N A 基质抽干。干 燥 好的材料如图 I A 所 示(K i m e t al.2003) 。

HA-D N A 薄膜

a•风干 HA/pDNA 混合物形成 HA-DNA 薄膜。

b. 将 I O m g A D H 溶解在 I O Oml 8 0 % 的异丙醇中,并将干燥的薄膜在此溶液中浸泡3 〇 m i n ,使之部分重新水化。

c. 加人 1ml EDCI 溶 液(12mg/ml,溶于水中)到上述混合物中,用 1mol/L的H C l 调 节 p H 至 5 启动交联反应。

d. 去除溶液,加 入 100m l 9 0 % 异丙醇,并 反 复 用 9 0 % 异丙醇洗涤薄膜,最后用100% 异丙醇洗涤一次。

e. 风 干 H A - D N A 薄膜。干燥好的薄膜材料如图 I B 所 示(K i m et al.2003)。
图I. DNA-H A 基 质 (A) 和 DNA-HA 薄 膜 (B)。 ( A■引自 Kim et al.2003; B 引自 Kim et al.2005 [ © EHsevier]) 生物活性验证 3.用 PBS将透明质酸酶配成lo u /ml。用这种溶液消化基质和薄膜,在不同时间收集 释放样品,并按如下步骤操作。 HA-D N A 基质 a. C 0 S 4 细胞在F G M -2BulletKits培 养 基 (含 5 % F B S , 但不加生长补充物)中 培养。按 F u G E N E 介导的方法,用释放样品转染细胞(K i m e t a L 2003)。 b•孵育3d 后收集培养基,并 按 1 : 2 的比例用Modified F G M -2 BulletKits培养基 稀释。 c. 将稀释的培养基加人到生长密度为5 X 104 个/ cm2 的 N N H D F 细胞中。每天收 获并冻存细胞,持 续 5d 。 d•用H o esch t 3 3 3 4 2 染料和细胞突光计评估细胞增殖的程度( K im et al.2 0 0 3 ) 。 e•通过F la g 免疫荧光染色确证P D G F 外源性。结果如图2 所示。
H A-D N A 薄膜 a•用D M E M 培养基培养C 0 undefined1细胞。按 F u G E N E 介导的方法,用释放样品转染 细 胞 (K i m e t al.2005)。 b•使用H A 定量试剂盒测定H A 在培养基中的含量。表 1 给出部分实验结果作为 事 例 (K i m et al.2005)。 c•用M C 285兔 抗 H A S 2 抗 体 (结合使用过氧化物酶标记的羊抗兔二抗)检测 H A S 2 的表达。 d. 通过 F l a g免疫荧光染色确证H A S 2 外 源 性 (K i m et al.2005)。 表 1 . 经 DNA-HA薄膜释放物转染的细胞对HA的合成 D N A 释 放 样 I D N A 释 放 样 2 阳 性 对 照 阴 性 对 照 114. 84ng/ml 92. 74ng/ml 96. 42ng/ml 35. 89ng/ml

来源:丁香实验

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